Name: Organotypic 문화에의 연결을 눈사태의 다중 전극 어레이 레코딩 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-08-01T13:00:00.000+00:00
Duration: 16 min 1 s
Description: 배우세요 다중 전극 어레이를 이용한 피질과 중뇌 공배양에서 신경 눈사태의 자기조직화를 연구하는 방법을. 이 기술은 신경망 수준의 활성을 정밀하게 제어하여 연구할 수 있게 합니다.

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이 연구는 정신 건강의 국립 연구소, 건강의 국립 연구소의 교내 연구 프로그램의과 (DIRP)에 의해 재정 지원되었다.

1. 장기 레코딩을위한 MEA와 살균, Sealable 유리 회의소 <ol><li> 안전하고 꽉 문화 챔버 폐쇄에 필요한 테플론 - 플라스틱 캡 (에이스 유리)와 스레드 유리 실린더는 스레드 (그림 1A, B)의 하단에서 (Aceglass) 약 2mm를 잘라있다. 물 (3 배) 200 증명 에틸 알콜에 5 분 끓는과 rinsing하여 깨끗한 유리 반지가 건조하게. </li><li> 나누어지는 실리콘 솔루션은 MEA의 표면에 유리 반지를 첨부해야합니다. Sylgard 184 실리콘 엘라스토머 키트의 A &amp; B는 철저하게, -20 ° C. 1 ML의 aliquots에 저장, 공기 방울을 제거 15 분 앉아 보자 부품의 15 ML를 섞어 </li><li> MEA에 접착제 유리 반지 (8x8 그리드 W / 내부 접지 전극, 쥐 / 마우스 30 μm의 전극 직경 100분의 200 μm의 전극 간의 거리) (그림 1A, B). 작은 게이지 바늘로 주사에 실리콘 1 ML (23 ° C)를 차지. ~ 60 ° C 뜨거운 접시에 2 시간 - 유리 반지, MEA의 중심 유리 반지, 강한 인장을위한 반지의 외부 주위에 실리콘의 추가 계층을 적용할의 unpolished 컷 표면에 실리콘을 적용, 1 치료하자. </li><li> 배 70 % 알코올에 의해 다음 탈이온수에 씻어하여 층류 후드의 MEA 챔버와 챔버 뚜껑을 소독 (3 X, 지난 알코올에 10 분 앉아 보자 린스) 자외선 10 챔버 분 노출과 캡 내부 다음 . 압력솥 MEA 챔버 (120 ° C, 서부 유럽 표준시, 45 분)하고 건조하게. </li><li> 폴리 - D - 라이신과 코트 MEA 표면 문화 챔버 내부. 들어 오히려 lipophilic하는 새로운 MEAs, 전극 그리드에서 솔루션의 반복 비말의 열망에 의해 외투. 사용 MEAs 들어, 솔루션과 챔버 바닥 커버, 여분의 액체를 대기음, 판상 후드 안쪽 무균 조건 하에서 증발 수 있습니다. 저장 및 향후 사용을위한 MEA 챔버를 밀봉하기 위해 뚜껑을 첨부합니다. </li></ol> 2. Organotypic 문화의 준비 및 성장에 필요한 재료 <ol><li> 무균 배양 접시 (팔콘, 100 x15; ~ 5mm 수준)에 부어, 0.9 % NaCl에 살균 한천을 디졸브, 식지, 스토리지에 대한 Parafilm과 멸균 포장. 사용하기 위해 단단한 한천에서 20 X 10 X 5mm 블록을 잘라. </li><li> 포장 스토어 슈퍼 접착제, 예를 들어 Devcon 슈퍼 접착제 II는 불임을 보존하기 위해 층류 후드 안쪽 열기 전에 70 % EtOH로 닦여​​. </li><li> 드 - 이온화된 문화 물 (시그마) 40 ML에 포도당의 40g을 추가 50 % d 개의 포도당 (시그마 초소형, G7528)를 준비합니다. -20 ° C. 2 ML aliquots에 저장 </li><li> Gey의 밸런스드 소금 솔루션 500 ML 50 % D - 글루코오스 4 ML을 추가하고 사용하기 전에 냉동실에 윤활제 (액체 / 얼음 결정의 혼합물)에 진정해. </li><li> 부드럽게 10 분, 소용돌이 및 멸균 페트리 접시에 명확한 내용을 decantate - 5 ML 드 이온화 문화 물 (거품 형성을 방지, 부드러운 악수)에서 Reconstitute 치킨 플라즈마는 솔루션 5 쉬라 구. 무균 필터 (0.22 μm의 기공 필터, 단백질) -20 ° C.에서 플라즈마 솔루션 cryotubes로 나누어지는 350 μl (NuncTM), 저장 </li><li> (NuncTM) 나누어지는 40 μl cryotubes로 (0.22 μm의 기공 필터) 따라서, 살균 필터 소 플라즈마에서 Reconstitute의 트롬빈, -20 ° C.에 저장 솔루션을 작업하기 위해 Gey의 균형 소금 솔루션 W / D - 포도당의 375 μl의 트롬빈 용액 40 μl를 희석. </li><li> 말 혈청, 200 ML 기초 중간 이글, 50 % 포도당 200 MM L - 글루타민 2 ML 4 ML이 추가 100 ML 행크의 버퍼 생리 식염수 100 ML을 혼합하여 배지 400 ML를 준비합니다. 4 8주 100 ML PYREX 병에 ° C. - 4 저장할 수 있습니다 </li><li> 0.3 MM의 유리딘, 0.3 MM ARA - C 사이 토신 - β - D - arabinofuranoside 및 0.3 MM 5 - 플루오로 - 2' - deoxyuridine, 살균 필터, 나누어지는 200 μl와 6 -20 ° C에서 저장을 혼합하여 유사 분열 억제제 준비 - 12개월. </li></ol> 3. 접속 및 복부 Tegmental 면적 (VTA) 조직 해부 (시간 : &lt;1 시간) <ol><li> 절차 산출 피질과 ~ 12 쥐 또는 마우스의 공​​동 문화, 그리고 무균 조건 하에서 층류 후드 내부의 준비를 위해 VTA 조직 섹션. 조직 컬렉션 총 시간은 1 시간 이상해야합니다. </li><li> 1 - 2 출생 후의 일 (쿨러), 건강하고, 잘 nourished 새끼를 (복부 '우유 명소'의 존재를 쓰레기 사이즈 ~ 10) 가져가라. 주둥이로 부드럽게 강아지를 기다려, 그것이 자유롭게 끊지 수 있도록하고, 신속하게 날카로운 가위로 목 기지에서 목을 베다. </li><li> 뇌 제거 들어, (두 측면 가위 인하) 피부를 제거하는 미세 안과 가위 (1 sagital 정중선 컷, 1 코로나 피질에서 절단 / 소뇌 접합)와 오픈 두개골을 잘라. 모든 4 해골의 날개를 다시 뒤집기. 날카롭게 주걱으로 caudally 두뇌 아래, 후각 망울을 통해 frontally 사전 주걱 잘라. 부드럽게 두개골의 두뇌를 리프트하고 빠른 냉각 및 임시 저장 살균, 냉각, Gey의 솔루션으로 보내드리겠습니다. 2 개 두뇌를 위해 3.3 단계 3.2 반복 (총 시간 : &lt;20 분). </li><li> VTA를 얻으려면조직, 작은 주걱을 사용하여 살균, 건조 페트리 접시에 두뇌를 전송합니다. 더 부드럽게 대해 1cm 옆으로 각각의 머리를 슬라이딩하여 여분 액체를 제거합니다. 면도날을 사용하여 소뇌의 수준에서 코로나, 수직 절단에 의해 뇌의 줄기를 제거합니다. </li><li> 절차를 깔끔히하는 동안 두뇌의 기계적 안정화를위한 디스크를 장착에 대한 글루 한천 블록. superglue의 얇은 라인을 플레이스 디스크에 한천 블록의 앞에 몇 밀리미터 (한천을 감동 접착제를 피하기). </li><li> 작은 주걱을 사용하여, 아래, 정면 기둥을 전송하고 각 두뇌를 탑재합니다. 정면 기둥이 설치 디스크에 접착하는과 복부 양쪽이 도중 컷 조각의 절단하고 쉽게 이륙. 적절한 기계적 안정화를 달성하기 위해 어떤 접착제 잔류물없이 한천을 만지지 있는지 확인 </li><li> 조심스럽게 vibratome 트레이에 뇌 어셈블리 (예 : Leica VT1000)과 잠수함 및 보안 장착 디스크 살균, 냉각 Gey의 솔루션으로 가득. 조심스럽게 청소 면도날 (90% EtOH)으로 가장 높은 진동 주파수에서 midbrain의 코로나 조각 잘라 400 500 μm의의 두께에 상대적으로 낮은 앞으로 속도. 흡입 전구로 바뀌 파스퇴르 피펫을 사용하여 전송 및 살균, 냉각 Gey의 솔루션으로 가득 35 X 10mm 배양 접시에 VTA 포함하는 슬라이스 수집 (그림 1C을, 또한 코로나 판 18 참조 - 15 E22 20)를. </li><li> 에 대한 대뇌 피질 섹션 단계를 반복합니다 3.2-3.6지만, 피질과 소뇌 사이에 수직 절개를 적용하고, 정면 기둥과 forebrains을 탑재합니다. striatum의 수준에서 시작 약 3 코로나 조각 (350 μm의 두께)가 향후 피질의 절개를 위해 수집됩니다. </li><li> 부러진 면도날 만든 마이크로 칼을 사용하여 전두엽 피질과 stereomicroscope 아래 VTA (그림 1C)이있는 midbrain 영역의 ~ 2mm 폭 코로나 섹션을 해부하다. 냉장 Gey의 솔루션으로 가득 작은 접시 (예 : 챔버 슬라이드)에서 별도로 조직 섹션을 수집합니다. </li></ol> 4. MEA에 접속하고 VTA 조직 조각 장착 (시간 : &lt;1 시간) <ol><li> 초점에있는 전극 배열을 가진 스테레오 현미경으로 실온에서 위치 MEA합니다. 센터 25 깨끗하고 먼지 무료 플라즈마의 μl 비말 및 살균 전극 배열 매트릭스. 작은 spatulae를 사용하면, 조심스럽게 플라즈마 비말에 피질과 VTA 부분을 슬라이드. </li><li> 냉각 판에 MEA를 삽입,보기를 집중할 플라즈마 비말에 트롬빈의 25 μl를 추가 후, ~ 15 s에 대한 진정하자. 트롬빈 피펫 팁을 사용하여 조심스럽게 MEA에 걸쳐 작은 원형의 움직임과 플라즈마 / 트롬빈 혼합물을 확산. 직접 취성 전극 어레이를 만지지 마십시오. 부드럽게 배열의 두 번째 전극 행에 따라 지느러미 테두리와 배열에있는 피질을 위치. 이 방법의 개발 표면 레이어는 결국 배열의 알림을 커버합니다. VTA는 피질 부분의 복부 국경 (그림의 1D)에 인접 배치됩니다. </li><li> 뚜껑과 느슨하게 MEA / 문화 조립 플라즈마 / 트롬빈 응고 수 있도록 실내 온도에서 후드 안쪽 ~ 5 분 동안 앉아 높은 습도를 유지하는 MEA 챔버를 닫습니다. 3 더 많은 문화 4.3 - 한편, 단계 4.1를 반복합니다. </li><li> 조심스럽게 25 X 8분의 5 바늘로 1 CC의 주사기를 사용하여 문화 챔버에 작은 물방울의 문화 매체 600 μl를 추가합니다. </li><li> 단단히 MEA 챔버 장소 MEA / 보육 (그림의 1B) 내부의 락을 보관 트레이에 문화 어셈블리를 닫습니다. 하려면, 3의 절차를 빠르게 - 4 MEAs는 중복 시퀀스에 조립하실 수 있습니다. 12 MEAs에 대한 어셈블리 시간 &lt;1 시간해야합니다. </li><li> 관내 (DIV) 2 일 후에, 유사 분열 억제제의 10 μl를 추가합니다. 새로고침 문화 미디어 네 DIV 60 % 및 이후 매 4 일까지. </li></ol> 5. Electrophysiological 녹화 및 자극 생성 <ol><li> MEA의 각 전극에서 ~ 10 분 24 kHz에서시 ~ 일주 5,6 기록 자발적인 활동 후, 지역 현장 잠재력 (LFP)와 행동 잠재력을 해고 뉴런의 경향에 상당한 deflections 사이의 관계를 확립하려면 (하드웨어 : MEA1060 W / 블랭킹 회로, x1200 이득, 12 비트 A / D, 범위 0-4096 뮤직 비디오, 멀티채널 시스템, 소프트웨어 : MC_Rack). 접지는 내부 접지 전극 통해서 제공, 또는 외부 자세 / AgCl 반 세포를 추가하여. </li><li> 세포외 스파이크 활동 200 Hz에서 (밴드 패스 300 - - 3,000 Hz에서) 1의 밴드 패스 필터 LFP 구분합니다. 스파이크 활동이 더욱 오프라인 스파이크 sorters (예 : Plexon 주식 회사)를 사용하여 단일 및 다중 유닛 활동으로 나눌 수있다. 계산 스파이크는 각 전극에 대한 평균을 촉발시켰다. 대뇌 피질의 문화, 대부분의 평균은 문화의 연결 급상승의 선호하는 시간을 제외 LFP의 deflections (n​​LFP)를 식별합니다. </li><li> (그림 2) 각 전극에 대한 LFP 추적에서 소음 (SD)의 -3 표준 편차의 임계값을 계산, nLFPs의 최대 시간과 amplitudes을 결정 십자가 임계값 (그림 2B, C). 세부 2,4 참조를 위해, 그리고 길이 Δt의 연속 시간 빈스 (그림 2D 같은에있는 모든 전극에서 nLFPs을 합치하여 배열에 spatiotemporal nLFP 클러스터를 식별 - 시간 빈 Δt를 (8 MS을 2 사이 등) 선택 , 5). </li><li> 눈사태의 연결을 식별하기 위해 각 nLFP 클러스터의 크기를 계산, 활성 전극 또는 nLFP amplitudes의 합계의 예 : 숫자, 크기 히스토그램을 구축하고, 이중 로그 좌표 플롯. 의 연결 눈사태 들어, 크기 분포 이중 로그 좌표 2 (그림의 2E, F)의 직선에 의해 approximated 전원 법을 따른다. 전원 법에 대한 통계 시험 16를 참조하십시오. </li><li> 진폭 S와 전류 제어 자극이 (자극 발생기 STG 1008, 멀티채널 시스템)이 적용되는 전극을 통해를 선택하여 조직에서 evoked 반응을 이끌어내는. - 200 μA 진폭 - S와 50 μs 10 사이의 진폭 + S / 2 S 100 μs 다음 : 전극의 손상을 줄이기 위해 제한된 범위 바이폴라 사각형 파형 단일 충격을 담당하고 중립적인 자극을 사용합니다. 자세한 내용은 설명서를 참조하십시오. </li><li> 동적 범위 9 자극 후 500 MS를 따라 모든 전극 4 kHz에서 샘플링 속도에서 LFP 응답을 기록 기록 자극을 기록합니다. 자극 유물을 절감하고 사전 증폭기 포화를 방지하기 위해 자극하는 동안 머리를 무대 앰프를 연결을 끊으 회로 (멀티 채널 시스템) 블랭킹 사용합니다. </li></ol> 6. 대표 결과 : 8 관한 새로운 MEAs와 함께 - 9 밖으로 10 문화의 여러 주 동안 살아남을 것입니다. 장기 녹음의 대부분은 우리가 많은 주 과정 5 이상의 개별 문화의 발전을 따라 수 있도록 문화 매체에 배양기 안에서 이루어집니다. 우리의 실험을 바탕으로, LFP 레코딩이 안정적으로 100 개 이상의 문화 일간 사용 MEAs와 함께 얻을 수 있습니다. 대조적으로, 세포 스파이크 활동보다 안정적으로 비교적 새로운 MEAs (&lt;40 문화 일)와 함께 측정됩니다. 전형적인 실험에서는, 우리는 문화 챔버가 봉인 유지 붙어있는 머리 단계 (그림 1B, 왼쪽)와 트레이에 저장 트레이 (그림의 1B, 오른쪽)에서 MEA를 전송합니다. 피질 5, 피질 - VTA 공동 문화 6,뿐만 아니라 anesthetized 쥐 6과 생체내 7 깨어 원숭이, 표면 레이어로의 연결을 눈사태 동안의 연결을 해고에서와 같이 주로 LFP의 정상 부정적인 편향에 가까운 발생 (nLFP ). 따라서, 로컬 동기화의 연결 그룹의 spatiotemporal 조직 배열 17 공간과 시간에 nLFPs의 발생을 측정하여 예상하실 수 있습니다. MEA의 활동 일시적 클러스터에 등장하는 경향이 하나의 전극에서 그러한 활동을 다른 사이트에서 활동을 함께합니다. 이러한 활동 기간 동안 LFP의 전형적인 파형은 몇 초 간격을 발생 3 클러스터를 계획하여 그림 2A에 표시됩니다. 각 클러스터에 대한, 부정적인 현장 deflections은 1 창 안에 여러 개의 전극에서 볼 수 있습니다 S. 여러 부정적인 SD의 문턱을 건너 nLFP의 봉우리를 추출하면, nLFP 피크 시간의 형태로 활동이 점들의 '열'가 다양한 전극 (그림 2B)에 일치하는 nLFPs 근처 대표하는 래스터에서 편리하게 시각이다. 이 활동의​​ spatiotemporal 조직은 다소 복잡하다, 더 많거나 적은 균일한 낮은 시간적 해상도에 나타나는 '열'는, 높은 해상도와 세속 등등 (그림 2C)에서 별도의 클러스터로 구성되어 있습니다. 사실, spatiotemporal nLFP 클러스터의 출현은 매우 대뇌 피질의 네트워크로 구성됩니다. 보다 구체적으로, 조직의 연결 눈사태를위한 스케일 - 불변량입니다. 이것은 주어진 시간적 해상도 Δt에서 클러스터 크기의 확률을 계산하여 입증됩니다. 여기서 클러스터는 동일하거나 연속된 시간 용기 (그림 2D)에서 발생하는 nLFPs 구성되어 있습니다. 이러한 클러스터의 크기가 클러스터 당 nLFPs 또는 클러스터 당 통합 nLFP amplitudes의 총수로 표현되면, 클러스터 크기 배포판은 누구 기울기 -1.5 2,4,5,7로 표시되었습니다 전원 법을 공개 ( 그림. 2E, F). 이 배포판은 사이즈 S K는 상수 요소이다 kxs에의 비율입니다 클러스터 크기의 규모 - 불변량 주문을 식별하는 것을 참고, S.의 독립 -1.5 K입니다 이 전원 법 조직이 배열 2 크기의 독립, 시간적 해상도 Δt 2, 상당한 nLFP를 식별하는 데 사용되는 임계값 7 deflections. 의 연결 그룹 크기 7 nLFP 진폭의 비늘은 nLFPs의 규모 - 불변량 조직 규모 - 불변량, 즉 프랙탈, 주문 O를 반영하기 때문에F 로컬 모든 크기를 포함의 연결 그룹을 동기화. <img src="/files/ftp_upload/2949/2949fig1.jpg" alt="그림 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 1"> 그림 1. (A) 스레드 유리 반지와 MEA의 측면과 상단 전망 탑재하고, 해당 모자. (B) 보육의 전망 인사이드. 왼쪽 headstage는 인큐베이터 조건에 따라 하나의 문화에서 녹음 수 있도록 탑재합니다. 오른쪽 : 문화의 성장을 위해 수많은 MEAs을 잡고 트레이. 사이드 바퀴 : 문화의 성장에 필요한 잠수 분위기 노출 단계를 교체를위한 모터 제어 락을 장치를 스테핑. 대뇌 피질 - VTA 공동 문화에 사용되는 코로나 쥐 조각을위한 (C) 도식 도면. VTA 복부 tegmental 지역 (vta, 회색)이있는 컴퓨터에 접속 섹션 (왼쪽)와 midbrain 섹션 (중간, 오른쪽)은 깨진 라인을 따라 커팅에 의해 얻을 수 있습니다. CTX : 대뇌 피질, WM : 흰색 문제, CPU : striatum; vta : 폰스 : pontine 공간이 있습니다. 15도 해당 코로나 접시 8, 18, ​​20를 참조하십시오. (D) 위치 및 MEA와 문화의 첫 번째 9 DIV를 통해 자사의 개발에 단일 피질 - VTA의 공동 문화의 성장. 문화와 배열에 미치는 진보적인 확장의 평평화을 확인합니다. 반사 조직 부품 퇴화한 세포 조직 파편을 나타냅니다. 건강한 조직은 가시 광선과 transillumination 아래의 불투명과 회색빛이 있습니다. <img src="/files/ftp_upload/2949/2949fig2.jpg" alt="그림 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 2"> 그림 2. 피질 organotypic 문화에의 연결을 눈사태. (A) 배열에 대한 자발적인 활동의 세 시대의 Overplot는 몇 초으로 구분합니다. 각 활동 기간은 배열에 많은 전극에 부정적인 LFP의 deflections (각 색상 하나의 활동 기간을 라벨)로 구성되어 있습니다. (B) 각 전극에서 nLFPs의 부정적 피크 시간은 활동의 래스터로 조립합니다. 'Column' 같은 구조는 근처 동기 활동 기간을 지적했다. (C) 고도로 한 번에 규모에 동기 나타나는 열이 높은 시간적 비늘 (3 시간적 비늘이 그림 참조)에 여러 개의 컬럼으로 구성됩니다합니다. 의 연결을 눈사태 알고리즘 (D) 도식 표현. 소음 SD - X의 문턱을 넘어 부정적인 LFP의 deflections (n​​LFP)의 2 X 2 전극 배열 피크 시간 및 진폭에 식별됩니다. nLFPs의 Spatiotemporal 조직 폭 Δt의 연속 활성 시간 방식으로 클러스터입니다. 클러스터의 크기가 nLFP과 적극적인 사이트의 수를 즉, 전극에 의해 식별됩니다 (에스이 = 4), 또는 nLFP amplitudes의 통합 SUM (S = 130 μV). 생활 시간은 Δt의 배수 단위로 측정됩니다. 클러스터 크기 배포 (E, F) 전원 법률의 연결 눈사태로 클러스터를 식별합니다. 배열 (여기서는 200 μm의)에 대한 Δd 특정 interelectrode 거리의 선택은 역학을 관찰해야되는 특정 Δt를 소개합니다. 보다 구체적으로, 비율이있는 Δd / Δt는 전원 율법의 슬로프 α는 눈사태의 연결을 2,4,5에 대한 -1.5 대략있는에, 네트워크의 평균 전파 속도를 대략. 하시기 바랍니다 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/2949/2949largefig2.jpg">여기를 클릭</a> 그림 2의 더 큰 버전을 볼 수 있습니다.

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<li>Beggs, J. M., Plenz, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuronal+avalanches+in+neocortical+circuits%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Neuronal avalanches in neocortical circuits.</a> J. Neurosci. 23, 11167-11177 (2003).</li>
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<li>Plenz, D., Herrera-Marschitz, M., Kitai, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphological+organization+of+the+globus+pallidus-subthalamic+nucleus+system+studied+in+organotypic+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Comp.+Neurol%22%5BJournal%5D)">Morphological organization of the globus pallidus-subthalamic nucleus system studied in organotypic cultures.</a> J. Comp. Neurol. 397, 437-457 (1998).</li>
<li>Plenz, D., Kitai, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+basal+ganglia+pacemaker+formed+by+the+subthalamic+nucleus+and+external+globus+pallidus+%5Bsee+comments%5D%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">A basal ganglia pacemaker formed by the subthalamic nucleus and external globus pallidus [see comments].</a> Nature. 400, 677-682 (1999).</li>
<li>Plenz, D., Kitai, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+high-frequency+oscillations+in+local+circuits+of+rat+somatosensory+cortex+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Generation of high-frequency oscillations in local circuits of rat somatosensory cortex cultures.</a> J Neurophysiol. 76, 4180-4184 (1996).</li>
<li>Klostermann, O., Wahle, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patterns+of+spontaneous+activity+and+morphology+of+interneuron+types+in+organotypic+cortex+and+thalamus-cortex+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci%22%5BJournal%5D)">Patterns of spontaneous activity and morphology of interneuron types in organotypic cortex and thalamus-cortex cultures.</a> Neurosci. 92, 1243-1259 (1999).</li>
<li>Cowan, R. L., Wilson, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spontaneous+firing+patterns+and+axonal+projections+of+single+cortico-striatal+neurons+in+the+rat+medial+agranular+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Spontaneous firing patterns and axonal projections of single cortico-striatal neurons in the rat medial agranular cortex.</a> J. Neurophysiol. 71, 17-32 (1994).</li>
<li>Porter, L. L., Rizzo, E., Hornung, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dopamine+affects+parvalbumin+expression+during+cortical+development+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Dopamine affects parvalbumin expression during cortical development in vitro.</a> J Neurosci. 19, 8990-9003 (1999).</li>
</ol>

관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

1. 기술적 문제 : <ol><li> 멸균 기술은. MEAs 문화 준비의 준비는 모두 무균 조건 하에서 층류 후드 안에서 수행됩니다. 의 연결 활동에 영향을 미칠 항생제는, 준비 및 문화 과정 언제든지 사용되지 않습니다. </li><li> 플라즈마 / 트롬빈 응고 및 MEA의 MEA. 조직 생존에 조직 준수는 플라즈마 / 트롬빈 응고와 분위기 조직 노출 시간에 필요한 시간 사이에 신중 균형이 필요합니다. 분위기를 장기간 노출이 조직 변성을 실행하는 동안 짧은 응고 시간은 MEA에서 섹션의 조기 부대를 위험. 트롬빈 솔루션의 강도가 응집 과정의 속도를 결정하기 때문에, 그것은 성공적으로 MEA 표면에, 건강한 문화를 부착을위한 매우 중요한 매개 변수입니다. 우리는 1000 단위 (, 1 NIH 단위 = 0.324 ± 0.073 MG 1KU)를 사용하여 최상의 결과를 얻습니다. 중요한 것은, culturing 동안 플라즈마 - 파열을 증진 공간 이기종 응고에서 혈장 / 트롬빈 솔루션 결과의 혼합 불완전. 이러한 플라즈마 &#39;구멍&#39;은 심각하게 문화의 건강 영향을 microelectrodes에서 문화를 분리,이를 electrophysiological 녹음의 품질을 저하. MEA / 조직 조립하는 동안 냉각 플레이트로 작업하면 응고를 느려지고 플라즈마 / 트롬빈 솔루션 및 조직 섹션의 적절한 위치의 균일한 혼합을 허용합니다. 마찬가지로, 응고 불과 5 분 후에 잠수함의 문화를 문화 챔버에 하나의 물방울에 미디어를 추가하여 크게 표면 긴장으로 인해 조직 detachments의 위험을 줄여줍니다. 성공적인 문화는 MEA에 평평하고 약간 불완전한 조직 MEA 연락처 또는 조직 변성 (예 : 그림. 1D)의 주요 증상없이 몇 주 동안 건전한 성장을 확장됩니다. </li><li> 조직 해부. 마이크로 칼 크게 우리의 해부 과정을 개선했습니다. 우리가 폭 ~ 2mm &#39;블레이드&#39;는 펜치를 사용하여 분리하고, 메스 홀더와 함께 그들을 보유하고있는 경우에서 우리는 더블 에지 면도날을 (100050-00 - - 깨뜨릴 수있는 메스 블레이드 파인 과학 도구)을 사용합니다. 블레이드의 부드러운, 수직 회사 모션을 사용하여 코로나 슬라이스의 해부 조직 샘플은이를 크게 인해 문화 건강을 개선하는 전체 조직의 철수에 기계적 스트레스를 감소. </li><li> 조직 냉각. 준비하는 동안 조각과 조직 섹션의 적절한 냉각 문화 성공을 위해 필수적입니다. 우리는 금속 디스크에 아래 첨부 펠티어 요소의 기본 사용자 정의 - 만든 차가운 접시를 사용합니다. 펠티어 요소에 의해 만들어진 열기는 차가운 물 세례를 통해 제거됩니다. 이것은 크게 준비 시간을 단축하고 준비의 각 단계 동안 냉각 standardizes (Dold 연구소 및 엔지니어링 131 플랜타티온 박사 세귄, TX 78155;. (830) 560-1471)). </li><li> 인큐베이터 상태. 정밀한 내부 로킹 조건 맞춤 제작 인큐베이터는 MEAs의 조각 재배에 성공의 열쇠되었습니다. (현재 없습니다 상용) Multichannelsystems하여 자체 디자인 원본에 따라, 내부 로킹 장치는 두 개의 큰 측면 바퀴에 연결된 트레이로 구성되어 있습니다. 스테핑 모터와 컴퓨터 제어 (각도를 락을 속도를 락을하고, 간헐이 일시 중지) 정확한 로킹 궤도에 대한 수 있습니다. 결국, 슬라이스 문화 느린 교대의 분위기와 문화 매체에 노출해야합니다. 전통적인 접근 방식은 천천히가 긴 축을 따라 회전 좁은 튜브로 슬라이스 문화를 배치하는 것입니다. 여기 천천히 회전은 회전 자체에 의한 기계적 스트레스를 생산하지 않으며, 회전 속도는 약 5 최적의 &#39;수유 / 호흡&#39;사이클 얻을 정도로 높은 - 10 분 시간을. MEA 회의소 ~ 2 CC 자사의 총 부피, 그리고 조직 자체에 의해 중간 조절에 필요한 작은 문화 매체 볼륨의 더 많은 콤팩트 인테리어는 상당한 도전 포즈. ± ~ 70 ° 각도 (사이클 타임 : ~ 200 S) 사이의 MEA 로킹으로, 액상과 분위기를 사이에 문화의 전환으로 락을 속도가 느려지고, 그리고 분위기 확장 노출에 대한 극단적인 각도에서 흔들어 중단하는 것이있다 문화 생존을위한 필수되었습니다. </li></ol> 2. 의 연결 눈사태를 공부 피질 문화의 발달 연령 쥐의 대뇌 피질에서 급성 조각은 일반적으로 쿨러 0 가져옵니다 - 1 MEA에 많은 주 동안 교양. 초기 연구는 명확하게 하나의 피질 슬라이스 문화는 체외에서 몇 주 후에 쉽게 생체내 세포 클래스 18,18-21에 비교할 수있는 식별 세포 유형 계층 구조를 유지하는 것을 증명하고있다. 체외 시스템이 계층 조직은 편리 thalamic을 연구하는 데 사용되었습니다개발하는 동안 22-24 피질의 innervation뿐만 아니라 같은 striatum 25,26으로 subcortical 구조를 운전. 사실, 뇌 영역 이내에 전체의 연결 관계 형성의 특이성은 예를 들어 그 피질 - 기저 신경 회로 27-30의 다양한 세부 프로젝션 시스템을 느껴볼 체외 시스템에 복합 건설을 허용합니다. . 체외, 단일 피질의 조각 31 피질의 조각 striatum 26 또는 시상 자발적인 32 쇼와 함께 공동 교양 위 아래로 일반적으로 우레탄 anesthetized 쥐 33 생체내에서 발견 주에서 6 주 - 4 이후 이러한 최대 - 미국의 벌금 시간적 조직의 특징을지지 중첩된 θ 및 γ - oscillations 피라미드 뉴런과 빠른 속도로 급상승 GABAergic interneurons 31 electrophysiologically 성숙 네트워크의 암시. 중요한 것은, 도파민 D2 - 수용체 자극의 부재에서 parvalbumin 양성 피질 interneurons의 성숙은 피질의 슬라이스 문화 34 약 2 주간에 의해 지연될 수 있습니다. 이러한 결과의 발달 시간 코스 라인에 중첩 θ -, β 및 피질의 조각이에 돌출 dopaminergic 신경이 들어있는 복부 tegmental 지역 (VTA)와 공동으로 양식하는 경우 γ - oscillations는 생체내에 일치합니다 피질 6. 이러한 연구는 결정적인 성숙 빠른 GABAergic 억제에 ​​따라, 피질 2,4의 표면 레이어에있는 눈사태의 연결을 공부하면 아주 신경은 대뇌 피질의 조직의 적절한 성숙을 보장하기 위해 이동하는 것을 나타냅니다. 의 연결 눈사태가 2 시간 코스 이상의 단일 피질 문화에서 발생하는 동안 - 생체내 개발에 일치하는 발달 시간 과정을 필요로 할 때 오주 4, 피질의 조각이 공동 culturing의 피질의 조각으로 적절한 도파민 수용체 자극, 예를 들어 필요 VTA 6.

<table border="1"><tbody><tr><th> 시약의 이름 </th><th> 회사 </th><th> 카탈로그 번호 </th><th> 댓글 (옵션) </th></tr><tr><td> 통합 평면 multielectrode 어레이 </td><td> 멀티채널 시스템 ( <a href="http://www.multichannelsystems.com">www.multichannelsystems.com</a> ) 에이러 과학 계측기 (www.alascience.com) </td><td> <a href="http://www.multichannelsystems.com/products-mea/product-details/products/158/20030ir-ito-wo.html">200/30iR-ITO-w/o</a> </td><td> 티타늄 질산 (TIN) 전극 (30mm 직경)는 낮은 임피던스 (1 kHz에서에서 ~ 1.5 kΩ)과 뛰어난 넓은 밴드 레코딩 (- 링없는 W / O)의 결과로 큰 표면을 가지고 </td></tr><tr><td> 챔버 유리 </td><td> www.aceglass.com </td><td> 7620-32 </td><td> 스레드 유리 실린더 </td></tr><tr><td> 챔버 캡 </td><td> www.aceglass.com </td><td> 7622-114 </td><td> 테플론 삽입과 플라스틱 캡 </td></tr><tr><td> Sylgard 184 </td><td> www.wpiinc.com </td><td> SYLG184 </td><td> 두 부분의 실리콘 엘라스토머 </td></tr><tr><td> 폴리 - D - 라이신 </td><td> 시그마 - 알드리치 </td><td> P6407 - 5mg </td><td> γ - 조사, 동결 건조된 분말, 전지 시험 교양. 사용하기 전에 5 ML deionised 물을 재구성. </td></tr><tr><td> Gey의 밸런스드 소금 솔루션 </td><td> 시그마 - 알드리치 </td><td> G9779 - 500mL </td><td> 무균 여과 및 양식 테스트 </td></tr><tr><td> 닭고기 플라즈마 </td><td> 시그마 - 알드리치 </td><td> P3266 - 5mL </td><td> 사용하기 전에 5 ML 탈이온수와 동결 건조된, reconstitute. </td></tr><tr><td> 트롬빈 </td><td> 시그마 - 알드리치 </td><td> T6634 - 1KU </td><td> 보빈 플라즈마에서 분말 양식을 동결 건조된. </td></tr><tr><td> 말 혈청 </td><td> 시그마 - 알드리치 </td><td> H1138 - 100mL </td><td> 기증자 무리, 열 inactivated, 세포 문화는 테스트 </td></tr><tr><td> 기초 중간 이글 </td><td> Invitrogen </td><td> 21010-046 </td><td> 1X, 500 ML - (+) 얼스 솔츠, (-) L - 글루타민) </td></tr><tr><td> 행크의 버퍼 생리 식염수 </td><td> Invitrogen </td><td> 24020-117 </td><td> 500 ML - (+) 마그네슘 (+) 칼슘, W / 페놀 레드) </td></tr><tr><td> 챔버 슬라이드 </td><td> 무균 실험실 - 테크 - 상공 회의소 슬라이드 W / 커버 (Nunc) </td><td> 177429 </td><td></td></tr><tr><td> 유리딘 </td><td> 시그마 - 알드리치 </td><td> U3003 </td><td></td></tr><tr><td> ARA - C 사이 토신 - β - D - arabinofuranoside </td><td> 시그마 - 알드리치 </td><td> C6645 </td><td></td></tr><tr><td> 5 - 플루오로 - 2&#39; - deoxyuridine </td><td> 시그마 - 알드리치 </td><td> F0503 </td><td></td></tr></tbody></table>

organotypic 문화에의 연결을 눈사태의 다중 전극 어레이 레코딩

Multi-electrode Array Recordings of Neuronal Avalanches in Organotypic Cultures

대뇌 피질도 특정 입력 또는 모터 출력의 부재에 저절로 활성화됩니다. 개발하는 동안,이 활동은 마이 그 레이션과 차별화 피질 세포 유형의 연결과 연결 1의 형성에 중요합니다. 성숙한 동물에서 지속적인 활동이 과거와 감각 자극이 완벽하게 미래의 행동을 계산하기 위해 통합되는에 동물의 현재 상태를 반영합니다. 따라서, 지속적인 즉, 자발적인 활동의 조직의 명확한 이해 피질의 기능을 이해하는 필수 조건이다. 수많은 레코딩 기술은 피질에 지속적인 활동이 그의 개인적인 활동 transiently 세포 microelectrodes와 지역 현장 잠재력 (LFP)에서 감지가 가능하다 더 큰 이벤트 합계, 또는 뇌파 (EEG), magnetoencephalogram (MEG 많은 뉴런으로 구성됩니다 것으로 나타났다 ), 그리고 기능적인 자기 공명 영상 (fMRI)에서 대담한 신호. mesoscopic 규모에서 높은 시간적 및 공간적 해상도 (뉴런의 여러 수천)으로의 연결 인구 활동을 공부하면 LFP은 현재 선택의 방법입니다. 세포외 microelectrode에서 로컬 microvolts의 수백까지 LFP 급격한 deflections의 공간 neighbored 뉴런 결과의 활동을 동기화. microelectrodes의 배열을 사용하는 경우, 이러한 deflections의 단체가 편리하게 공간과 시간에 모니터링할 수 있습니다. 의 연결 눈사태는 뇌 2,3에 지속의 연결 활동의 규모 - 불변량 spatiotemporal 조직을 설명합니다. 그들은 anesthetized 쥐 6 생체내에서 체외 4,5 년 설립 피질의 표면 레이어에 특정되며, 정신 원숭이 7인치 중요한 이론적 경험적 연구 모두 2,8-10는 눈사태의 연결 정보 전송 및 정보 처리를 최적화 피질의 정교하게 균형 임계 상태 역학을 나타내는 것이 좋습니다. 그들이 정확하게 제어 조건 하에서 눈사태 활동의 안정적인 레코딩을 허용으로의 연결을 눈사태 개발, 유지 보수 및 규제의 메커니즘을 연구하기 위해 체외 준비에 매우 유용합니다. 현재 프로토콜은 평면 통합 microelectrode 배열 (;도 11-14을 참조하십시오 MEA)에 성장 organotypic 피질의 문화, 즉 슬라이스 문화에서 표면 레이어 개발을 활용하여 체외로의 연결을 눈사태을 공부하는 방법에 대해 설명합니다.

대뇌 피질의 임계 상태 역학 지표의 연결 눈사태, 즉 스케일 - 불변량 spatio - 관자놀이 활동 파열을 연구하는 강력한 방법입니다. 눈사태 정확하게 제어 조건 하에서 평면 통합 다중 전극 어레이 (MEA)와 활동의 장기 측정을 허용 교양 피질의 표면 레이어를 개발에 자발적으로 등장.

Organotypic 문화에의 연결을 눈사태의 다중 전극 어레이 레코딩

피질은 특정 입력이나 운동 출력이 없는 상태에서도 자발적으로 활성화됩니다. 발달 과정에서 이러한 활동은 ...에 중요합니다.

본 실험의 목적은 대뇌 피질의 임계 상태 역동성의 특징인 뉴런 아발란체(neuronal avalanches)로 건강한 뇌 활동이 자기 조직화되는 과정을 연구하는 것입니다. 이는 관상면 층상 피질 슬라이스와 피질에 발달상 중요한 도파민성 입력을 제공하는 중뇌 슬라이스를 결합함으로써 이루어집니다. 두 번째 단계로, 피질-중뇌 공배양물을 다전극 어레이(multi electrode array)에서 배양하여 배양 내 뉴런 활동의 다지점 자극 및 기록이 가능하도록 합니다.다음으로, 일반 공기와 배양액에 교대로 노출되도록 설계된 맞춤형 인큐베이터에서 처음 1~2주 동안 공동 배양물이 평평하게 펴지고 확장되어 MEA 표면에 부착되도록 합니다. 시공간적 국소 전위 폭발(local field potential bursts)이 뉴런 아발란체(neuronal avalanches)로 자발적으로 자기 조직화됨을 보여주는 유체 결과가 도출됩니다. 이는 MEA 기록과 아발란체 크기의 멱법칙(power law)을 식별하는 오프라인 아발란체 분석을 기반으로 합니다.해리된 배양법과 같은 기존 방법들에 비해 이 기술이 갖는 주요 장점은 시스템 신경과학적 측면입니다. 여러 뇌 영역을 함께 공동 배양할 수 있으며, 이러한 다영역 배양물은 피질층 및 투사 시스템과 같이 거시적 규모에서 정확한 뇌 조직 구조를 형성합니다. 이 기술의 응용 범위는 단순히 뉴런 아발란체(neuronal avalanches) 연구에만 국한되지 않습니다.예를 들어, 정밀하게 제어된 in vitro 조건 하에서 네트워크 수준의 자극 반응을 연구할 수 있습니다. 혈장 트롬빈 혼합물의 적절한 도포와 MEA 상의 조직 배치는 익히기 어렵기 때문에, 이 방법에 대한 시각적 시연이 매우 중요합니다. 이러한 단계들은 정확한 타이밍과 적절한 온도 구배가 필요하며, 섬세한 MEA 표면을 직접 접촉하지 않도록 주의해야 합니다.기록을 위한 멸균 가능한 밀폐형 유리 챔버를 준비하려면, 먼저 테플론 플라스틱 캡이 달린 나사산 유리 실린더를 나사산 바닥에서 약 2mm 떨어진 지점에서 절단합니다. 이는 배양 챔버를 안전하고 단단하게 폐쇄하기 위해 필요합니다. 그 다음, 유리 링을 물로 세 번 헹구어 세척한 후, 200 proof 에틸 알코올에서 5분 동안 끓여 소독합니다.이를 따로 두어 건조시키십시오. 유리 링을 MEA 표면에 부착하려면 실리콘 용액이 필요합니다. Cell Guard 180 4 실리콘 엘라스토머 키트를 사용하여 파트 A와 B를 각각 15 milliliters씩 넣고 충분히 혼합하십시오. 그 후 기포를 제거하기 위해 15분 동안 그대로 둡니다.용액을 1 mL씩 Eloqua 튜브에 나누어 담고, 향후 사용을 위해 -20 °C에서 보관하십시오. 이제 23 °C의 실리콘 1 mL를 소구경 바늘이 달린 주사기에 취해 유리 링의 연마되지 않은 절단면에 도포하여 MEA에 유리 링을 접착합니다. 그런 다음 유리 링을 MEA의 중앙에 맞추고, 밀폐력을 높이기 위해 링 외곽에 실리콘을 한 층 더 도포하십시오.핫플레이트 위에서 약 60 °C로 1~2시간 동안 경화시킵니다. 다음으로, 층류 정화 작업대(lamina flow hood) 아래에서 MEA 챔버와 챔버 캡을 탈이온수로 3회 헹구고, 마지막 헹굼 단계에서 70% 알코올로 3회 헹구어 멸균합니다. 챔버를 알코올에 10분 동안 담가 둡니다.그 다음 챔버와 캡 내부를 10분 동안 UV 광선에 노출시킵니다. 120 °C에서 45분 동안 오토클레이브 멸균합니다. 멸균이 완료되면 이를 건조시킵니다.이제 배양 챔버 내부의 MEA 표면을 poly D lysine으로 코팅합니다. 본 실험에 사용된 새로운 MEA는 상당히 친유성이므로, 용액을 여러 번 떨어뜨려 코팅하십시오. 전극 그리드에서 용액을 흡입하여 제거합니다.보관 및 향후 사용을 위해 캡을 씌워 MEA 챔버를 밀봉합니다. 이 절차를 통해 약 12개의 공동 배양을 위한 피질 및 VTA 절편을 얻을 수 있으며, 생후 1~2일 된 건강한 동물을 사용하여 층류 후드(lamina flow hood) 내의 멸균 상태에서 수행해야 합니다. 조직 수집에 소요되는 총 시간은 1시간 미만이어야 합니다. 안락사 후, 먼저 가위로 두 번의 측면 절개를 하여 두피에서 피부를 제거함으로써 뇌 적출을 시작합니다.미세 안과 가위를 사용하여 두개골을 제거한 후 절개합니다. 소뇌 피질 접합부에서 정중 시상면을 따라 한 번, 관상면을 따라 한 번 절개합니다. 네 개의 두개골 플랩을 모두 뒤집어 뇌를 노출시킵니다. 다음으로 날카로운 스파출러를 사용하여 후각구의 전면을 절단합니다.그 다음 스패튤라를 뇌 아래쪽으로 4분면 방향으로 전진시킵니다. 뇌를 두개골에서 조심스럽게 들어 올려, 급속 냉각 및 일시 보관을 위해 차가운 가즈(gaze) 용액 속으로 미끄러지듯 넣습니다.위의 과정을 다른 두 개의 뇌에 대해서도 반복합니다. VTA 조직을 얻으려면, 뇌를 멸균된 건조 페트리 접시에 옮깁니다. 작은 스파출라를 사용하여 각 뇌를 옆으로 약 1cm 정도 부드럽게 밀어 과잉 액체를 제거합니다.그 다음 면도날을 사용하여 소뇌 높이에서 관상면 수직 절개를 하여 뇌간을 제거합니다. 이제 슬라이싱 과정 동안 뇌를 기계적으로 고정하기 위해 마운팅 디스크 위에 아가 블록을 접착합니다. 그런 다음 작은 스파출라를 사용하여 디스크 위 아가 블록 앞 몇 밀리미터 지점에 순간접착제를 얇게 바르되, 접착제가 아가에 닿지 않도록 주의하십시오.각 뇌를 전두극(frontal pole)이 아래로 향하도록 옮겨 고정합니다. 전두극이 마운팅 디스크에 접착되었는지, 그리고 복측(ventral side)이 접착제 잔여물 없이 아가(agar)에 닿아 있는지 확인하십시오. 이렇게 하면 절단 중에 적절한 기계적 안정성을 확보하고 절단된 슬라이스를 쉽게 들어 올릴 수 있습니다.다음으로, 뇌가 장착된 마운팅 디스크를 냉각된 gaze 용액이 채워진 vibram 트레이에 조심스럽게 담가 고정합니다. 그 후, 깨끗하게 세척한 면도날을 사용하여 최고 진동 주파수와 상대적으로 낮은 전진 속도로 중뇌의 400 µm 두께 관상 절편을 절단합니다. 흡입 벌브가 달린 inverted pasta 피펫을 사용하여 VTA가 포함된 절편을 수집하고, 이를 멸균된 냉각 gaze 용액이 채워진 35 x 10 mm 페트리 접시에 옮겨 피질 절편을 준비합니다. 이전의 절단 단계를 반복하되, 피질과 소뇌 사이에 수직 절단을 실시하고 전두극이 위를 향하도록 하여 4개의 뇌를 마운팅합니다.선조체 수준부터 시작하여 두께 350 µm의 관상면 절편을 약 3개 수집합니다. 이제 부러진 면도날로 만든 마이크로 나이프를 사용하여, 실체 현미경 하에서 전전두엽 피질과 VTA를 포함하는 중뇌 영역의 너비 약 2 mm 관상면 절편을 박리합니다. 조직 절편을 차가운 가제 용액(gaze solution)이 채워진 작은 접시에 각각 따로 수집합니다.MEA 챔버의 첫 번째 위치에 조직을 마운팅하기 위해, 먼저 실온에서 스테레오 현미경 아래에 MEA를 두고 전극 어레이가 초점에 맞도록 조정합니다. 그런 다음, 깨끗하고 먼지가 없으며 멸균된 전극 어레이 매트릭스 중앙에 25 µL의 플라스마 방울을 떨어뜨립니다. 소형 스패튤라를 사용하여 피질 및 VTA 섹션을 플라스마 방울 속으로 조심스럽게 밀어 넣습니다.이제 MEA를 냉각 플레이트에 놓고 시야를 다시 맞춥니다. 플라스마 방울에 25 µL의 thrombin을 추가하기 전, 약 15초 동안 냉각시킵니다. 그런 다음 thrombin 피펫 팁을 사용하여 플라스마-thrombin 혼합물을 MEA 전체에 작은 원을 그리듯 조심스럽게 펴 바릅니다.부서지기 쉬운 전극 어레이를 직접 만지지 않도록 주의하십시오. 다음으로, 피질의 배측 경계가 어레이의 두 번째 전극 열을 따라 오도록 하여 어레이 위에 조심스럽게 배치합니다. 이렇게 하면 발달하는 표층이 결과적으로 어레이의 나머지 부분을 덮게 됩니다.그런 다음 VTA를 피질 절편의 복측 경계에 인접하게 배치합니다. 이제 MEA 챔버의 캡을 덮고 느슨하게 닫아 높은 습도를 유지합니다. 플라스마 트롬빈의 응고 및 정착을 위해 MEA 배양 어셈블리를 후드 내 실온에서 약 6분 동안 그대로 둡니다.그동안 동일한 절차를 반복하여 세 개의 배양액을 추가로 준비합니다. 다음으로, 25 x 5/8 gauge 바늘이 장착된 1 cc 주사기를 사용하여 배양 챔버에 600 µL의 배양액을 소량씩 조심스럽게 첨가합니다. 그런 다음 MEA 챔버를 단단히 닫고, MEA 배양 어셈블리를 인큐베이터 내부의 로킹 보관 트레이에 놓습니다.체외 배양 2일 후, mitosis 억제제 10 µL를 첨가합니다. 그다음 체외 배양 4일째와 이후 매 4일마다 배양액의 60%를 교체합니다. 정상적인 성장 과정에서 배양물은 상당히 평평해지며 등쪽으로 약간 확장됩니다.표층 피질층의 발달로 인해, 건강한 배양물은 명시야(brightfield)에서 불투명한 회색 조직으로 식별됩니다. 반대로, 배양 준비 후 약 10일에서 12일이 지나면 죽은 퇴행성 세포의 특징인 밝게 반사되는 소포가 나타나며, 이때 기록 및 자극을 위한 준비가 완료된 것입니다. 기록 세션을 시작하려면, MEA를 보관 트레이에서 기록 헤드 스테이지로 옮깁니다.국소 전위 또는 LFP를 기록하려면 1~200 Hz의 밴드 패스 필터를 사용하십시오. 다중 단위 활동(Multiunit activity) 또한 300~3000 Hz의 밴드 패스 필터를 사용하여 연구할 수 있습니다. 건강한 자발적 활동은 다양한 크기와 지속 시간의 버스트 형태로 발생하는 경향이 있습니다.LFP와 단위 활동(unit activity) 사이의 관계를 연구하기 위해, LFP의 스파이크 트리거 평균(spike triggered averages)을 계산할 수 있습니다. 이러한 피질 배양체의 경우, 자극 유발 활동을 기록할 때 음의 LFP 편향이 뉴런의 스파이킹과 상관관계를 보입니다. 먼저, 자극 발생기를 제어하는 소프트웨어를 사용하여 자극의 시간적 파형과 진폭을 지정합니다.유용한 자극 패러다임은 양극 사각 파형을 이용한 전류 제어 전하 중성 단일 충격입니다. 다음으로, 자극을 전달하는 데 사용할 전극을 선택합니다. 전형적인 자극 유발 LFP 반응은 자발적 활동 버스트와 유사하게 나타납니다.블랭킹 회로는 자극 중 증폭기를 분리하여 자극 아티팩트를 줄이고 증폭기의 포화를 방지합니다. 자극 전극은 자극 후 회복하는 데 수 초가 소요되므로 반응 활동 기록에 사용할 수 없습니다. MEA에서는 한 전극의 활동이 다른 부위의 활동과 함께 나타나는 시공간적 클러스터 형태로 발생하는 경향이 있습니다.동시에, 이러한 활동 기간 동안의 전형적인 LFP 파형을 각 클러스터별로 수 초 간격으로 발생한 세 개의 클러스터를 겹쳐 그려 여기에서 보여줍니다. 여러 음의 sd 임계값을 넘는 NLFP 피크를 추출할 때, 1초의 창 내에서 여러 전극에서 음의 LFP 편향을 확인할 수 있으며, NLFP 피크 시간 형태의 활동은 다양한 전극에서 거의 동시에 발생한 NPS를 점의 열로 나타내는 Rasta를 통해 편리하게 시각화할 수 있습니다. 이러한 활동의 시공간적 조직은 상당히 복잡합니다.낮은 시간적 해상도에서 어느 정도 균질하게 보이는 컬럼들은 더 높은 시간적 해상도에서는 개별적인 클러스터들로 구성되며, 이러한 구조가 반복됩니다. 공간, GEOTEMPORAL 및 LFP 클러스터의 출현은 피질 네트워크 내에서 매우 조직적으로 이루어집니다. 구체적으로, 이러한 조직화는 뉴런 아발란체(neuronal avalanches)에 대해 척도 불변성(scale invariant)을 보입니다.이는 주어진 시간 분해능 Delta T에서 클러스터 크기의 확률을 계산함으로써 입증됩니다. 여기서 클러스터는 동일하거나 연속적인 시간 빈(time bin)에서 발생하는 NL FPS로 구성됩니다. 이러한 클러스터의 크기가 클러스터당 총 NFPS 수 또는 클러스터당 통합 NLFP 진폭으로 표현될 때, 클러스터 크기 분포는 -1.5에 가까운 지수를 갖는 멱법칙을 나타냅니다. 이 영상을 시청한 후에는 신경 활동의 자기 조직화를 연구하기 위해 뇌 조직을 정밀하게 해부하고 다중 전극 어레이(multi electrode arrays)에서 배양하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.이러한 방법들은 피질 네트워크에서 자발적 활동과 자극 유발 활동 사이의 관계를 연구하는 데에도 사용되어 왔습니다.

multi-electrode-array-recordings-neuronal-avalanches-organotypic

Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

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