Name: 연속 흐름 Microspotter을 사용하여 수정 된 표면에 세포의 침수 인쇄 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-04-22T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 29 s
Description: 배우세요 연속 흐름 마이크로스포터를 사용하여 수정된 표면에 NIH 3T3 섬유아세포를 침수 인쇄하는 방법입니다. 이 기술은 약물 스크리닝과 세포독성 평가에 활용됩니다.

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저자는 기술 지원을 크리스 모로을 인정하고 싶습니다. 자금 조달은 NIH SBIR (R43)에 의해 제공되었다 1R43GM101859-01 (MPI) GRANT10940803을 부여합니다.

1. 문화 제조 예 셀로 <ol><li> 사용 준비가 될 때까지 액체 질소에 NIH/3T3 세포 주식을 저장합니다. </li><li> 50 ㎍ / ml의 스트렙토 마이신을 10 % 소 태아 혈청, 10 mM의 HEPES 완충액, 50 단위 / ㎖ 페니실린 및 보충 된 둘 베코 변형 이글 중간 (DMEM)를 사용 NIH/3T3 세포에 대한 완전한 미디어를 준비한다. </li><li> 37 ℃에서 진탕 수조에서 2 ~ 3 분 동안 세포를 해동 </li><li> 3 분 1,500 XG에 완전한 미디어와 원심 분리기 5 ㎖의 세포를 Resuspend. </li><li> 세포 펠렛을 방해하지 않고 세포의 상층 액을 제거합니다. </li><li> 미디어 5ml에 세포를 재현 탁하고 혈구 세포를 사용하여 계산. <ol><li> 0.5 ML의 microcentrifuge 관에 세포 현탁액과 장소의 10 μl를 제거합니다. </li><li> 세포 현탁액에 트리 판 블루의 10 μl를 추가하고 피펫의 끝으로 저어. </li><li> 피펫 혈구 실에 염색 된 세포의 10 μL. </li><li> 배에서 혈구 세포를 계산확대. <ol><li> 9 큰 사각형의 4의 살아있는 세포 (작은 흰색 공)을 계산합니다. 만 트리 판 블루 염색에서 진한 파란색을 표시하지 않는 살아있는 세포를 계산합니다. </li><li> 세포 본래 세포 현탁액 × 104 세포 / ml의 수의 결과, 대형 사각형 당 세포의 평균 수를 계산한다. </li><li> 1 배 각각 T25 플라스크에 5 ㎖의 총 5 개의 세포 / ml의 밀도로 시드 세포. </li></ol></li><li> 시작 실험 전에 70 %와 80 %의 포화 상태 사이에 문화의 세포. 필요에 따라 2-3 일마다 미디어를 새로 고치거나. </li></ol></li></ol> 2. 인쇄 표면 처리 <ol><li> 마크 조직 문화 처리 된 폴리스티렌 (TCTPS) 12 웰 플레이트의 하단에 마커로 사각형 프린트 헤드 (x 19mm 7mm)의 크기. </li><li> 피펫 (50) 사각형 영역에 소 태아 혈청의 μL 및 팁 전체 영역에 그것을 확산. </li><li> 페트리 접시를 남겨살균 바이오 안전성 후드 O / N의 혈청 자리가 완전히 건조 할 수 있도록합니다. 이 접시는 사용하기 더 이상 2 일 이상 전에 준비를해야합니다. </li></ol> 3. 머지 인쇄 <ol><li> 증류수로 프린트 헤드를 씻어. <ol><li> 증류수로 60mm 페트리 접시를 채우고 표면에 프린트 헤드를 고정. </li><li> 공기 펌프를 사용하여 150 μL / 분에서 2 분 동안 각 라인을 통해 증류수 흐름. </li><li> 페트리 접시에서 물을 버리고 깨끗한 물을 채운다. </li><li> 물에서 아래로 3 회를 프린트 헤드를 이동합니다. </li></ol></li><li> 사전 준비를 12 웰 플레이트에서 혈청 코팅 자리에 프린트 헤드 중심을 도킹합니다. </li><li> 프라임 사전 예열 완료 미디어, 채널 당 300 μL와 프린트 헤드. </li><li> 인쇄 표면에 50,000 세포 / ml의 농도와 60 μL / 분, 채널 당 100 μL에서 세포를 중단. </li><li> 에 도킹 왼쪽 프린트 헤드를 올려 놓고표면 및 세포 배양 인큐베이터에서 매니 폴드는 2 시간 동안 5 % CO 2와 37 ° C로 설정합니다. </li><li> 2 시간 배양 한 후, 프린트 헤드를 제거하고 배양 접시에 뚜껑을 놓습니다. 프린트 헤드를 제거하는 시간은 0 시간 시점으로 간주됩니다. </li></ol> 4. 표준 세포 배양 <ol><li> 2 단계에서 제조 된 혈청 발견 TCTPS 12 - 웰 플레이트 중 하나에 미리 예열 미디어 1 ML을 추가합니다. </li><li> 12 잘 TCTPS 판의 하나의 우물에 2 단계 피펫에 남아있는 세포 현탁액 1 ㎖를 가져 가라. 이 접시에 50,000 세포를 포함하는 문화를 생성합니다. </li><li> 2 시간 동안 37 ° C에서 인큐베이터에서 세포 배양 접시를 놓습니다. </li><li> 2 시간 배양 타이밍을 시작하면; 인쇄 및 시드 샘플 사이의 일관성을 위해이는 0 시간 시점으로 간주됩니다. </li></ol> 5. 문화의 시각화 <ol><li> 0, 2, 24, 두 가지 방법에서 각각 48 시간 걸릴 세포 D 후표준 거꾸로 현미경을 사용하여 위 및 이미지 escribed. <ol><li> 요오드화 프로피 듐 만 사균의 핵으로 혼입되어 적색 형광 염색을 이용하여 세포를 염색. <ol><li> 부드럽게 칼슘과 이물질을 제거하기 위해 마그네슘 (PBS + +)와 인산염 완충 생리 식염수 1 ㎖로 세포를 3 회 헹군다. </li><li> 각 배양 용기에 미리 예열 PBS + +의 1 ML을 추가합니다. </li><li> 각 배양 용기에 프로피 디움 요오드 원액 (1 ㎎ / ㎖) 1 μl를 추가합니다. </li><li> 10 분 동안 37 ° C에서의 propidium 요오드화 염색 세포를 품어. </li></ol></li><li> 이미지 반전에서 10X 및 40X 현미경 배율을 이용하여 세포. </li></ol></li><li> 적절한 생물 학적 용기에 세포를 폐기하십시오. </li></ol>

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</ol>

저자는 시약 및 / 또는이 원고에 사용되는 악기를 생산하고 사치 미세 유체의 직원 및 주주입니다.

여기에 설명 된 3D 미세 인쇄 기술은 잘 채워진 액체로 세포 microfluidically 프린팅 배열 고유 능력 잠긴 표면 즉. 잠긴 표면에 인쇄에 의해, 세포 마이크로 어레이에서는 세포의 생리 학적으로 관련된 세포 표현형뿐만 아니라 단일 웰도 4의 하단에 세포를 다중화 할 수있는 능력을 유지하는 것을 제조 할 수있다. microfluidically 세포 결과를 인쇄하는 본 연구 쇼의 결과 유사한 세포 형태 및 생존 능력을 가진 세포 부착; 그러나 인쇄 된 세포가 더 조밀하게 짧은 전체 연구 시간의 결과로 정의 된 위치에 부착 할 수 있습니다. 짧은 학습 시간은 14 선별 처리량이 약에 대한 비용을 크게 절감 될 수 있습니다. 마이크로 유체 이전 셀룰러 마이크로 어레이 및 높은 처리량 약물 스크리닝을 위해 사용되었다. 연구 수십 흐름 분석을 기반으로하는 방법을 자세히 설명했다정적 흐름 문제를 제거; <sup...

제약 산업의 최근 발전은 약물 검사 및 cytotoxicological 분석 1,2,3의 약물 발견 과정에서 세포 마이크로 어레이를 사용하여 증가 된 관심을 이끌고있다. 세포의 마이크로 어레이를 사용하여 시험 관내 높은 처리량 분석 및 스크리닝 방법의 개발이 신속하고 비용 효과적인 약물 후보의 개발뿐만 아니라, 미리 셀 1,4의 기본적인 이해를 용이하게한다. 세포 검사에 대한 전통적인 접근 방식은 기존의 잘 플레이트 플랫폼을 사용한다; 그러나이 접근법으로 인해 높은 비용, 제한된 처리량 및 세포 기능에 대한 정량적 정보 1,5 제한적 기능으로 제한된다. 때문에 이러한 제한, 세포 마이크로 어레이 기술의 연구는 분자 생물학적 특성, 조직 공학, 약물 검사의 1,6에 급성장하고 있습니다. 셀룰러 마이크로 어레이의 장점은 더 작은 샘플 사용, 최소한의 영향을 포함세포의 표현형의 이질성 정보를 마스킹, 그리고 더 높은 처리량 응용 프로그램 -1,7,8,8에 대한 분석을 자동화하는 가장 중요한 기능입니다. 제약 산업은 현재 마이크로 웰 플레이트 9 약물 검사에 대한 2 차원 세포 단층 배양과 높은 처리량 세포 기반 스크리닝 분석을 이용한다. 마이크로 플레이트의 우물에서 다중 세포는 독특한 실험 옵션을 더 높은 처리량에 대한 가능성을 제공합니다. 또한, 세포 마이크로 어레이에 대한 현재의 기술은 세포가 극적으로 생체 내에서 10, 11에서 세포의 표현형을 변경할 수있는 건조 할 수 있습니다. 이러한 문제를 극복하기 위해, MFCA는 설계하고도 1에 도시된다. MFCA 차원 유체의 디자인이 욕에 하강과 시일을 형성하는 표면에 대해 압축하는도 1의 프린트 헤드 칩을 가능하게한다. 프린트 헤드의 부드러운 실리콘 팁처럼 동작가스켓 가역 씰을 형성한다. MFCA 기술은 고유 세포 배양 및 조직 슬라이스 시스템 모두에 필요한 잠긴 표면과의 인터페이스에 적합하고, 대부분의 다른 접근 방식을 가진 어렵거나 불가능하다. 핀 또는 잉크젯 인쇄가 작동하지 않습니다, 그리고 2 차원 마이크로 유체 장치는 증착 또는 개별 관광 명소의 큰 배열과 인터페이스에 적합하지 않습니다. 또한, 실험 소형화 및 지역화로 - 세포 마이크로 어레이 - MFCA는 높은 처리량 세포 기반 스크리닝 분석과 관련된 주요 문제를 극복한다. CFM은 표면 (12, 13)에 미세한 반점 위치에 사이클 작은 양의 유체 샘플에 3D 채널 네트워크를 사용합니다. 흐름과 함께 인쇄함으로써, 생체 분자, 세포 및 다른 시약은 현재 셀의 인쇄 기술을 방해하는 공기에의 노출없이 민감한 생체 분자와 세포의 인쇄를 가능하게 프린팅 프로세스에 걸쳐 액체 환경에서 유지된다. 이 어레이 표면에 캡처 메커니즘이 이러한 하이 브리 도마 또는 제공 상청액 같은 조질 물질로부터 직접 인쇄하는 것도 가능하다. 이 원고의 목적은 표면에 상세히 두 세포 유형의 잠긴 인쇄를 설명하는 것이다.

<table><tbody><tr><td>연속 흐름 마이크로 스포터</td><td>Wasatch Microfluidics</td><td></td><td></td></tr><tr><td>NIH / 3T3 세포</td><td>ATCC</td><td>CRL-1658</td><td></td></tr><tr><td>Dubbleco의 Modified Eagle Medium</td><td>Invitrogen</td><td>11965-092</td><td>세포 용 기본 배지</td></tr><tr><td>HEPES buffer</td><td>Invitrogen</td><td>15630-080</td><td>세포 배지 첨가제 (대조군 pH)</td></tr> <tr><td>Sodium pyruvate</td><td>Invitrogen</td><td>11360-070</td><td>세포 배지 첨가제</td></tr><tr><td>페니실린-스트렙토마이신&nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td></td><td>세포 배지 첨가제</td></tr><tr><td>Trypan blue</td><td>Invitrogen</td><td>15250-061</td><td>혈구 계수용</td></tr> 염색 <tr><td>세포 측정기</td><td>Fisher</td><td>267110</td><td>세포 계수를 위한 세포 챔버</td></tr><tr><td>Nikon Eclipse TS100</td><td>Nikon</td><td></td><td>세포 확인에 사용</td></tr><tr><td>Nikon Eclipse TE2000-U</td><td>Nikon</td><td></td>: <td>이미지</td></tr> <tr><td>수집에 사용인산염 완충 식염수 (칼슘과 마그네슘 포함)</td><td>Invitrogen</td><td>14040-133</td><td>파시에이징 전 및 PI TrypLE Express로 염색 전 세포 헹굼</td></tr><tr><td>;</td><td>Invitrogen</td><td>A12177-01</td><td>표면에서 세포를 제거하는 데 사용됩니다</td></tr></tbody></table>.

연속 흐름 microspotter을 사용하여 수정 된 표면에 세포의 침수 인쇄

The Submerged Printing of Cells onto a Modified Surface Using a Continuous Flow Microspotter

마이크로어레이 응용 분야를 위한 세포 인쇄는 인쇄 후 생리학적으로 관련된 세포 표현형을 유지하는 문제, 원하는 세포의 열악한 조직 및 분포, 어레이의 대상 영역에 약물 및/또는 영양소를 전달할 수 없는 문제 등 중요한 문제를 가지고 있습니다. 당사의 3D 미세유체 프린팅 기술은 자동화되고 다중화된 방식으로 수중 표면에 세포 어레이를 밀봉하고 인쇄할 수 있는 고유한 능력을 갖추고 있습니다. 미세유체 세포 어레이(MFCA) 3D 유체공학의 설계를 통해 프린트헤드 팁을 액체로 채워진 우물 또는 접시로 낮추고 표면에 대해 압축하여 밀봉을 형성할 수 있습니다. 프린트 헤드의 부드러운 실리콘 팁은 개스킷처럼 작동하며 압력을 가하거나 뒤로 물러나서 되돌릴 수 있는 밀봉을 형성할 수 있습니다. 핀 또는 잉크젯 프린터와 같은 다른 셀 인쇄 기술은 물에 잠긴 응용 프로그램에서 인쇄할 수 없습니다. 수중 표면 프린팅은 세포의 표현형을 유지하고 재료 표면 특성을 방해하지 않고 표면에서 이러한 세포를 모니터링하는 데 필수적입니다. 물에 잠긴 표면에 인쇄함으로써, 암, 당뇨병, 염증, 감염 및 심혈관 질환을 포함한 다양한 분야에서 약물 스크리닝 및 세포 독성 평가를 허용하는 세포 마이크로어레이가 생산됩니다.

섬유 아세포 세포주 NIH/3T3 세포 잠긴 표면에 인쇄하거나 시딩 하였다. 세포는 밀리리터 당 5 X 104 세포의 밀도로 성장시켰다. 세포는 기존의 세포 배양 기술을 이용하여 접종 하였다. 세포를 대형, 채널 단백질 및 기타 생체 분자에 사용 CFM보다 (~ 500 μm의) 큰 열두 플로우 셀 프린트 헤드를 사용하여 인쇄 하였다. 세포를 혈청 코팅 표면 상에 인쇄되거나 시딩 하였다. 인쇄 공정은도 1에 도시된다. 인쇄 및 시딩 후, 균체 중요한 시점 (0, 2, 24, 48 시간)에서 밀도 및 형태를 평가하기 위해 시각화 하였다. 이러한 시점에서 세포 밀도와 세포의 형태가 10X 및 40X 현미경의 배율을 사용하여 평가 하였다. 이미지는 세포가 각각의 시점에서 각 배율 그림 2에서와 거의 동일 표현형을 가지고 있음을 보여줍니다.이 그림의 효과를 바탕으로인쇄를 최소화하기로 결정했습니다. ...

이 3D 미세유체 프린팅 기술은 수중 표면에 세포 배열을 인쇄합니다. 우리는 세포 배열이 3D 플로우 셀에서 수중 표면에 미세유체적으로 전달되는 방법을 설명합니다. 물에 잠긴 표면에 인쇄함으로써, 다양한 분야에서 약물 스크리닝 및 세포 독성 평가를 허용하는 세포 마이크로어레이가 생성되었습니다.

연속 흐름 Microspotter을 사용하여 수정 된 표면에 세포의 침수 인쇄

The printing of cells for microarray applications possesses significant challenges including the problem of maintaining physiologically relevant cell ...

이 실험 절차의 전반적인 목적은 혈청이 코팅된 표면에 T3 섬유아세포를 프린팅하는 것입니다. 이는 먼저 조직 배양 표면에 혈청을 사전 흡착시킴으로써 수행됩니다. 두 번째 단계는 연속 흐름 마이크로 스포터를 사용하여 섬유아세포 현탁액을 표면에 프린팅한 후, 세포를 37 °C에서 2시간 동안 배양하는 것입니다.다음으로, 프린팅된 세포와 표준 세포 배양을 통해 파종된 세포를 propidium iodide로 염색한 후, 비교를 위해 도립 현미경으로 관찰합니다. 최종적으로, 형광 현미경을 사용하여 관련 시점에서 세포의 생존율, 밀도 및 형태를 평가합니다. 핀 프린팅과 같은 기존 방법과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은 프린트 헤드가 표면에 밀봉되어 세포가 세포 배지에 잠긴 상태에서 프린팅될 수 있다는 점입니다.세포의 침지 프린팅은 새로운 약물 후보 물질의 안전성과 효능을 스크리닝하는 데 유용하지만, 일반적인 침지 프린팅은 다른 응용 분야에도 유용합니다. 예를 들어, 조직 절편을 대상으로 새로운 약물 후보 물질을 분석하거나, 이를 장기 시스템 모델로 사용할 수 있습니다. 예를 들어, 간 관류 모델이 이에 해당합니다.일반적으로 이 방법에 익숙하지 않은 사용자는 프린터 프라이밍 및 세포 프린팅 과정에서 라인에 공기가 유입되면 세포 사멸을 유발할 수 있기 때문에 어려움을 겪을 수 있습니다. 먼저, 37°C의 쉐이킹 워터 배스에서 NIH 3T3 세포를 2~3분 동안 해동하십시오. 세포를 5mL의 완전 배지에 재현탁하고 1500G에서 3분 동안 원심분리하십시오.세포 펠렛이 흐트러지지 않도록 주의하며 세포 상층액을 제거합니다. 그런 다음 5 mL의 배지로 세포를 재현탁하고, 세포 현탁액 10 µL를 0.5 mL 마이크로 원심 분리 튜브에 옮깁니다. 이어서 세포 현탁액에 tripan blue 10 µL를 첨가하고 피펫 팁으로 섞어줍니다. 염색된 세포 10 µL를 헤모사이토미터 챔버에 피펫팅하여 넣습니다.10배율로 세포 수를 측정하기 전에, 9개의 큰 사각형 중 4개에서 작은 흰색 공 모양으로 보이는 생존 세포의 수를 셉니다. 트립판 블루 염색으로 인해 진한 파란색으로 보이지 않는 생존 세포만 측정하십시오. 큰 사각형당 평균 세포 수를 계산하면, 해당 세포 수에 10,000을 곱한 값이 원래 세포 현탁액의 mL당 세포 수가 됩니다.그런 다음 T 25 플라스크 각각에 총 5 mL의 부피로 밀리리터당 100,000 cells의 밀도로 세포를 분주합니다. 실험을 시작하기 전까지 세포를 70~80% 밀도로 배양합니다. 프린팅 표면을 준비하려면, 조직 배양 처리된 폴리스티렌 12 바닥면에 마커를 사용하여 프린트 헤드 크기의 직사각형을 표시합니다.웰 플레이트의 직사각형 영역에 태아 송아지 혈청 50 µL를 피펫으로 분주하고 전체 영역에 걸쳐 펴 바릅니다. 팁을 제거한 후, 혈청 반점이 완전히 마르도록 웰 플레이트를 멸균 바이오안전 작업대 내에 하룻밤 동안 둡니다. 침지 프린팅을 시작하려면 증류수로 프린트 헤드를 헹굽니다.그 다음 60 millimeter 페트리 접시를 증류수로 채우고 프린트 헤드를 표면에 고정시킨 후, 공압 펌프를 사용하여 각 라인에 150 microliters per minute의 속도로 2분 동안 증류수를 흘려보냅니다. 그런 다음 페트리 접시의 물을 버리고 깨끗한 물로 다시 채웁니다. 이어서 프린트 헤드를 물속에서 세 번 위아래로 움직여 줍니다.미리 준비한 12-웰 플레이트의 혈청 코팅 지점 중앙에 프린트 헤드를 정렬합니다. 그런 다음 Prewarm 완제 배지를 채널당 300 µL씩 사용하여 프린트 헤드를 프라이밍합니다.여러 번 프린팅을 수행하는 경우, 프린팅 사이에 물 세척 외에 표백제 세척 단계를 추가하십시오. 부유 세포를 50,000 cells/mL 농도로, 분당 60 µL의 속도로 표면에 프린팅하십시오. 채널당 100 µL를 사용합니다.세포 프린팅 후, 프린트 헤드를 표면 왼쪽의 도킹 위치에 두고 매니폴드와 함께 세포 배양 인큐베이터에 넣습니다. 5% carbon dioxide 및 37 °C로 설정하여 2시간 동안 배양합니다. 2시간의 배양 후, 프린트 헤드를 제거하고 배양 접시에 뚜껑을 덮습니다.프린트 헤드를 제거한 시점을 0시간 시점으로 간주합니다. 비교를 위해 표준 세포 배양도 함께 수행합니다. 혈청이 점적된 12-웰 플레이트 중 하나에 미리 데워둔 배지 1 mL를 첨가한 후, 남은 세포 현탁액 1 mL를 취해 12-웰 플레이트의 단일 웰에 피펫으로 분주합니다.이렇게 하면 디쉬 내에 50,000개의 세포가 포함된 배양이 생성됩니다. 세포 배양 플레이트를 37 °C 인큐베이터에 2시간 동안 두십시오. 2시간의 배양이 끝난 후, 프린팅 샘플과 시딩 샘플 간의 일관성을 위해 시간 측정을 시작하십시오.이 시점을 0시간 시점으로 간주합니다. 0, 2, 24, 48시간 후에, 죽은 세포의 핵에만 결합하는 propidium iodide로 염색하여 두 가지 방법 각각으로 준비한 세포를 이미징합니다. 먼저, 세포의 잔해를 제거하기 위해 칼슘과 마그네슘이 함유된 phosphate puffed saline 1 mL로 세포를 세 번 부드럽게 헹굽니다.다음으로, 각 배양 용기에 미리 데워둔 배양 배지 1 mL를 넣은 후, propidium iodide 스탁 솔루션 1 µL를 추가합니다. propidium iodide로 염색된 세포를 37 °C에서 10분 동안 배양한 다음, 도립 현미경을 사용하여 10배 및 40배 배율로 세포를 이미징합니다. 마지막으로 세포를 적절한 생물학적 위험물 폐기 용기에 버립니다.섬유아세포 세포주인 NIH 3T3 세포를 침전 표면에 프린팅하거나 파종하였습니다. 프린팅 및 파종 후, 관련 시점에서 세포의 밀도와 형태를 평가하기 위해 시각화하였습니다. 이미지를 통해 각 시점과 각 배율에서 세포들이 거의 동일한 표현형을 가지고 있음을 확인하였습니다.이러한 수치들을 바탕으로, 유효 프린팅량은 매우 적은 것으로 판단되었습니다. 프로피듐 아이오다이드(propidium iodide) 염색을 통해 세포 생존능을 평가한 결과, 각 시간대별로 프린팅된 세포의 생존능은 파종된 세포와 유의미한 차이가 없음을 확인하였습니다. 세포를 표면에 부착시키는 두 가지 방법의 주요 차이점은 세포의 밀도입니다.2시간 시점에서 프린팅된 세포 밀도는 파종된 세포와 프린팅된 세포 모두에서 50% 이상 감소했습니다. 이러한 감소의 원인을 규명하기 위한 추가 연구가 필요합니다. 하지만 파종된 밀도와 비교했을 때 전반적인 프린팅 밀도 비율은 여전히 유의미하게 더 높게 유지되었습니다.세포를 파종할 때와 동일한 밀도로 출력하되 더 좁은 면적에 출력했음을 고려하면, 플로우 셀 내의 출력된 세포 밀도는 각 시점마다 파종된 세포보다 약 10배 더 높았습니다. 최종 시점에서는 세포들이 동일한 밀도를 보이는데, 이는 세포 이동성과 자원 소비의 제한으로 인한 것으로 보입니다. 이 기술은 개발 이후 신약 개발 분야의 연구자들이 세포에 대한 약물 독성과 효능, 암 보조제, 심장 질환 및 기타 수요가 많은 분야의 영향을 연구할 수 있는 길을 열어주었습니다.부착성 및 프로그래밍 가능한 세포 부착과 같은 다른 기술과 침지 세포 프린팅을 병행하여 사용함으로써, 우리는 이 기술의 범위를 부유 세포까지 확장하여 약물 발견 및 개발 스크리닝 범위를 넓힐 수 있습니다. 이 영상을 시청하신 후에는 당사의 침지 프린팅 기술을 사용하여 세포를 프린팅하는 방법에 대해 충분히 이해하시게 될 것입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Bioengineering

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