0 조회수 • 3:12 분 • March 31st, 2026
먼저 장 세포질에 국소된 전사 인자인 녹색 형광 단백질 표지 SKN-1을 발현하는 C. elegans 벌레 두 판으로 시작합니다. 이 벌레들은 또한 자가형광을 보이는 장내 리포푸신 과립을 포함하고 있습니다.
한 플레이트는 비병원성 박테리아를 대조군으로, 다른 한 판에는 병원성 박테리아를 시험 그룹으로 시딩합니다.
시험군에서는 병원체가 생성하는 과산화수소가 산화 스트레스를 유발하여 SKN-1이 장핵으로 전위되도록 유도합니다.
대조군에서는 SKN-1의 대부분이 세포질에 확산되어 있습니다.
각 판을 완충제로 세척하고 벌레를 튜브에 옮기세요.
원심분리기를 사용해 웜을 분리하고 완충제를 제거하세요.
마취를 위해 아지화나트륨이 포함된 배지를 추가하세요.
지렁이를 아가로스 패드에 부착하고, 덮개를 깔아 형광 현미경으로 관찰하세요. 자가형광을 사용해 핵 경계를 시각화하세요.
검사 중 강한 핵 SKN-1 신호는 대조군의 확산 세포질 신호와 비교하여 핵 재국소화를 나타내며 병원체 유발 산화 스트레스를 확인한다.
피펫을 사용해 THY 연쇄상구균 씨앗 및 NGM 대장균 씨앗 플레이트에 약 100마리의 L4 유충을 추가하세요. 박테리아 균주당 세 개의 플레이트를 사용하세요.
플레이트를 25도 섭씨에서 2시간에서 3시간 정도 부양하세요. 그 후 인큐베이터에서 플레이트를 분리하세요. M9W로 세척하고 벌레를 15밀리리터 원뿔형 튜브에 담아 모으세요.
원심 단계에서 했던 것처럼 벌레를 세 번 세척하세요. 흡입 압력으로 M9W 대부분을 제거하세요. 그리고 마취용 지충 펠릿에 2밀리몰라 아지드 나트륨 또는 테트라미솔 하이드로클로라이드 500 마이크로리터의 M9W를 추가하세요.
튜브를 웜 펠릿과 함께 실온에서 15분간 부양하세요. 그 다음, 15마이크로리터의 웜 현탁액을 준비된 진천당 패드 위에 떨어뜨립니다. 형광 현미경 아래에서 FITC와 DAPI 필터를 사용하여 SKN-1의 위치를 시각화합니다.
이미지 웜은 10배, 20배 배율로 나타납니다. 벌레의 세 가지 국소화 수준을 기준으로 점수를 매기세요; 낮은 위치(핵 위치가 관찰되지 않음), 중간 정도 위치(SKN-1 BCGFP가 벌레의 앞쪽 또는 후방), 높은 위치(모든 장 세포에서 핵 위치가 관찰되는 경우)입니다.
본 프로토콜은 GFP가 태그된 SKN-1의 국소화를 추적하여 C. elegans에서 병원균으로 유도된 산화 스트레스를 시각화하는 방법을 보여줍니다. 이 과정을 이해하는 것은 모델 생물에서 산화 스트레스에 대한 세포 반응을 연구하는 데 매우 중요합니다.
이 방법은 유전적 조작이 용이한 모델에서 병원균으로 유도된 산화 스트레스 반응을 직접 시각화할 수 있게 하여, 미생물 독성 인자와 숙주 스트레스 경로를 연결함으로써 초기 단계의 타겟 검증을 지원합니다. 전사 인자의 핵 전이에 대한 정량적 점수 산출은 숙주-병원균 상호작용 및 산화 손상 기전에 관한 가설의 리스크를 낮추기 위한 기전적 판독 값을 제공합니다. 또한, 염증성 질환 모델과 관련된 스트레스 반응 경로를 조절하는 화합물이나 유전적 변형 인자를 스크리닝하기 위한 확장 가능하고 재현 가능한 시스템을 제공합니다.
이 방법은 표적 가설 검증부터 기전 확인, 전임상 우선순위 선정에 이르는 발견 연속체에 부합하며, 특히 산화 스트레스 및 해독 반응과 관련된 경로에 유용합니다.
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마지막 업데이트: 29 8월 2026