August 9th, 2012
방광 확대의 외과 단계는 murine와 쥐 모델에서 3 차원 공사장 공중 발판을 사용하여 설명됩니다. 방광 확대에 사용할 biomaterial 구성의 효능을 테스트하려면 깨어 및 anesthetized 모두 cystometry에 대한 기술이 제공됩니다.
이 절차의 목적은 세포 분석을 통해 기능 데이터를 획득하여 방광 확대를 위한 생체 재료의 사용을 평가하는 것입니다. 이것은 첫 번째 aner mosin, 즉 방광에 생성된 결함에 대한 골격에 의해 수행됩니다. 절차의 두 번째 단계는 방광루관을 복부에 터널링하는 것입니다.
세 번째 단계는 방광절개관을 증강된 방광에 삽입하고 동물의 등쪽에 고정하는 것입니다. 마지막 단계는 기능적 관점에서 증강 방광을 평가하기 위해 세포 분석을 수행하는 것입니다. 궁극적으로, 결과는 의식적 세포 분석을 통해 방광 용량 및 순응도, 배뇨 압력, 영양 주기 시간 및 배뇨 후 잔류 부피의 변화를 보여줄 수 있습니다.
이 기술의 의미는 방광 용량, 순응도 및 전반적인 기능 장애로 이어지는 방광 또는 요도의 선천적 및 후천적 기형의 치료로 확장됩니다. 방광 확대술에 사용되는 새로운 생체 재료는 기능적으로 평가해야 하기 때문입니다. 복부 수술을 준비한 후 메스를 사용하여 피부를 통해 정중선 아래쪽을 절개합니다.
톱니가 있는 집게를 사용하여 직근을 들어 올리고 미세한 메트와 연고 가위로 근육의 뒤쪽 표면을 절개하여 피부 절개가 절개 상처 부위를 통해 방광을 전달하는 전체 길이에 대해 정중선의 나머지 근육 크기를 조정합니다. 하루에 한 번, 방광의 후벽을 통해 봉합한 다음 방광 장소의 전벽을 통해 봉합합니다. 방광의 측면으로 추가 봉합사는 이러한 봉합사를 묶지 않습니다.
봉합사가 불법 행위로 고정되면 방광은 약 1cm 정사각형 크기를 가지며 방광은 방광 벽을 통해 세로로 정중선을 따라 방광의 돔보다 약간 낮습니다. 이러한 봉합사는 방광 조직을 통해 쉽게 당겨질 수 있으므로 너무 많은 장력을 가하지 않도록 주의하십시오.이 단계에서는 골격의 문합을 위해 루프 확대가 선호됩니다. 가는 가위를 사용하여 실크 골격을 방광 결손의 대략적인 영역까지 자릅니다.
골격의 한쪽 모서리에서 시작하여 연속 실행 방식으로 방광에 봉합합니다. 결손 주위를 완전히 방수 밀봉하기 위해서는 외과의가 방광에 대한 지지체의 장력 없는 방수 문합을 수행하는 것이 매우 중요합니다. 이렇게 하면 복강 내 누출이 동물 폐사를 초래할 가능성이 있으므로 방광 내부의 모든 소변을 격리
할 수 있습니다.테스트로 30게이지 피하 주사 바늘을 사용하여 방광에 물을 채웁니다. 누출이 발견되면 추가 중단된 봉합사로 닫으십시오. 그런 다음 복벽을 닫기 전에 재건된 방광을 복부로 다시 줄입니다.
직근과 피하 조직에 부피바카인을 주입하여 국소 마취를 하고 절개 부위를 봉합합니다. 다음으로, 연속 실행 봉합사를 사용하여 직근 근육을 다시 근사화하고 연속 실행 봉합사로 피부를 닫습니다. 절개 부위를 세척하고 건조시킨 후 동물을 따뜻하고 깨끗한 케이지로 옮겨 마취에서 깨어납니다.
시작하기 전에 10cm PE 50 튜브 끝에 앵커를 만들어 방광에서 미끄러지지 않도록 합니다. 튜브의 끝을 화염에 부드럽게 노출시켜 플레어링하여 이 작업을 수행합니다. 둘째, 튜브가 막히지 않았는지 확인합니다.
플레어되지 않은 끝 부분에 식염수를 주입하고 흐르도록 합니다. 동물의 수술을 준비한 후 방광을 노출시키기 전에 견갑골 사이의 등쪽을 1cm 절개합니다. metson balm 가위를 사용하여 피부와 아래 근육 사이에 평면을 만듭니다.
그런 다음 가위 끝을 평면에 놓고 벌려 복부 복부에 피하 터널을 만듭니다. 다음으로 동물을 뒤집습니다. 방광을 노출시켜 복부로 되돌립니다.
등쪽 절개 부위로 돌아가서 피하 터널에 작은 클램프를 놓습니다. 손가락을 사용하여 복강 내 내용물을 보호한 다음 클램프 끝을 사용하여 복벽을 뚫습니다. 이제 클램프로 나팔 모양의 튜브의 매끄러운 끝을 잡고 등쪽 절개 부위를 통해 뒤로 당깁니다.
절개 부위를 통해 튜브를 사용하여 나팔 모양의 앵커 끝을 복벽을 지나 당기지 마십시오. 방광의 돔에 지갑 끈 스티치를 놓습니다. 봉합사의 느슨한 끝 부분에 작은 클램프를 남겨 두어 실수로 실밥을 통해 당겨지지 않도록 합니다.
또한 봉합사를 팽팽하게 당기지 마십시오. 이제 EU 18 게이지 바늘은 지갑 끈 봉합사 중앙의 방광 벽을 뚫고 intraluminal이 될 수있을만큼만 뚫습니다. 그런 다음 미세한 집게를 구멍에 놓고 부드럽게 펴서 구멍을 넓힙니다.
카테터의 나팔 모양 끝을 방광의 결손부에 내강내(intraluminal)가 될 때까지 삽입합니다. 지갑 끈 봉합사를 카테터 주위로 더 세게 당겨 묶습니다. 그런 다음 카테터 주위에 자유 봉합사를 한 번 감고 묶습니다.
이제 튜브를 통해 식염수를 천천히 주입하여 방광을 테스트하십시오. 요도에서 흐름이 있는 경우 식염수를 흡인하여 방광을 감압합니다. 다시. 누출이 발견되면 봉합사로 수리해야 하며 소변 누출로 인해 사망할 수 있습니다.
앞에서 설명한 대로 복부 절개 부위를 봉합합니다. 그런 다음 등쪽 절개 부위를 봉합합니다. 등쪽 절개 부위를 봉합하는 절차는 쥐와 생쥐마다 다릅니다.
쥐의 경우 가위를 사용하여 피부 수준에서 카테터 튜브를 자릅니다. 그런 다음 22 게이지의 뭉툭한 팁 바늘을 튜브에 삽입합니다. 런닝 봉합사를 사용하여 튜브 위의 피부를 닫고 바늘 허브를 돌출된 상태로 둡니다.
이제 뭉툭한 바늘에 정맥 주사 라인 캡을 씌우고 카테터 끝을 피부에 고정합니다. 그런 다음 절개 부위를 청소하고 동물이 따뜻한 환경에서 회복할 수 있도록 합니다. 생쥐의 경우 카테터를 다음과 같이 고정하고 카테터를 길게 두고 화염으로 녹여 카테터 끝을 막아야 합니다.
튜브의 끝을 감고 동물의 등쪽에있는 피하 주머니에 그대로 두십시오. 연속 실행 방식으로 튜브 위의 피부를 닫습니다. cytric 분석 전에, 쥐 또는 쥐에 대해 최소 5-7일의 수술 후 회복을 허용하십시오.
세포 분석 당일 회복 후. 생쥐의 경우 먼저 마취 상태에서 등쪽 절개 부위를 열고 피하 주머니에서 코일 튜브를 제거해야 합니다. 튜브를 제거한 후 이 절개 부위를 닫고 마우스가 마취에서 완전히 깨어날 때까지 기다렸다가 세포 분석을 수행하기 전에 동물을 비늘 위에 매달린 대사 케이지에 넣는 것으로 시작합니다.
이제 ttu를 통해 압력 변환기와 주입 펌프에 연결된 27게이지 바늘로 치골 상부 카테터에 접근하십시오. 생리식염수 주입을 시작합니다. 보이드 패턴 추적이 안정화될 때까지 기다립니다.
다음 10-20분 동안 방광 압력이 먼저 상승하고 그 다음에 배뇨가 발생합니다. 그런 다음 15분에서 120분 동안 또는 절차 중 최소 3-4개의 배결 주기를 기록합니다. 카테터가 꼬이거나 기타 합병증이 있는지 확인하십시오.
그런 다음 요역학적 추적을 분석하여 공극 부피, 규정 준수, 수축, 간격, 배변 주기 시간 및 공극 후 잔류 부피에 대한 최대 공극 압력과 같은 매개변수를 도출할 수 있습니다. 이 동영상을 시청한 후에는 생체 재료를 사용하여 방광을 보강하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다. 또한 의식적인 비구속 세포 분석을 사용하여 설치류 방광의 기능을 평가하는 방법도 알게 될 것입니다.
이 기사는 쥐 및 쥐 모델에서 3-D 스캐폴드를 사용한 방광 확장술의 수술 단계를 설명합니다. 방광 확장을 위한 생체 재료 구성의 효과는 각성 및 마취된 방광계 계측법 기술을 통해 테스트됩니다.