Name: ウサギの眼全体の高品質な凍結切片の取得 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-11-10T13:30:00.000+00:00
Duration: 5 min 59 s
Description: 学ぶウサギ眼全体の高品質凍結切片作成法。組織アーチファクトを最小化し、網膜層構造を鮮明に可視化する改良プロトコル。免疫組織化学研究への応用価値が高い。

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技術的なアドバイスを提供してくれた Rosanna Calderon、Dominic Shayler、Rosa Sierra に感謝します。この研究は、失明を防ぐための研究(AN)、NIH K08EY030924(AN)、眼科のための実験的治療におけるラスマドリナス基金(AN)、失明を防ぐための研究キャリア開発賞(AN)、テンプル騎士団眼科財団基金(AN)、 エドワードN.アンドデラL.トーム記念財団(AN、KG)。

すべての手続きは、南カリフォルニア大学の動物管理・使用委員会(IACUC)に準拠し、承認されて実施されました。生後4ヶ月から6ヶ月の14匹(n = 14)のオランダベルト付きウサギが、このプロトコルの開発に使用されました。オスとメスの両方の動物が使用されました。すべての動物の体重は2.0〜2.5kgでした。すべての動物は一人で飼われていました。推奨される材料と機器のリストは、 材料の表にあります。
1. 事前準備
<ol><li>固定剤の調製。<ol><li>リン酸緩衝生理食塩水(PBS)に4%パラホルムアルデヒド(PFA)を調製します。最低でも、片眼あたり50mLの固定剤が必要です。</li>
	</ol></li>
	<li>凍結保護剤の調製。<ol><li>PBSで30体積重量(w / v)スクロースを調製します。ショ糖が完全に溶解していることを確認するために、シェーカーに少なくとも15分間置きます。最低でも、片眼あたり50mLの凍結保護剤が必要です。</li>
	</ol></li>
	<li>解剖器具の準備。<ol><li>鉗子2対、湾曲ハサミ1対、メス刃1枚、100mm解剖皿を集めて、解剖顕微鏡の近くに置きます。セットアップの例を 図 1A に示します。</li>
	</ol></li>
</ol>2. 初期固定
<ol><li>経結膜核摘出術11の後、直ちに氷上のPBS中の少なくとも50 mLの4%PFAに眼を置きます。目が完全に水没していることを確認してください。目の外面に気泡が溜まった場合は、軽く振って気泡を取り除いてください。</li>
</ol>3.角膜と虹彩の除去
<ol><li>15分後、PBS中の4%PFAから眼を取り出し、解剖顕微鏡下の100 mm解剖皿に入れます。目が乾くのを防ぐために、皿にPBSを入れます。</li>
	<li>角膜を取り外します。<ol><li>まず、下層部の構造に誤って穴を開けないように、虹彩面と平行に、輪部の前方1 mmに外科用ブレードで切開を作成します(図1B)。</li>
		<li>最初の切開部に湾曲したハサミを挿入し、リンバスから1mm離れたまま円周方向に切断を続けます。鉗子を使用して、切断中に目を安定させます(図1C)。</li>
		<li>円周方向のカットが完了したら、鉗子で角膜を取り外し、ラボラトリーワイプで余分なPBSをやさしく拭き取ります。角膜を室温(RT)の30%ショ糖溶液に入れて、凍結保護または廃棄します。.凍結保護は、角膜が沈むと完了し、通常は1時間未満で完了します。</li>
	</ol></li>
	<li>虹彩を取り外します。<ol><li>虹彩を通して湾曲したはさみで最初のカットを行うことから始めます。角膜の除去と同様に円周方向に切断することにより、虹彩を組織の他の部分から完全に分離します(図1D)。</li>
		<li>円周方向のカットが完了したら、鉗子で虹彩を取り外し、実験室のワイプで余分なPBSを優しく拭き取ります。アイリスをRTの30%スクロース溶液に入れて凍結保護するか、上記のように廃棄します。.凍結保護は、虹彩が沈むと完了し、通常は30分未満で完了します。</li>
	</ol></li>
</ol>4. 固定完了
<ol><li>角膜と虹彩を取り除いた状態で、PBSで調製したばかりの4%PFAの少なくとも50 mLに目を入れ、シェーカーに乗せて穏やかに攪拌します。攪拌中は目が水没したままであることを確認してください。</li>
	<li>PBS中の4%PFAに4°Cで一晩目を保ちます。 注:4% PFAは、4°Cで16時間から24時間の間に使用すると優れたIHC染色をもたらし、固定時間が長くなると非特異的バックグラウンド染色とエピトープマスキングが増加することがわかりました。</li>
</ol>5.レンズの取り外し
<ol><li>翌朝、PBS中の4%PFAから眼球を取り出し、解剖顕微鏡下の100 mm解剖皿に入れます。目が乾くのを防ぐために、皿にPBSを入れます。</li>
	<li>レンズを取り外します。<ol><li>鉗子で前水晶体嚢を慎重につかむことから始めます。 注意: 鉗子でレンズを強く押したり引いたりしないように細心の注意を払ってください。</li>
		<li>はさみを後房に慎重に挿入し、ブレードをレンズに沿って後方に湾曲させます。湾曲したハサミで水晶体小帯に最初のカットを入れます。 注意: はさみで小帯を強く押したり引いたりしないように細心の注意を払ってください。これは、網膜の剥離を引き起こす可能性があるためです(図1E)。</li>
		<li>円周方向にレンズ小帯に小さな切り込みを入れ続けます。クロック時間あたり3〜5カットします。</li>
		<li>水晶体が組織の他の部分から分離しているかどうかを確認するには、鉗子で前水晶体嚢をそっとつかみ、そっと持ち上げてみてください。レンズがすぐに浮かばない場合は、網膜剥離を引き起こす可能性があるため、さらに引っ張ろうとしないでください。代わりに、残りの水晶体小帯をさらにカットして再試行します。</li>
		<li>組織の他の部分から分離したら、凍結保護のためにレンズをRTの30%スクロース溶液に入れるか、上記のように廃棄します。凍結保護は、レンズが沈むと完了しますが、通常は数時間かかります。</li>
	</ol></li>
	<li>凍結保護のために、4°CのPBS中の30%スクロースを少なくとも50mLに入れます。凍結保護は、目が沈むと完了しますが、通常は24〜48時間かかります。凍結保護を迅速に行うには、8〜12時間後に最初のショ糖溶液を新しいものと交換するか、RTのショ糖溶液に目を留まらせてください。</li>
</ol>6. 埋め込み
<ol><li>凍結保護が完了したら、30%ショ糖溶液から眼を取り出し、解剖顕微鏡下の100mm解剖皿に入れます。目を慎重に裏返して下を向くようにし、目の内側から余分なショ糖溶液を取り除きます。 注:ワイプが硝子体に付着して網膜剥離を引き起こす可能性があるため、実験室のワイプで目の内側から余分な溶液を取り除こうとしないでください。</li>
	<li>目を下に向けて、ワイプを使用して目の外側部分から余分なショ糖溶液をやさしく拭き取ります。</li>
	<li>使い捨ての埋め込み型に、最適な切断温度(OCT)コンパウンドを0.5〜1.0cmの深さまで充填します。 注:このベースは、目が金型の底に触れないようにし、後で凍結切片化を妨げます。</li>
	<li>上を向いて使い捨ての埋め込み型に目を置きます。目の内側をOCTでゆっくりと満たし、目内に泡が形成されないように特別な注意を払います。気泡が発生した場合は、気泡を慎重に取り除くか、鉗子を使用して型の端に押し込みます。</li>
	<li>使い捨て埋め込み型にOCTを充填し、目が完全にOCTに沈み、金型の内面に触れたり、空気にさらされたりしていないことを確認します。OCTで目を含む使い捨ての埋め込み型をパラフィルムで包みます。4°Cで一晩置きます。 注:私たちの経験では、潜伏期間が短いと、OCTが硝子体に完全に浸潤することはできません。その結果、スクロースの層が網膜とOCTの間に残ることがよくあります。これが発生すると、凍結ショ糖は凍結OCTよりも構造的支持が少ない可能性が高いため、凍結切片中に網膜が他の組織から剥離したり、完全に引き裂かれたりすることが多く、高品質の切片を取得することが困難または不可能になります。</li>
	<li>翌朝、OCTの眼を含む埋め込み型を100 mmの解剖皿に、解剖顕微鏡下に置きます。後部の硝子膜が内側の網膜から上向きに浮き上がっているように見えることを確認します。 注意: この上向きの持ち上げは、網膜の視界を遮り、向きを決定するのを困難にする可能性があります。</li>
	<li>目の向きをよりよく判断するには、後部の硝子膜を前方に注意深くつかみ、OCT中に鉗子でそれを剥がして下にある網膜を露出させようとします。 注:時々、視神経乳頭に付着する硝子管が見える場合があり、視神経乳頭が網膜の上部に位置しているため、配向目的で使用できます(図2A)。OCTはすでに硝子体に浸潤して内側の網膜を覆っており、残りの膜は凍結切片に影響を与えないため、後部硝子膜を完全に除去する必要はありません(図2B)。後部硝子膜は、必要な場合にのみ向きを合わせるために除去する必要があります。向きを決定するための他のオプションには、核摘出前に縫合糸または他の種類のマークを配置することが含まれます。</li>
	<li>新しいOCTを0.5〜1.0 cmの深さまで充填した新しい埋め込み型に目を移し、手順6.3〜6.5のように新しいOCTを充填して、最終的な埋め込み媒体に一晩で蓄積した可能性のある破片やその他の欠陥がないことを確認します。可能であれば、OCTも目の内側からワイプでそっと取り除きますが、これは必須ではありません。</li>
	<li>向きの目的で金型にラベルを付けます(図2C)。クライオモールドで目を上に向けて目を向けると、OCTが内側の網膜を裏打ちすることが保証されます。視神経乳頭に付着する硝子管は、眼の上部分を決定するための重要な目印です(図2A)。</li>
	<li>OCTの目が入ったラベル付きの埋め込み型をドライアイスの上に置きます。目が埋め込み金型の内面に触れたり、空気にさらされたりしていないことを確認してください。金型がドライアイスに直接触れていることを確認して、凍結プロセスをスピードアップします(図2D)。</li>
	<li>埋め込まれたアイを-80°Cの冷凍庫に移すか、直接クライオスタットに移して切片化します(図2E)。</li>
</ol>7.クライオセクショニング
<ol><li>目の上部が上を向き、目の下部が下を向くようにブロックを取り付け、残りの角膜と虹彩を右( 図2Eなど)または左(図示せず)に向けます。または、必要に応じて、ブロックを別の向きで取り付けます。必要に応じて、型の各側面を一度に1つずつ慎重に壊し、目の向きを失わないようにブロックに直接印を付けることにより、型を壊してブロックを動員します。</li>
	<li>ブロックをクライオスタット内の温度に30〜60分間平衡化させます。-20°Cは良い出発点です。</li>
	<li>取り付けたら、新しいブレードを目的の角度(通常は目の垂直軸に平行)に配置します。</li>
	<li>必要に応じてセクションの厚さを設定します:厚さ10〜20μmのセクションが適切な出発点です。厚さ14μmの切片の例を図3A-Cに示します。<ol><li>ゆっくりと制御された方法で、ブロックの断面化を開始します。ブレードが目の垂直軸に平行にブロックを切断していることを確認します。そうでない場合は、ブレードがブロックまたはステージの向きに接触する角度を調整します。</li>
		<li>ブロックを切片にするときは、ブラシで切片のしわやカールを防ぎます。切片をすばやく裏返し、長毛のブラシで下に優しく圧力をかけ、切片を平らにし、しわやカールを最小限に抑えます。セクションの操作を助けるために、先のとがった先端を持つ別のブラシを作ります。</li>
	</ol></li>
	<li>スライドを下向きにしてゆっくりとセクションを動かして、セクションを帯電したスライドガラスに取り付けます。取り付け中にセクションが折りたたまれたり、歪んだりしないように、スライドガラスをセクション上でそっと転がします。 注意: スライドをセクションに直接置いたり、セクションを押し付けたりすると、セクションが損傷したり歪んだりする可能性があるため、スライドをセクションに直接押し付けないでください。</li>
	<li>スライドを一晩乾燥させてから、-80°Cの冷凍庫に移すか、標準的な免疫蛍光プロトコルに直接進みます。</li>
</ol>

免疫組織化学研究のためのウサギ眼の解剖と凍結切片

<ol><li>Peiffer, R. L. Jr, Pohm-Thorsen, L., Corcoran, K. Chapter 19-Models in ophthalmology and vision research. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPeiffer%2C+RL+%22American+College+of+Laboratory+Animal+Medicine%2C+The+Biology+of+the+Laboratory+Rabbit%22">American College of Laboratory Animal Medicine, The Biology of the Laboratory Rabbit</a>. Manning, P. J., Ringler, D. H., Newcomer, C. E. , Academic Press. 409-433 (1994).</li>
<li>Davis, F. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+anatomy+and+histology+of+the+eye+and+orbit+of+the+rabbit%5BTitle%5D)+AND+%22Trans+Am+Ophthalmol+Soc%22%5BJournal%5D)">The anatomy and histology of the eye and orbit of the rabbit.</a> Trans Am Ophthalmol Soc. 27, 400.2-441 (1929).</li>
<li>Zernii, E. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rabbit+models+of+ocular+diseases%3A+New+relevance+for+classical+approaches%5BTitle%5D)+AND+%22CNS+%26+Neurological+Disorders+Drug+Targets%22%5BJournal%5D)">Rabbit models of ocular diseases: New relevance for classical approaches.</a> CNS & Neurological Disorders Drug Targets. 15 (3), 267-291 (2016).</li>
<li>Coons, A. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Labelled+antigens+and+antibodies%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Labelled antigens and antibodies.</a> Annu Rev Microbiol. 8, 333-352 (1954).</li>
<li>Coons, A. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescent+antibodies+as+histochemical+tools%5BTitle%5D)+AND+%22Fed+Proc%22%5BJournal%5D)">Fluorescent antibodies as histochemical tools.</a> Fed Proc. 10 (2), 558-559 (1951).</li>
<li>Coons, A. H., Kaplan, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Localization+of+antigen+in+tissue+cells%3B+improvements+in+a+method+for+the+detection+of+antigen+by+means+of+fluorescent+antibody%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Localization of antigen in tissue cells; improvements in a method for the detection of antigen by means of fluorescent antibody.</a> J Exp Med. 91 (1), 1-13 (1950).</li>
<li>Pang, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Step-by-step+preparation+of+mouse+eye+sections+for+routine+histology%2C+immunofluorescence%2C+and+RNA+in+situ+hybridization+multiplexing%5BTitle%5D)+AND+%22STAR+Protoc%22%5BJournal%5D)">Step-by-step preparation of mouse eye sections for routine histology, immunofluorescence, and RNA in situ hybridization multiplexing.</a> STAR Protoc. 2 (4), 100879(2021).</li>
<li>Sorden, S. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spontaneous+background+and+procedure-related+microscopic+findings+and+common+artifacts+in+ocular+tissues+of+laboratory+animals+in+ocular+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicol+Pathol%22%5BJournal%5D)">Spontaneous background and procedure-related microscopic findings and common artifacts in ocular tissues of laboratory animals in ocular studies.</a> Toxicol Pathol. 49 (3), 569-580 (2021).</li>
<li>Margo, C. E., Lee, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fixation+of+whole+eyes%3A+the+role+of+fixative+osmolarity+in+the+production+of+tissue+artifact%5BTitle%5D)+AND+%22Graefes+Arch+Clin+Exp+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Fixation of whole eyes: the role of fixative osmolarity in the production of tissue artifact.</a> Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 233 (6), 366-370 (1995).</li>
<li>Chatterjee, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Artefacts+in+histopathology%5BTitle%5D)+AND+%22J+Oral+Maxillofac+Pathol%22%5BJournal%5D)">Artefacts in histopathology.</a> J Oral Maxillofac Pathol. 18 (Suppl 1), S111-S116 (2014).</li>
<li>Mitchell, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enucleation+in+companion+animals%5BTitle%5D)+AND+%22Ir+Vet+J%22%5BJournal%5D)">Enucleation in companion animals.</a> Ir Vet J. 61 (2), 108-114 (2008).</li>
<li>Kastan, N. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+an+improved+inhibitor+of+Lats+kinases+to+promote+regeneration+of+mammalian+organs%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Development of an improved inhibitor of Lats kinases to promote regeneration of mammalian organs.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 119 (28), e2206113119(2022).</li>
<li>Baiza-Durán, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Safety+and+tolerability+evaluation+after+repeated+intravitreal+injections+of+a+humanized+anti-VEGF-A+monoclonal+antibody+%28PRO-169%29+versus+ranibizumab+in+New+Zealand+white+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Retina+Vitreous%22%5BJournal%5D)">Safety and tolerability evaluation after repeated intravitreal injections of a humanized anti-VEGF-A monoclonal antibody (PRO-169) versus ranibizumab in New Zealand white rabbits.</a> Int J Retina Vitreous. 6, 32(2020).</li>
<li>Yu, D. Y., Cringle, S. J., Su, E., Yu, P. K., Humayun, M. S., Dorin, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser-induced+changes+in+intraretinal+oxygen+distribution+in+pigmented+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Laser-induced changes in intraretinal oxygen distribution in pigmented rabbits.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 46 (3), 988-999 (2005).</li>
<li>Faude, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Facilitation+of+artificial+retinal+detachment+for+macular+translocation+surgery+tested+in+rabbit%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Facilitation of artificial retinal detachment for macular translocation surgery tested in rabbit.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 42 (6), 1328-1337 (2001).</li>
</ol>

著者は、宣言する利益相反を持っていません。

上記のプロトコルを実施する前は、IHCのためのウサギの眼の組織処理に一貫して困難に直面していました。マウスなどの小動物の目からいくつかのプロトコルを適応させましたが、これらが不十分な固定と組織切片の困難につながることがわかりました。ウサギの網膜の一貫性のある高品質の切片を可能にするために、いくつかの重要な考慮事項があります。
考慮すべき点の1つは、げっ歯類などの他の一般的に使用される動物モデルと比較して、ウサギの球体のサイズが大きいことです。ウサギの目は人間の目と大きさが似ているため、ヒトで一般的に行われる眼科手術を利用したトランスレーショナル研究が容易に実施できる可能性があります。例えば、硝子体内注射、レーザー光凝固術、硝子体切除術、および網膜剥離のための手術など、網膜および/または硝子体を含む処置は、全てウサギ13,14,15において安全かつ容易に行うことができる。しかし、ウサギの球体のサイズ...

網膜は、眼内の特殊な細胞のいくつかの層で構成されており、それらが一緒になって光を神経信号に変換する働きをします。網膜は視力において重要な役割を果たしているため、その構造と機能を理解することで、黄斑変性症や糖尿病性網膜症など、視力喪失の最も一般的な原因のいくつかについて貴重な洞察を得ることができます。
ウサギは、他のモデルと比較していくつかの利点を提供するため、網膜研究において便利な動物モデルとして機能します。ウサギの目は、解剖学的構造が人間の目と比較的似ています1,2。例えば、ウサギには、ヒトの中心窩に類似した、水平視覚筋として知られる視細胞密度の増加した領域があります。げっ歯類などの他の一般的に使用される動物モデルには、解剖学的同等物がありません。さらに、げっ歯類と比較して、ウサギの網膜血管系はヒトのそれとかなり似ています。ウサギの目も比較的大きいです。これにより、硝子体または網膜内での薬物投与または外科的介入を含む研究に特に適していますが、これは小さな眼では困難または不可能である可能性があります3。
免疫組織化学(IHC)は、組織内の抗原の局在を研究するために広く使用されている手法であり、網膜研究に広く応用されています4,5,6。網膜はデリケートな構造であるため、IHCで有用な結果を得るには、慎重な組織処理が必要です。網膜剥離や、網膜の破損や襞などのその他の組織アーチファクトは、通常、処理中に発生し、結果の解釈を妨げる可能性があります。プロセシングが成功するかどうかは、組織の操作、固定の種類と持続時間、埋め込み培地の種類、切片化技術など、さまざまな要因に左右されます7,8,9,10。網膜研究においてウサギを動物モデルとして使用する利点にもかかわらず、ウサギ網膜の組織処理が成功したことを示すプロトコルはほとんど存在しません。この論文では、IHCで使用するためにウサギの眼全体から高品質の網膜切片を得るための信頼性の高い方法について説明します。

<table><tbody><tr><td>100 mm培養皿</td><td>コーニング</td><td>353025</td><td>解剖に使用(ステップ1.3、3、5)</td></tr><tr><td>50 mLチューブ</td><td>ジェネシーサイエンティフィック</td><td>28-106</td><td>固定および凍結保護用(ステップ1)</td></tr><tr><td>クライオスタット</td><td>ライカ</td><td>CM1850</td><td>クライオセクショニング用(ステップ7)</td></tr><tr><td>湾曲ハサミ</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>91500-09</td><td>解剖に使用(ステップ1.3、3、5)</td></tr><tr><td>DAPI</td><td>フィッシャーサイエンティフィ</td>ック<td>D3571</td><td>ブロッキングバッファーで1:1,000希釈</td></tr><tr><td>解剖顕微鏡</td><td>ツァイス</td><td>ステミ 2000-C</td><td>解剖に使用(ステップ1.3、3、5)</td></tr> <tr><td>ロバ反ヤギ 488</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>A-11055</td><td>ブロッキングバッファーで1:1,000希釈</td></tr><tr><td>ロバアンチマウス 555</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>A-31570</td><td>ブロッキングバッファー</td></tr><tr><td>で1:1,000希釈鉗子</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>91150-20</td>解<td>剖に使用(ステップ1.3、3、および5)</td></tr><tr><td>ガラススライド</td><td>カバーVWR</td><td>48404-453</td>凍結<td>切片(ステップ7)</td></tr><tr><td>ヤギ抗SOX2</td><td>R&D Systems</td><td>AF2018</td><td>Diluted 1:100 in blocking buffer</td></tr><tr><td>High-profile disposable cryostat blades</td><td>ライカマイクロシステムズ</td><td>14035838926</td><td>クライオセクショニング用(ステップ7)</td></tr><tr><td>Kimwipe</td><td>Fisher Scientific</td><td>06-666-A</td><td>余分なPBSまたはOCTを拭き取るために使用されます(ステップ3および6)</td></tr><tr><td>マウス抗RPE65</td><td>Novus Bio</td><td>NB100-355SS</td><td>ブロッキングバッファーで1:100に希釈</td></tr><tr><td>OmniPurショ糖</td><td>ミリポア</td><td>167117</td><td>凍結保護剤に使用(ステップ1.2)</td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド20%溶液</td><td>電子顕微鏡Sciences</td><td>15713</td><td>組織固定剤として使用(ステップ1.1で4%に希釈)</td></tr><tr><td>Peel-A-Away使い捨て埋め込み型(深さ22x22x20 mm)</td><td>Polysciences, Inc.</td><td>18646A</td><td>埋め込み金型として使用(ステップ6)</td></tr><tr><td>リン酸緩衝生理食塩水、1x</td><td>Corning</td><td>21-030-CV</td><td>固定剤(ステップ1.1)および凍結保護剤(ステップ1.2)の調製に使用メス</td></tr><tr><td>ブレードNo.15</td><td>フェザー08-916-5D</td><td></td><td>解剖に使用(ステップ1.3、3、および5)</td></tr><tr><td>スーパーフロストプラス顕微鏡スライドフィ</td><td>ッシャーサイエンティフィック</td><td>12-550-15</td>凍結<td>切片(ステップ7)</td></tr><tr><td>Tissue-Tek O.C.T.コンパウンド</td><td>Sakura</td><td>4583</td><td>埋め込みメディアとして使用(ステップ6)</td></tr></tbody></table>

ウサギの眼全体の高品質な凍結切片の取得 

Obtaining High-Quality Cryosections of Whole Rabbit Eye

このプロトコルは、ウサギなどの大型動物で高品質の網膜凍結切片を取得する方法を説明しています。除核後、眼を固定剤に短時間浸します。次に、角膜と虹彩を切除し、眼球を一晩放置して4°Cでさらに固定します。 固定後、レンズを取り外します。次に、眼球をクライオモールドに入れ、埋め込み培地で満たします。レンズを取り外すことにより、埋め込み媒体は硝子体へのアクセスを改善し、網膜の安定性を向上させます。重要なことに、眼は硝子体全体に完全に浸透できるように、埋め込み培地で一晩インキュベートする必要があります。一晩のインキュベーション後、眼をドライアイスで凍結し、切片化します。全網膜切片は、免疫組織化学で使用するために得ることができる。標準的な染色プロトコルは、網膜組織内の抗原の局在を研究するために利用できます。このプロトコルを順守することで、免疫組織化学を利用するあらゆる実験で使用できる高品質の網膜凍結切片が得られます。

組織処理後、標準的な免疫蛍光プロトコルを使用して、網膜内の任意の数の生物学的プロセスを調査できます。図3A-Cは、共焦点顕微鏡法で得られた網膜切片の代表的な蛍光画像を示しています。網膜切片は、前述のプロトコル12に従って免疫染色した。
図3A-Cに示す代表的な網膜切片は、視神経頭の近くにあり、網膜血管の軸に対して直角に配向されています(つまり、切片には末梢網膜、網膜血管、有髄神経線維、および水平視覚筋が含まれています)。Sox2+核は、神経線維層と内核層内に見られることがあります。RPE65染色は、視細胞受容層に隣接する網膜色素上皮(RPE)細胞の連続層を示しています。蛍光画像は、上にある光受容体層から大きく剥離することなく、均一な色素沈着RPE層を示しています...

このプロトコルは、ウサギの眼全体の高品質な凍結切片を得るための信頼性の高い方法を説明しています。ウサギの眼の解剖、固定、埋め込み、および切片化の手順を詳しく説明しており、より大きな眼の免疫組織化学を利用するあらゆる研究での使用に容易に適応できます。

This protocol describes how to obtain high-quality retinal cryosections in larger animals, such as rabbits. After enucleation, the eye is briefly immersed ...

私たちの研究は、網膜色素上皮を再生するための新しいアプローチに焦点を当てています。網膜色素上皮の機能不全は、黄斑変性症などの多くの眼疾患の病態生理学において中心的な役割を果たしていると考えられており、この細胞層を再生することは治療の観点から魅力的です。免疫組織化学による網膜の構造解剖学的構造の可視化は、網膜研究に広く応用されています。私たちの研究室では、ウサギの目から有用な結果を得ることは、網膜付着物や網膜のひだなどの組織アーチファクトのために困難であることを発見しました。これらの課題にもかかわらず、ウサギ網膜の組織処理の成功を説明するプロトコルはほとんど存在しません。このプロトコルは、ウサギ網膜の優れた組織切片をもたらす標準的な組織処理技術にいくつかの重要な変更を加えています。この研究により、研究者はウサギモデルでの免疫組織化学の使用を含む研究からより良い結果を得ることができるかもしれません。

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Research

JoVE Journal

Biology

生物学

この記事では、ウサギの網膜とGFPまたは網膜神経節細胞への細胞内マーカーの様々なコードするプラスミドの粒子による遺伝子導入の解剖とインキュベーションを示しています。...

大人のウサギの網膜の器官培養

ウサギは、眼内薬の薬物動態を研究するために広く使用されています。ウサギの眼を用いた眼内薬物の薬物動態研究の方法について述べる。...

眼薬の薬物動態試験でウサギの眼の使用

ここでは、下流の RNA 解析のための小柱網 (TM) を隔離するため再現性のあるレーザー キャプチャ レーザーマイクロダイ セクション (LCM) のためのプロトコルについて述べる.TM での遺伝子発現の変化を分析する能力は、TM...

遺伝子発現解析のためのマウスの目から非常に純粋な小柱網のキャプチャ マイクロダイゼクション

ラット網膜血管ペリサイト、すなわち、低温セクション、全体-マウント、および血管ネットワークの低張性分離の免疫組織化学的可視化のための 3...

網膜の低温電子顕微鏡セクション全体-マウント、および微小血管の免疫組織化学的可視化の低張性分離血管準備

本報告では、免疫組織化学(IHC)のための凍結マウス網膜切片を準備するための包括的な方法について説明する。...

免疫組織化学用マウスレチンクライオ切片の調製

ここでは、高品質な後根神経節クライオスタット切片を安定的に取得するための開発を紹介します。...

マウス背根神経節凍結切片の手順

この原稿は、げっ歯類の眼球からのスライドの組織学的調製のためのプロトコルを提示します。提案手法により、内側の網膜を光学顕微鏡で容易に可視化し、評価することができる。この手順は、マウスとラットの眼球に提示されます。...

網膜を評価するためのラットおよびマウス眼球の組織学的スライドの調製と分析

マウス網膜凍結切片を調製し、光受容体上で免疫染色を実施するためのプロトコルが記載されている。この記事により、研究者は、保存状態の良い形態と高品質の免疫染色結果を備えたマウス網膜凍結切片を一貫して作製することができます。...

マウス網膜の凍結切片および免疫染色

網膜は、その層状構造全体で複雑な空間構成を示します。最新の空間トランスクリプトミクスおよびシーケンシング技術では、厚さ20μm&lt;組織切片が必要であり、網膜研究の適用性は限られています。この新鮮凍結凍結切片法は、平面的な空間的関係を維持しながら、マウス網膜の薄い 顔...

顔面 高次元空間分子解析のためのマウス網膜の凍結切片

、そのまま溶解、及び/または分画アフリカツメガエルの卵は、実験の様々な場合に便利です。このプロトコルは、産卵を誘発卵を収集し、dejelly、及び損傷した卵を除去するために卵をソートする方法を示しています。...

アフリカツメガエル女性から卵子を入手

学ぶウサギ眼全体の高品質凍結切片作成法。組織アーチファクトを最小化し、網膜層構造を鮮明に可視化する改良プロトコル。免疫組織化学研究への応用価値が高い。

ウサギの眼全体の高品質な凍結切片の取得

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