Name: 설치류에서 급성 해마 조각을 사용하여 시냅스 태그 / 캡처 및 크로스 캡처 조사 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-09-04T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 29 s
Description: 학습하세요 설치류 급성 해마 조각을 이용한 시냅스 태깅 및 캡처 메커니즘 연구 방법을. CA1 피라미드 뉴런에서 장기 가소성과 기억 형성 과정을 전기생리학적으로 분석하는 실험 기술을 습득하세요.

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이 비디오 기사는 Cerebos Pacific Limited의 후원을 받았습니다. 이 연구는 National Medical Research Council Collaborative Research Grant(NMRC-CBRG-0041/2013) 및 Ministry of Education Academic Research Funding(MOE AcRF- Tier 1 - T1-2012 Oct -02)의 지원을 받습니다.

모든 동물의 절차는 싱가포르 국립 대학의 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC)에 의해 승인되었다. 인공 뇌척수액 유체 1. 준비 (ACSF) <ol><li> (124)의 NaCl, 3.7의 KCl (MM)에 황산 .7H 2 O 1.0, 2.5 염화칼슘 2 · 2H 2 O로 구성된 ACSF, 1.2 KH 2 PO 4, 24.6의 NaHCO3, 10 D- 글루코스를 준비합니다. 전기 생리 녹음 중에 95 % O 2 5 % CO 2 혼합물 (carbogen). 모두 해부, 슬라이스 준비를위한 (21) 사용이 ACSF 및 관류 용으로 포화 버블 때 ACSF의 pH가 7.2-7.4 사이에 있는지 확인하십시오. 참고 : 측정하고 ACSF을 들고 깨끗한 장치를 사용합니다. 부정한 장치를 사용하면 흐린 용액 또는 침전물의 형성으로 이어질 수 있습니다. 모든 준비를위한 탈 이온수를 사용합니다. </li><li> NaHCO3을 제외한 2 패 10 배의 ACSF 주식을 준비 </sUB&gt;와 부피 플라스크에 D-포도당. 다음과 같은 순서로 탈 이온수에 시약을 추가 염화나트륨 (144.96g)의 KCl (5.52g), 황산 .7H 2 0 (4.92g), 염화칼슘 2 · 2H 2 0 (7.56 g)을, KH 2 PO 4 (3.28 L. 2의 부피로 g) 및 상부까지 모든 시약이 용해되도록 자석 교반기를 이용하여 적어도 30 분 동안 계속 교반한다. 4 O C의 주식을 보관 2 주 이내에 사용한다. </li><li> 해부 및 실험에 앞서, D의 NaHCO3 및 글루코스 필요한 양의 첨가와 함께 부피 플라스크에 ACSF 스톡을 희석. 1 L의 용액의 경우, 2.07 g의 수 NaHCO3 및 1.802 g D- 글루코스를 첨가 한 후 1 L로 재고 100 mL로 희석한다. ACSF은 침전물 또는 용해되지 않은 입자의 무료 맑은 용액해야한다. </li><li> 쿨 약 200 ~ 300 ml의 얼음에 ACSF의, 해부하는 동안 사용합니다. 해부에 사용되는 ACSF가 2-4 ° C를 사이에 있는지 확인합니다. electrop의 남은 ACSF를 사용하여hysiological 실험. 모든 버블 ACSF 솔루션 연속적 carbogen (5 % CO 2, 95 % O 2)와 포화. ACSF가 식을 때까지 기다리는 동안, 해부 영역과 슬라이스 챔버를 준비합니다. </li></ol> 인터페이스 회의소 2. 준비 참고 : 인터페이스 뇌 슬라이스 챔버 (그림 2B)을 조각 배양 및 전기 생리 녹음하는 동안을 유지하기 위해 사용되는 두 개의 구획으로 구성되어 있습니다. 하부 챔버 온도 제어기에 의해 32 ° C로 유지 증류수 연속적 carbogen 버블 포함. <ol><li> 온도 컨트롤러에 전환하고 32 ° C에서 그것을 사전. 유입 관을 통해 증류수를 실행하여 10 분 ~ 15의 상부 챔버를 씻으십시오. 상부 챔버는 그물을 배치하기 전에 깨끗한 지 확인합니다. 하단 챔버에서 그 수위가 증류수로 채워 약 70 %로 확인합니다. </li><li> 장소다락방에서 그물 조각을위한 휴식 표면 (그림 2C)를 제공합니다. 액면이 충분히 네트의 전체 영역을 습윤되도록 유출 관을 조정한다. 상부 챔버 내에서 가습 carbogen 분위기를 유지하기 위해 그물 위에 뚜껑을 놓습니다. </li><li> / 분으로 1 ml의 유량을 조정한다. 슬라이스 잠복기 및 실험을하는 동안,이 유량을 유지한다. 갓 준비 1X의 ACSF을 carbogenating 시작하고 ACSF에 유입 튜브를 담가. ACSF가 그것으로 채워 져야 carbogen와 다락방에 대한 포화 될 때까지 20 분을 허용합니다. </li></ol> 급성 해마 조각 3. 준비 참고 : 해부 프로토콜은 차가운 ACSF과 (2)의 분리 및 해마의 슬라이스로 동물에서 뇌의 (1) 제거로 구성되어 있습니다. 신경 세포가 생존을 유지 분리하고 빨리 감기 ACSF의 뇌를 배치하고 전체를 완료하기 위해서는3 ~ 5 분 이내에 슬라이스를 포함하는 방법. <ol><li> 추운 ACSF으로 뇌의 제거 <ol><li> 도 1a에 도시 된 바와 같이 절개 도구를 배치. 해부 과정을 용이하게하기 위해 사용 순서에 따라 도구를 정렬합니다. 시작하기 전에 모든 해부 도구가 준비되어 있는지 확인합니다. </li><li> , 에틸 아세테이트, 무수 에탄올과 증류수로 세척 면도날을 장착 수동 조직 헬기 (그림 1B)에 단단히 고정하고 최첨단 균등하게 정렬되어 있는지 확인합니다. 필터 종이를 자르고 시험 날이 단단히 고정되어 있는지 확인합니다. 시작 위치에 슬라이딩 버니어 마이크로 미터를 설정합니다. </li><li> 유도 챔버에 동물을 사용하여 이산화탄소 (CO 2)를 안락사 및 붕대 가위 단두대로 참살. 아이리스 가위를 사용하여 두개골 위의 피부와 털을 제거합니다. brainstem.Make에게 차를 따라 작은 절개를 제거하기 위해 후방을 통해 상처를 확인두개골의 오른쪽과 왼쪽에 긴 절개를 전자. 주의! 그것은 손상을 방지하기 위해 실험에 사용되는 측에 단지 작은 절개를합니다. 가위를 삽입 할 때 가해지는 힘이 뇌에 손상을 방지하기 위해 위쪽 있는지 확인하십시오. </li><li> 조심스럽게 피질을 나타 내기 위해 두개골의 오른쪽으로 왼쪽에서 시작 rongeur 뼈와 두개골을 제거합니다. 경질의 얇은 층은 또한 알 수있다. 조심스럽게 rongeur와 정면 플레이트를 제거합니다. 전면 판과 함께 경질의 대부분을 제거합니다. 주의! 경질은 뇌 조직을 통해 슬라이스 않도록주의. </li><li> 특히 주걱의 평평한 끝 피질과 소뇌 사이의 교차점에있는 경우, 나머지 경질을 제거합니다. 단계 3.1.5과 3.1.6의 경우, 손상을 방지하기 위해 멀리 두뇌에서, 위쪽, 즉 압력을 유지한다. 주걱을 사용하여, 부드럽게 감기와 carbogenated ACSF (2-4 ℃로) 가득 배양 접시, PLA로 뇌 특종알루미늄 냉각 블록에 세드릭. </li></ol></li><li> 해마의 분리 <ol><li> 메스를 사용하여 직선 절단 뇌 (약 분기)의 앞쪽 부분을 제거하는 소뇌와 다른 컷을 제거 할 수 있습니다. 중간 선을 따라 얕은 상처를 확인합니다. </li><li> 조심스럽게 지느러미 해마를 나타 내기 위해 중간 선에서 시작, 낫 스케일러와 피질을 제거합니다. 해마 위 피질의 층을 제거합니다. 뇌를 지원하기 위해 손가락이나 각도 집게를 사용합니다. 해마 접합면에 작은 상처를 확인합니다. 완만 한 움직임을 사용하여 지느러미 해마에서 시작 낫 스케일러와 해마를 제거합니다. 주의! 스트레칭과 해마를 찢어지지 않도록 부드럽게합니다. </li><li> 낫 스케일러와 격리 된 해마 주변에 피질과 결합 조직을 제거합니다. </li></ol></li><li> 해마 조직을 조각화 및 인터페이스 챔버에 조각을 전송 <ol><li> ACSF-의 조각을 놓습니다수동 슬라이서의 슬라이스 무대에 적신 여과지 (1 급, 30mm). 특종 및 여과지에 해마 조직을 배치합니다. 해마는 약 70 O fimbria 중 각도로 분리되도록 슬라이서 블레이드 관련한 적절한 방향에서 해마를 정렬 여과지를 이동. </li><li> 접힌 종이 필터와 해마 조직 (1 급, 85mm) 약간 젖은 해마를 떠나 주변을 초과 솔루션을시킨다. 가로 해마 슬라이스 시작합니다. 슬라이스 형태가 분명하지 않은 슬라이스는 해마의 선단부로부터 조직을 버리고. </li><li> 400 μm의 두께 조각으로 남아있는 조직을 조각입니다. 부드러운 강타의 움직임을 사용하여 부드러운 강모 브러시와 블레이드에서 부드럽게 해마 조각을 들고 차가운 carbogenated ACSF 가득 작은 비커에 조각을 배치합니다. 단계를 수행 3.3.1-3.3.3 가능한 빨리 해마 조직이 공기에 노출되기 때문이다. 참고 : 일반적으로 해마의 3 분의 2는 슬라이스하고, 명확한 형태와 4-6 조각을 제조 할 수있다. </li><li> 부드럽게 (팁의 2-3cm를 멀리 절단하여 만든) 다양한 팁과 깨끗한 플라스틱 파스퇴르 피펫을 사용하여 조각 실의 순에 조각을 전송합니다. 조심스럽게 구부러진 끝 작은 주사기를 사용하여 그물에 조각의 위치를​​ 조정합니다. 전극 위치 및 기록을 용이하게하여 슬라이스를 배치. 슬라이스가 충분히 ACSF에 둘러싸여 있지만, 침수 또는 (그림 2C-D)를 떠되지 않도록 확인합니다. 챔버 커버 2 ~ 3 시간 동안 조각을 품어. 주 : 건강한 조각의 피라미드 세포 층 일부 투명성을 보여 주어야한다. </li></ol></li></ol> CA3-CA1 시냅틱 응답 4. 기록 주 : 필드 전위 기록을 위해 사용되는 전기 생리학 셋업은도 2a에 도시되어있다. 파라전기 간섭 전기 설정의 적절한 접지 후 통제 할 수없는 경우 일 케이지는 것이 좋습니다. 침수 및 인터페이스 챔버의 많은 다른 종류가 시판되고있다. 그러나, 인터페이스 챔버는 그들에 조각 전시보다 강력한 시냅스 답변으로 바람직하다. <ol><li> 전극의 위치 <ol><li> 전기 장치를 켜십시오 (자극과 앰프)를 사용할 수 있습니다. 마운트 및 미세 조작기의 플렉시 글라스 홀더에 자극과 기록 전극을 고정합니다. 참고 : 우리는 단극, 모두 자극과 기록을 위해 5 MΩ 저항의 옻칠 코팅, 스테인레스 스틸 전극을 사용합니다. </li><li> 사용하기 전에 뽑아 유리 모세관 내부 이러한 전극을 삽입하고 에폭시 접착제 전극의 끝 부분 (그림 2E)의 작은 부분을 노출 고정합니다. 이것은 달리 슬림 전극에 힘을주고 전자 업계에 단단히을 확보하는 데 도움이ctrode 홀더. </li><li> 현미경 하에서 유도, 전계 EPSP (fEPSP) 응답을 기록하는 CA1의 꼭대기 수지상 영역 샤퍼 담보 섬유 및 기록 전극을 자극 CA1 영역의 지층 radiatum의 자극 전극 (들)의 위치. 주 : 전극 슬라이스 상기 액체 표면에 접근 신속 슬라이스 (단, 증폭기는 스피커에 연결된다)의 표면을 찾는 데 도움이되는 음을 준다. </li><li> 시냅스 태깅 및 캡처 실험에서 실험의 필요성에 따라, 기록 전극의 양쪽에 위치 두세 자극 전극 (S1, S2 또는 S3)는 두 개 이상의 독립적이지만 중복 입력을 자극. 떨어져 200 μm의에 대한 자극 및 기록 전극을 배치합니다. </li><li> 필요한 경우, 인구 스파이크 (그림 3A)를 기록 지층 pyramidale 층에 또 다른 기록 전극의 위치를 .When 모두전극 수집 소프트웨어를 이용하여, 슬라이스를 터치 한, 적절한 fEPSP 신호를 확인하기위한 테스트 자극을 준다. 참고 : 우리는 시험 자극 이상성, 정전류 펄스 (임펄스 지속 시간이 0.1 밀리 초 / 반파)를 사용합니다. </li><li> 적절한 fEPSP 신호가 획득되면,주의 깊은 매니퓰레이터의 미세한 움직임 노브를 사용하여 200 μm의 약 전극을 낮 춥니 다. 슬라이스 복구하는 20 분을 허용합니다. 짝 펄스 촉진 프로토콜 27,28와 경로 독립성을 테스트합니다. </li></ol></li><li> 입력 - 출력 관계 <ol><li> 전류 강도의 범위에서 경사 값을 측정함으로써 각 입력에 대한 입력 - 출력 관계식 (fEPSP 슬로프 VS 심성 자극)을 결정한다. 100 μA 20 μA 사이에이 작업을 수행합니다. 이어서 최대 fEPSP 경사의 40 %를 획득하기 위해 각 입력 자극 강도를 설정한다. 실험을하는 동안이 일정하게 유지. </li><li> 15-20 분 후에, 기준 기록을 시작. F 모니터EPSP의이 기간 동안 긴밀하게 경사 및 경사가 설정 값에서 10 % 이상 변동하는 경우 자극 강도를 재설정하고 새로운 기준을 시작합니다. 진행하기 전에 기록 적어도 30 분 또는 1 시간 안정 기준. 참고 : 테스트 또는 기준 자극을 위해, 우리는 5 분마다 주어진 0.2 Hz의 이상성, 정전류 펄스의 네 스윕 (극성 당 0.1 밀리 초)를 사용합니다. 이 네 가지 답변의 평균 기울기는 다음 하나의 반복으로 간주됩니다. 신호는 아날로그 - 디지털 변환기를 사용하여 디지털화 주문품 소프트웨어 온라인 모니터링, 차동 증폭기에 의해 필터링 및 증폭된다. </li></ol></li><li> LTP / LTD 유도 자극 프로토콜을 사용하여 참고 : LTP과 회사 모두 일찍 분류 된 단백질 합성의 요구 사항에 따라 늦은 LTP / LTD; 그 말 유지 보수를 위해 후자의 요구 번역 및 / 또는 전사 [검토를 위해 4 참조]. 전기 자극 패러다임의 다양한 수 specificallY는 LTP 및 LTD의 다른 형태를 유도한다. <ol><li> WTET : 100 Hz에서 21 이상성 정전류 펄스 (상 당 0.2 밀리 초). </li><li> 이키 : 일초 (100 Hz에서) 매 10 분 (상 당 폭 0.2 밀리 초 펄스) 100 펄스의 세 버스트. </li><li> 15 분의 시간 동안 900 버스트. 1 버스트는 50 밀리 초 (20 Hz에서)의 interpulse 간격으로 3 펄스 (0.2 밀리 폭)으로 구성되어 있습니다. 간 버스트 간격은 1 초 (펄스 2,700의 총 수)입니다. </li></ol></li></ol> 슬라이스 상공 회의소 및 관류 시스템 5. 청소 <ol><li> 녹화가 끝난 후, 더 생화학 적 분석을 위해 해마 슬라이스를 수집하거나 다른 적절하게 폐기하십시오. carbogen 공급 장치 및 온도 조절기의 전원을 끄십시오. 증류수에 carbogen 버블을 씻으십시오. </li><li> 브러시와 증류수로 철저하게 그물을 청소합니다. 높은 유속으로 증류수로 15 ~ 20 분 동안 장비를 세척한다. 3-4일에서 일단의 증류수를 변경챔버의 하부 구획 3 % 과산화수소 용액으로 또한 정기적으로 챔버는 깨끗 곰팡이 성장을 방지한다. </li></ol>

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<li>Erdogdu, G., Uto, A., Hossmann, K. -A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+global+ischemia+and+recirculation+of+rat+brain+on+protein+synthesis+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Metab+Brain+Dis%22%5BJournal%5D)">The effect of global ischemia and recirculation of rat brain on protein synthesis in vitro.</a> Metab Brain Dis. 8, 199-206 (1993).</li>
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</ol>

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급성 해마 슬라이스 LTP 및 STC 크로스 포착과 같은 다른 기능성 소성 과정의 연구에 훌륭한 모델 시스템이다. 그것은 해마 회로의 판상 구조 네트워크의 대부분, 정확한 전극 위치를 허용하고 혈액 - 뇌 장벽없이 함께 빠른 neuropharmacological 조작을위한 개방형 플랫폼을 제공하고 유지합니다. 이 문서에서는 젊은 성인 쥐에서 가능한 급성 해마 조각의 제조 방법을 설명하고 STC 크로스 태그를 조사하기 위해 그들을 사용. 이전 연구는 동물의 성별과 나이는 전기 생리학 연구에 사용하기 위해 고려해야 할 중요한 요소임을 강조했다. 완벽하게 표현 성인 수용체 기능 (5-7주 세 남성의 Wistar 쥐)와 27, 28 따라서 젊은 성인 동물이 사용된다. (23) 비대칭을 좌우 해마 간의 연결에서 설치류 (29)에 기록되어 있고NMDA 수용체 발현의 주요 차이점은도 34과 같이보고되었다. 그러나 우리는. LTP 이전 연구와 일치하도록하기 위해 23,32을 오른쪽 해마를 사용한 해마 중 하나는 한 일관성이 유지되는 한 사용될 수있다. 모든 프로토콜에서, 그것은 고립과 조직이 뻗어 손상, 건조 또는 저산소 렌더링되지 않습니다 신속하게 절차를 얇게하지만 돌보는을 수행하는 것이 매우 중요하다. 산도, 온도, 이온 성 용액의 조성에 변화가 슬라이스와 결과의 생존에 지대한 영향을 미칠 수있다. 그러므로 그러한 변형은 피해야한다. 이는 제조 공정 중에 발생하는 글루타메이트 수용체 - 의존성 칼슘 방출이 비가 역적으로 신경 조직 (35, 36), (37)에서 단백질 합성에 영향을 미칠 수 있음이 관찰되었다. 수동 티슈 슬라이서를 사용하여 VI에 비하여 매우 신속하게 완료 할 수 있도록하여 공정이 최소화 할 수있다braslicers. 그러나 많은 실험실 효과적으로 슬라이스 생존을 유지하기 위해 필요한 예방 조치와 vibraslicers를 사용합니다. 고려해야 할 또 다른 중요한 요소는 실험을 시작하기 전에 긴 잠복 기간이다. 이것은 방해가 준비 23시 발생 후 조각의 대사 상태와 키나아제 활성 수준의 안정성을 달성하기 위해 정말 중요한 것으로 지적되고있다. 이러한 안정성은 장기 녹음에 일관성이 필요하다. 우리는이 관찰을 다시 강조하고 약 3 시간의 긴 배양 시간을 제안한다. 자극 파라미터는 다양한 LTP를 유도하는 것으로 알려져있다, 그러나 각각의 경우에 유발 분자 메커니즘 (검토를 위해 38 참조) 동일하지 않을 수있다. 이것은 내구성, 차례로, 시냅스 태깅 및 캡처 실험의 결과에 영향을 미칠 수 있으며, LTP의 다른 특성에 영향을 미칠 수있다. 그러므로 그것은 자극 패러다임과 특성을 확인하는 것이 중요유발 된 LTP의 수행 실험실의 조건과 일관성을 유지한다. 우리는 일반적으로 매우 큰 시냅스 섬유 발리와 최대 0.5 MV 이하 fEPSPs과 녹음도 거부하는 동안 섬유 발리에서 상당한 변화를 포함하는 실험에 실험을 고려하지 않는다. 또한, 두 개의 경로 또는 3 통로 실험을 수행하는 반면, 경로의 독립성을 보장하는 것이 중요하다. 이것은 한 쌍의 펄스 촉진 프로토콜 (28)을 행할 수있다. 기록 인터페이스 시스템의 일 단점은 챔버와 주위 사이의 온도 및 습도 차이에 의해 긴 시간 동안의 기록 전극 결로 물방울의 형성이다. 이 물방울 신중 수시로 도말해야합니다. 그렇지 않으면 방울 조각에 물방울과 방해 또는 신호도 손실이 발생할 수 있습니다. 우리는 일반적으로이 B 태클Y는 능숙 전극을 건드리지 않고, 슬림 여과지 심지를 사용하여 현미경으로 유도 적을 블 롯팅. 그러나, 최상의 해결책은 에든버러 대학 연​​구자에 의해 개발 된 ETC 시스템으로 중앙 가열 시스템을 사용하는 것이다. 결론 메모에서 다양한 방법론은 다른 실험 목적 해마 슬라이스의 제조에 사용되는 세계적인 실험실에서 존재한다. 절차의 각 일부 위에 다른 장점을 제공한다. 하나주의 깊게 실험의 목적에 적합하도록 프로토콜의 분 정보를 최적화 할 필요가있다. 우리는이 문서는 STC 크로스 캡처 늦게 연관 프로세스를 공부 방법론의 일부 측면을 개선하는 데 도움이되기를 바랍니다.

뇌에서 정보를 인코딩하고 저장하는 것은 여전히 신경 과학에서 가장 중요하고 예리하게 추구되는 과제로 남아 있습니다. 수년에 걸쳐 장기 강화(LTP)와 장기 우울증(LTD)이 기억의 주요 세포 상관관계로 부상했습니다1,2. 입력 특이성과 연관성을 나타내는 이러한 활동 의존적 변화는 뉴런 네트워크 1,3,4에서 기억 추적의 안정화를 초래합니다. 두 가지 형태의 시냅스 가소성을 유지하려면 가소성 관련 제품(PRP)의 합성이 필요합니다.5-10. 새로 합성된 단백질과 LTP 또는 LTD를 발현하는 특정 활성 시냅스와의 상호 작용을 포함하는 시냅스 특이성은 기억에 매우 중요합니다. 이러한 특이성은 '시냅스 태깅 및 캡처(Synaptic Tagging and Capture, STC)'라는 개념에 의해 설명되며, 여기서 PRP는 최근에 활성화된 '태깅된' 시냅스11,12와 상호 작용합니다. STC 프로세스는 세포 수준에서 기억의 연관 속성에 대한 프레임워크를 제공합니다. 그것은 어떻게 단기적인 형태의 가소성이 연상적이고 시간 의존적인 방식으로 오래 지속되는 형태의 가소성으로 변형되는지에 대한 개념적 기초를 제공한다13.
STC 과정에서 단백질 합성 의존성 late-LTP로 이어지는 한 입력의 강력한 테탄화는 동일한 뉴런 집단에 대한 다른 독립적인 입력에서 유도된 단백질 합성 독립적인 early-LTP를 지속적인13으로 강화합니다. 일시적인 신경 활성에 의한 국소 시냅스 태그의 설정과 강한 신경 활성에 의한 확산성 PRP의 합성은 STC13,14 동안 두 가지 주요 이벤트입니다. 최근에 강화된 '태그가 지정된' 시냅스에 의한 PRP의 포획은 장기적인 강화를 유지하는 데 필수적입니다. STC 현상15-17의 존재를 확인하고 후보 '태그'18 및 'PRP'19를 식별하기 위해 많은 연구가 수행되었습니다. 칼슘/칼모듈린 의존성 단백질 키나아제 II(CaMKII) 및 세포외 신호 조절 키나아제1/2(ERK1/2); CaMKIV, Protein Kinase M(PKM) 및 뇌 유래 신경 영양 인자(BDNF)는 각각 '태그' 및 'PRP'의 후보 분자중 일부입니다 19-21. 시냅스 태깅 모델은 LTP와 LTD 간의 긍정적인 연관 상호 작용, 즉 "시냅스 교차 태깅"22을 포함하도록 더욱 확장되었습니다. 시냅스 교차 태깅(synaptic cross-tagging)에서, 하나의 시냅스 입력에 있는 후기 LTP/LTD는 독립적인 입력에 있는 반대 단백질 합성 독립적인 early-LTD/LTP를 오래 지속되는 형태로 또는 그 반대로 변형시킨다22. 
해마 절편 제제는 장기 시냅스 가소성 연구에서 가장 널리 사용되는 모델입니다23,24. 시냅스 태깅(synaptic tagging)과 크로스 태깅(cross-tagging)의 개념에 대한 이해의 대부분은 해마의 CA1 영역에서 수행된 연구에서 비롯되었으며, 기술적 복잡성으로 인해 많은 실험실에서 여전히 이러한 과정을 연구할 수 없습니다. 쥐 해마 절편을 준비하기 위한 실험 조건과 장시간 동안 안정적인 후기 LTP/LTD를 기록하는 것은 시냅스 태깅/교차 태깅을 연구하는 데 매우 중요합니다23,25,26. 이 논문은 쥐의 급성 해마 절편에서 채취한 안정적인 장기 전위 기록을 사용하여 CA1 피라미드 뉴런에서 STC 및 교차 태깅과 같은 장기 가소성 과정을 연구하기 위한 자세한 실험 절차를 설명합니다.

<table><tbody><tr><td>I. 해부 도구</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1. 붕대 가위</td><td>KLS Martin, 독일</td><td>21-195-23-07</td><td></td></tr><tr><td></td><td>B-Braun/Aesculap, 독일</td><td>LX553R</td><td></td></tr><tr><td>2. 홍채 가위</td><td>B-Braun/Aesculap, 독일</td><td>BC140R,</td><td></td></tr> <tr><td></td><td></td><td>BC100R</td><td></td></tr><tr><td>3. Bone rongeur</td><td>World Precision Instruments(WPI), 독일</td><td>14089-G</td><td></td></tr><tr><td>4. Scalpel</td><td>World Precision Instruments(WPI), 독일;</td><td>500236-G</td><td></td></tr><tr><td></td><td>B-Braun/Aesculap, 독일</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td>BB73</td><td></td></tr><tr><td>5. 메스 블레이드 # 11</td><td>B-Braun / Aesculap, 독일</td><td>BB511</td><td></td></tr><tr><td>6. 낫 스케일러</td><td>KLS Martin, 독일</td><td>38-685-00</td><td></td></tr><tr><td>7. 각진 집게</td><td>B-Braun/Aesculap, 독일</td><td>BD321R</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>8. 마취/유도 챔버</td><td>MIP Anesthesia Technologies(현재 Patterson Scientific), Oregon</td><td>AS-01-0530-LG</td><td></td></tr><tr><td>II. ACSF 분대 화학물질</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1. 염화나트륨 (NaCl)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S5886</td><td></td></tr><tr><td>2. 염화칼륨 (KCl)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9541</td><td></td></tr><tr><td>3. 마그네슘 황산염 헵타하이드레이트 (MgSO4.7H20)</td><td>시그마-알드리치</td><td>M1880</td><td></td></tr><tr><td>4. 염화칼슘 이수화물 (CaCl2.2H2O)</td> <td>시그마 - 알드리치</td><td>C3881</td><td></td></tr><tr><td>5. 인산칼륨 일염기성 (KH2PO4)</td><td>시그마-알드리치</td><td>P9791</td><td></td></tr><tr><td>6. 중탄산 나트륨 (NaHCO3)</td> <td>시그마 - 알드리치</td><td>S5761</td><td></td></tr><tr><td>7. D-글루코스 무수 (C6H12O6)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G7021</td><td></td></tr><tr><td>III. 전기 생리학 기기</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1. 현미경</td><td>올림푸스, 일본</td><td>모델 SZ61</td><td></td></tr><tr><td>2. 온도 조절기</td><td>과학적인 시스템 디자인 Inc. 캐나다</td><td>PTC03</td><td></td></tr><tr><td>3. 차동 AC 증폭기</td><td>AM 시스템, 미국</td><td>모델 1700</td><td></td></tr><tr><td>4. 절연 펄스 자극기</td><td>AM 시스템, 미국</td><td>모델 2100</td><td></td></tr><tr><td>5. 오실로스코프</td><td>Rhode & 슈바르츠</td><td>HM0722</td><td></td></tr><tr><td>6. 디지털-아날로그 변환기</td><td>Cambridge Electronic Design Ltd. 영국 케임브리지</td><td>CED-Power 1401-3</td><td></td></tr><tr><td>7. 인터페이스 Brain Slice Chamber</td><td>Scientific Systems Design Inc. 캐나다</td><td>BSC01</td><td></td></tr><tr><td>8. 튜빙 펌프</td><td>Ismatec, Idex Health & 과학, 독일</td><td>REGLO-아날로그</td><td></td></tr><tr><td>9. Carbogen 유량계</td><td>Cole-Parmer</td><td>03220-44</td><td></td></tr><tr><td>10. 섬유 광 조명기</td><td>Dolan-Jenner 산업</td><td>섬유 라이트 MI-150</td><td></td></tr><tr><td>11. Micromanipulators</td><td>Marzhauser Wetzlar, 독일</td><td>00-42-101-0000 (MM-33)</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td>00-42-102-0000 (MM-32)</td><td></td></tr></tbody></table>

설치류에서 급성 해마 조각을 사용하여 시냅스 태그 / 캡처 및 크로스 캡처 조사

Investigation of Synaptic Tagging/Capture and Cross-capture using Acute Hippocampal Slices from Rodents

시냅스 태깅 및 캡처(STC)와 교차 태깅은 특정 시간 프레임 내에서 뉴런에서 시냅스 특이성과 연관성이 어떻게 달성되는지를 설명하는 세포 수준의 두 가지 중요한 메커니즘입니다. 이러한 장기적인 가소성 관련 과정은 세포 수준에서 기억 형성 및 지속성의 기초를 연구할 수 있는 주요 후보 모델입니다. STC와 교차 태깅은 모두 두 가지 연속 프로세스를 포함합니다: (1) 특정 자극 패턴에 의해 촉발된 시냅스 태그의 설정과 (2) 시냅스 태그가 새로 합성된 가소성 관련 단백질(PRP)과 상호 작용하는 시냅스 캡처. STC 및 교차 태깅의 개념에 대한 이해의 대부분은 해마의 CA1 영역에서 수행된 연구에서 비롯되었으며 기술적 복잡성으로 인해 많은 실험실에서 여전히 이러한 프로세스를 연구할 수 없습니다. 해마 절편의 준비와 안정적인 후기 LTP/LTD의 기록을 위한 실험 조건은 시냅스 태깅/교차 태깅을 연구하는 데 매우 중요합니다. 이 비디오 기사는 쥐의 급성 해마 절편에서 안정적이고 장기적인 자기장 전위 기록을 사용하여 CA1 피라미드 뉴런에서 STC 및 교차 태깅과 같은 장기 가소성 과정을 연구하는 실험 절차를 설명합니다.

설명 방법론 (위 스타). 이러한 성인 쥐의 급성 해마 조각에서 시냅스 태그 및 크로스 캡처 등의 LTP / LTD와 연관 상호 작용의 오래 지속되는 형태를 연구하는 데 사용되었다 (23)이 기술은 모두 쥐 실험에 대한 효과가 입증하고있다 마우스의 다양한 30,31 종자. 방법론은 최대 8 ~ 12 시간의 안정적인 LTP 녹음을 성공적으로 사용되어왔다. (32) 초기 LTP의 (도 3B, 충전 원 S2)하여 변환 그렇지 않으면 부패 형태 (하나의 입력 (S1)의 약한 tetanization 설정 한 &#39;태그&#39; &#39;PRPS&#39;다른 독립적하지만 중복 입력의 강한 tetanization에 의해 유도를 캡처 오래 지속되는 한 (그림 3B, 열린 원)에 S1에 -LTP) (WTET에 의해 유도 된 초기 LTP의 비교를 위해) 20,33을 참조하십시오. 약에 의해 캡처 PRPStetanization 집합 태그는 반드시 이키 유도 후기 LTP에서 올 필요는없고 또한 SLFS 유도 후기 LTD에 의해 제공 될 수있다. LTP와 회사 사이에 긍정적 인 연관 상호 작용의 유형은 &#39;크로스 태그 / 캡처&#39;라고합니다. (S1)에 WTET에 의한 초기 LTP는 S2에서 SLFS 유도 늦게 회사에서 제공하는 PRPS (그림 3C, 채워진 원)를 캡처하여 늦은 LTP (그림 3C, 열린 원)로 강화됩니다. 자신의 기준과 비교했을 때 통계 학적으로 유의 한 상승 작용 또는 우울증은 두 경우 모두에서 S1과 S2로 유지 하였다 (윌 콕슨 테스트; P &lt;0.05). 태그 PRP 상호 작용이 발생하는 경우 (약한 전에 강한 / 강한-전에 약함)은 두 이벤트 사이의 시간 윈도우는 30-60의 범위 내로 유지되는 한, 두 가지 이벤트의 시간적 순서만큼 중요하지 않다 분. 그것은에서, 세 번째 독립하지만 중복 시냅스를 포함하는 것이 현명 할 것입니다두고 기록의 안정성을 모니터링하는 기준선 대조군으로서 사용. LTP / LTD의 early- 늦게 형성을 유도하는 데 사용되는 전기 자극 프로토콜은 STC 실험에 사용하기 전에 일관성과 신뢰성을 단일 입력 실험에서 검증해야합니다. 우리는 또한이 실험의 성공은 조각의 품질에 크게 의존하기 때문에 프로토콜에 설명 슬라이스 준비 방법론의 중요성을 강조하고 싶습니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/53008/53008fig1.jpg" /> 해마 절제술에 사용되는도 1 (A) 도구 (A) 붕대 가위 (b) 아이리스 가위 (c) 뼈 rongeur (d) 얇은 주걱, 소프트 (E) 메스 번호 11 (F) 낫 스케일러 (g) -bristle 페인트 브러시 (H) 플라스틱 파스퇴르 피펫 (I) 종이 필터 (85mm) (J) 종이 필터 (30mm) (K) 배양 접시와 비커에 맞게 유리 비커 (L) 알루미늄 냉각 블록(M) 페트리 접시. (B) 수동 조직 헬기. () 플랫폼 (b)는 블레이드 홀더 (C) 버니어 마이크로 미터, 해상도 10 미크론의 팔을 절단. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53008/53008fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/53008/53008fig2.jpg" /> 도 2 전기 생리학 셋업 (A)으로 이루어진 자극 필드 전위 기록 용 (b) 차동 증폭기 (c) 아날로그 - 디지털 변환기 (D) 오실로스코프 (E) 수집 소프트웨어 (F)와 컴퓨터 내진 저항하는 탁상 형 전극 홀더와&gt; 4 배 확대 (H) 인터페이스 뇌 슬라이스 챔버 (I) ACSF과 carbogen 공급 (J) 온도 조절기 (K)에 대한 관류 시스템 조명 원 (L) 조종 (G) 현미경. (B) 인터페이스 뇌 슬라이스실. (C) 및 (D) 인터페이스 챔버에서 해마 조각 유리 모세관에 밀봉. (E) 스테인레스 스틸 전극. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53008/53008fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/53008/53008fig3.jpg" /> 그림 3. (A) 필드 잠재력 녹음 가로 해마 슬라이스와 전극 위치의 도식 표현은이 표현에서, 두 자극 전극 (S1 및 S2)을 자극하는 CA1 지역의 지층 radiatum에 위치하는 두 개의 독립적 인하지만 중복 CA1 피라미드 뉴런 상에 시냅스 입력. 두 세포 외 기록 전극, 하나는 혀끝 수지상 실에서 현장 EPSP (흥분성 시냅스 후 전위)를 기록하고 다른 하나는 피라미드 세포에서 체세포 인구 스파이크를 기록기관은 각각 지층 radiatum 및 지층 pyramidale에 있습니다. CA1- cornu ammonis 지역 1, CA3- cornu ammonis 영역 (3), DG- 치아 이랑, SC-Schaffer의 담보 섬유, S1- 자극 전극 (1), (S2) - 자극 전극 (2) (B) 약한 STC을 연구하는 강력한 패러다임 전에 : 약한 tetanization (WTET)는 늦은 LTP를 유도하기 위해 30 분에서 S2의 강력한 tetanization (이키) (채워진 원) 다음 초기 LTP를 유도 (오픈 원) (S1)에 적용됩니다. (S1)의 초기 LTP는 태그를 보여주는 늦은 LTP에 강화 및 상호 태그를 공부하는 강력한 패러다임 전에 (N = 6) (C) 약한 상호 작용을 캡처 가져옵니다. 조기 LTP는 다음 S1 (개방 원)에 WTET에 의해 유도된다 30 분 후 SLFS를 사용하여 (S2)에서 후반 회사의 유도 (채워진 원)에 의해. (S1)에서, 초기 LTP 크로스 태그 및 캡처를 보여주는 6 시간 지속 늦은 LTP로 변환 (N = 6). 단일 화살표는 초기 LTP 유도에 적용 약한 tetanization을 나타냅니다. 화살표의 삼중 나타냅니다늦은 LTP를 유도하는 강력한 tetanization. 깨진 화살표 SLFS가 늦은 LTD을 유도하는 대표적인 시냅스 입력에인가 된 시점을 나타낸다. 오차 막대는 SEM을 나타냅니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53008/53008fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

이 비디오 기사는 설치류의 급성 해마 절편을 사용하여 CA1 피라미드 뉴런에서 시냅스 태깅, 캡처 및 교차 태깅과 같은 장기 가소성과 연관 과정을 연구하기 위한 실험 절차를 설명합니다.

Synaptic tagging and capture (STC) and cross-tagging are two important mechanisms at cellular level that explain how synapse-specificity and associativity ...

이 실험 절차의 전반적인 목표는 설치류의 해마 슬라이스를 사용하여 CA1 피라미드 뉴런에서의 장기 가소성과 시냅스 태깅, 캡처 및 교차 태깅과 같은 연합 과정들을 연구하는 것입니다. 이는 먼저 뇌를 해부하고 차가운 산소 공급 인공 뇌척수액으로 해마를 빠르게 분리함으로써 수행됩니다. 두 번째 단계는 수동 조직 절단기를 사용하여 급성 해마 슬라이스를 준비하고 이를 인터페이스 챔버에서 배양하는 것입니다.다음으로 두 개의 자극 전극과 두 개의 기록 전극을 CA1 영역에 배치하여 두 개의 시냅스 입력으로부터 필드 EPSP 및 모집 스파이크(population spike) 반응을 기록합니다. 마지막 단계는 특정 시간 창 내에서 하나의 시냅스 입력에는 일시적인 형태의 가소성을, 다른 입력에는 지속적인 형태의 가소성을 유도하는 것입니다. 최종적으로, 두 입력 모두에서 필드 EPSP 반응을 장시간 기록하여 시냅스 태깅 캡처(synaptic tagging capture) 및 교차 캡처(cross capture) 메커니즘을 조사합니다.시냅스 태깅 및 캡처(Synaptic tagging and capture)는 특정 시간 범위 내에서 단기 기억이 어떻게 장기 기억으로 전환되는지에 대한 개념적 기초를 제공합니다. 이 방법은 여러 시냅스 입력으로부터의 자극과 기록을 포함하므로 실험 단계를 학습하기 어렵기 때문에, 이에 대한 시각적 시연이 매우 중요합니다. 실험 절차의 시연은 본 연구실의 대학원생인 Mahesh Shira, machete 및 maima Sharma가 진행할 예정입니다.이 절차를 시작하려면, A CSF를 준비하고 95% oxygen과 5% carbon dioxide로 버블링합니다. 인터페이스 챔버 바닥에 증류수를 용량의 약 70%까지 채웁니다. 그런 다음 32 °C로 사전 설정된 온도 조절기를 켭니다.다음으로, 유입 튜브를 통해 증류수를 높은 유속으로 흘려보내 상단 챔버를 10~15분 동안 세척한 후, 유속을 1 mL/min으로 설정하여 A CSF로 전환합니다. 그다음, 슬라이스가 놓일 수 있는 표면을 제공하기 위해 상단 챔버에 네트를 배치합니다. 하단 챔버에 카보젠(carbogen) 공급을 시작하고, 유입 튜브를 지속적으로 카보젠 처리되고 있는 A CSF에 담급니다.A CSF가 carbogen으로 포화되고 상단 챔버를 가득 채울 때까지 20분 동안 기다립니다. 이 단계에서 조직 절단기(tissue chopper)에 면도날을 장착하고 절단면이 고르게 정렬되었는지 확인합니다. 작은 거름종이를 절단하여 날이 단단히 고정되었는지 테스트합니다.그런 다음 슬라이딩 버니어 마이크로미터를 시작 위치로 설정합니다. 이제 안락사시킨 쥐의 머리를 준비하고, 홍채 가위를 사용하여 후두부를 절개해 뇌줄기를 제거합니다. 이어서 두개골 오른쪽을 따라 작게 절개하고, 왼쪽은 더 길게 절개합니다.골 절삭기를 사용하여 두개골의 왼쪽에서 오른쪽 방향으로 조심스럽게 제거합니다. 피질과 이를 덮고 있는 얇은 경막층을 드러내기 위해 얇은 스패튤라로 경막을 조심스럽게 제거한 다음, 골 절삭기로 전두판을 제거합니다. 이어서 스패튤라의 평평한 끝부분을 사용하여 피질과 소뇌 사이의 접합부에 남아 있는 경막을 제거하며, 이때 압력을 위쪽으로 유지하여 뇌가 손상되지 않도록 주의합니다.스패튤라를 사용하여 뇌를 차갑게 냉각된 탄산화 A CSF가 채워진 알루미늄 냉각 블록 위의 페트리 접시에 조심스럽게 옮깁니다. 11번 메스를 사용하여 해마를 분리하기 위해, 소뇌를 제거하기 위한 직선 절개와 뇌 전면부의 1/4을 제거하기 위한 절개를 각각 수행합니다. 그 다음 중앙선을 따라 얕은 시상면 절개를 수행합니다. 중앙선에서부터 시작합니다.시클 스케일러(sickle scaler)를 사용하여 피질을 조심스럽게 제거하여 배측 해마를 노출시킵니다. 그 후, 해마 위의 피질 층을 제거합니다. 해마교차(hippocampal commissure) 부위를 작게 절개합니다.식클 스케일러(sickle scaler)를 사용하여 등쪽 끝부터 굴리는 동작으로 해마를 조심스럽게 제거합니다. 이어서, 식클 스케일러의 곡선형 끝부분을 이용해 분리된 해마 주변의 피질과 결합 조직을 제거합니다. 해마 조직을 절편화하기 위해, CSF에 적신 30 millimeter watman 여과지 조각을 수동 절편기(manual slicer)의 절단 스테이지 위에 놓습니다.해마 조직을 거름종이 위로 옮깁니다. 낫 모양 메스(sickle scalpel)의 평평한 끝부분을 사용하여, 해마가 슬라이서 칼날에 대해 적절한 방향으로 정렬되도록 거름종이를 이동시켜 해마가 fia에 대해 약 70도 각도로 절단되도록 합니다. 다음으로, 해마 조직 주변의 과잉 용액을 흡수시켜 제거합니다.접은 거름종이를 사용하여 해마를 가로 방향으로 절단하고, 절편의 형태가 명확하지 않은 해마의 양 끝단 조직은 제거합니다. 그 후, 매 절단 단계마다 버니어 마이크로미터를 조정하여 남은 조직을 400 micron 두께의 절편으로 자릅니다. 각 절단 후, 부드러운 솔이 달린 브러시를 사용하여 절편을 칼날에서 조심스럽게 옮겨 차가운 carbonated A CSF가 채워진 작은 비커에 넣습니다.그런 다음 깨끗한 플라스틱 파스토레트(past pipette)를 사용하여 절편들을 슬라이스 챔버 내의 망 위로 조심스럽게 옮깁니다. 끝이 넓은 팁을 사용하여 전극 위치 선정과 기록 확인이 용이하도록 절편의 위치를 세심하게 조정하며, 절편들이 A CSF 층에 충분히 둘러싸여 있되 완전히 잠기지 않았는지 확인합니다. 그 후 챔버를 덮고, 시냅스 태깅 및 캡처(synaptic tagging and capture) 실험의 경우 절편을 2~3시간 동안 배양합니다.현미경 하에서 CA1 영역의 stratum radiatum에 두 개의 자극 전극을 배치하여 Schaffer collateral 섬유를 자극하고, 자극 전극 사이의 중간 지점인 CA1의 apical dendritic 영역에 기록 전극을 배치합니다. fEPSP 반응을 기록하려면, population spike 기록을 위해 stratum pyramidale 층에 또 다른 기록 전극을 배치하십시오.모든 전극이 슬라이스에 닿으면, 두 입력단 모두에서 적절한 field EPSP 신호를 얻을 수 있는지 확인하기 위해 테스트 자극을 줍니다. 적절한 fEPSP 신호가 확인되면, 조작기의 미세 조절 노브를 사용하여 전극을 약 200 microns 더 조심스럽게 내립니다. 그 후 슬라이스가 회복될 수 있도록 20분 동안 대기합니다.그 후, 20 microamps에서 100 microamps 범위의 전류 강도로 field EPSP의 기울기를 측정하여 입력-출력 관계를 결정합니다. 그런 다음 각 입력에 대해, 최대 field EPSP 기울기의 40%를 유발하는 자극 강도를 실험 전체 기간 동안의 일정 자극으로 설정합니다. 15분에서 20분 후에 baseline 기록을 시작하며, 하나의 입력에서 L-T-P-L-T-D 유도 전 최소 30분에서 60분 동안 안정적인 baseline을 기록하고, 단일 고주파 자극으로 구성된 약한 tetin 프로토콜을 사용하여 초기 LTP를 유도합니다.다른 입력 경로에서 초기 LTP 유도 30분 후까지 기저선을 계속 기록하는 동안, 10분의 인터트레인 간격을 둔 반복적인 고주파 자극을 포함하는 강력한 tetin 프로토콜을 사용하여 입력 경로 S2에서 후기 LTP를 유도합니다. 그런 다음, 시냅스 태깅 및 캡처(synaptic tagging and capture)에 의해 입력 경로 S1의 초기 LTP가 후기 LTP로 전환되는 것을 확인하기 위해 장시간 동안 field EPSP 반응을 기록합니다. 마찬가지로, 교차 캡처(cross capture) 실험에서는 먼저 한 입력 경로에서 초기 LTP를 유도하고, 30분 후에 15분 동안 900회의 버스트로 구성된 강력한 저주파 자극 프로토콜을 사용하여 다른 입력 경로에서 후기 LTD를 유도합니다.그 다음, 교차 포착(cross capture)에 의한 입력 S1의 초기 LTP가 후기 LTP로 전환되는 것을 확인하기 위해 장시간 동안 전기생리학적 EPSP 반응을 기록합니다. 이 구성에서는 두 개의 자극 전극이 CA1 영역의 stratum radiatum에 배치되어, 서로 독립적이면서도 중첩되는 두 개의 시냅스 입력을 자극합니다. CA1 피라미드 뉴런에는 두 개의 세포외 기록 전극을 배치합니다.하나는 apical dendritic compartment로부터 F-E-P-S-P를 기록하기 위한 것이고, 다른 하나는 stratum radiatum과 stratum pyramidale에 각각 위치한 pyramid cell bodies로부터 somatic population spike를 기록하기 위한 것입니다. 이 그림은 시냅스 태깅 및 캡처(synaptic tagging and capture)를 연구하기 위한 weak-before-strong 패러다임을 보여줍니다.초기 LTP를 유도하기 위해 S one에 약한 테타 자극(tetin)을 가한 후, 30분 뒤에 후기 LTP를 유도하기 위해 S two에 강한 테타 자극을 가하며, 이 그림은 교차 태깅(cross tagging)을 연구하기 위한 강한 패러다임 이전의 약한 패러다임을 보여줍니다. S one에서의 약한 테타 자극으로 초기 LTP가 유도되고, 이어 강한 저주파 자극 프로토콜을 사용하여 S two에서 후기 LTD가 유도됩니다. S one에서 30분이 지나면 초기 LTP가 6시간 동안 지속되는 후기 LTP로 전환되며, 이는 교차 태깅 및 캡처(capture)를 보여줍니다.이 해부 및 절편 준비 기술을 숙달하면 3~5분 이내에 매우 빠르게 수행할 수 있습니다. 따라서 장시간 기록을 위해 절편의 생존력을 유지할 수 있습니다. 또한 이 방법을 사용하여 다양한 약리학적 제제가 시냅스 태깅 및 캡처 과정에 미치는 영향을 테스트할 수 있습니다.이 영상을 시청하고 나면, 장기 기능적 가소성 실험을 수행하는 방법과 시냅스 태깅 및 캡처 과정에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

이 문서는 뇌의 노화 및 알츠하이머 질환 같은 나이와 관련된 neurodegenerative 질병와 관련된 시냅스 변경의 연구를위한 유전자 변형 쥐 및 생쥐에서 hippocampal 조각 준비 절차를 설명합니다.

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이 비디오는 쥐 해마 절편에서 CA3-CA1 시냅스 반응을 기록하는 방법을 보여줍니다. 해마 절편에 자극 및 기록 전극을 배치하고 시냅스 반응 강도를 평가하기 위해 fEPSP(field excitatory postsynaptic potential)를 측정하는 단계를 간략하게 설명합니다.

쥐 해마 절편에서 CA3-CA1 시냅스 반응 기록

출처: McLeod, F., et al. 해마 설치류 뇌 절편의 시냅스 밀도 평가. J. Vis. 특급 (2017). 이 비디오는 컨포칼 면역형광 분석을 사용하여 해마 뇌 절편에서 시냅스 마커를 시각화하는 방법을 보여줍니다. 슬라이스는 시냅스전 및 시냅스후 마커를 표적으로 하는 1차 항체로 면역 염색된 후 형광단 접합 2차 항체로 면역 염색됩니다. 그런 다음 표지된 마커는 공초점 현미경을 사용하여 시각화하여 공동 국소화를 통해 시냅스 구조를 평가합니다.

면역형광을 이용한 마우스 해마 절편의 시냅스 현미경 분석

단백질의 지역화 및 배포는 세포 기능을 이해하기위한 중요한 정보를 제공합니다. 전자 현미경의 우수한 공간 해상도 (EM)는 주어진 항원에 따라 immunohistochemistry의 subcellular 지방화를 결정하는 데 사용할 수 있습니다. 유지 항원은 EM 연구에 특히 곤란했던 반면 구조적 무결성을 유지 중추 신경계 (CNS)의 조직하십시오. 여기, 우리는 공부를 할 수있는 CNS에 구조와 항원을 보존하고 쥐 hippocampal CA1 피라미드 뉴런에서 시냅스 단백질을 특성화하는 데 사용 된 절차를 채택한다.

Hippocampal 슬라이스 문화의 시냅틱 단백질의 포스트 퍼가기 Immunogold 라벨링

우리의 해마 CA1 영역과 슬라이스 tetanized 영역으로부터 핵 농축 분획의 분리 이후에 장기간 상승 작용의 유도에 대한 상세한 프로토콜을 제공한다. 이 방법은 활성보기 학습 및 기억의 세포 모델에 의존하는 핵 단백질 수입을 결정하기 위해 사용될 수있다.

해마 조각에서 CA1 핵 농축 분획의 분리는 Synapto 핵 메신저 단백질의 활동에 의존하는 핵 가져 오기를 공부합니다

이 프로토콜 산소 수준 재활용된 버퍼의 작은 볼륨과 침수 급성 hippocampal 조각 활동 종속 시 냅 스가 소성 녹음의 방법 론 적 측면에서의 안정화를 설명 합니다.

급성 Hippocampal 조각에 작은 볼륨 재활용-, 관류-침수 형 챔버 시스템 유지에 시 냅 스가 소성을 기록

정확 하 게 파악 하 고 분석 hippocampal 조각 면역 형광을 사용 하 여 시 냅 스에 대 한 프로토콜은이 문서에 설명 되어.

시 냅 스 밀도 Hippocampal 설치류 두뇌 분할 영역에서의 평가

이 문서는 마우스에서 수평 해마 뇌 조각을 얻기 위해 체계적인 프로토콜을 설명하는 것을 목표로합니다. 이 방법론의 목적은 천공 경로 및 이끼 섬유장과 같은 해마 섬유 경로의 무결성을 보존하여 규톨염 자이러스 관련 신경학적 과정을 평가하는 것입니다.

마우스 뇌의 수평 해마 조각

우리는 마우스의 등간 중간 해마에서 급성 슬라이스를 준비하는 프로토콜을 제시한다. 우리는 기록의 품질과 기록 된 뉴런의 형태학적 특징의 보존 측면에서 관상 슬라이스와이 트랜스 버사제 준비를 비교합니다.

성인 마우스의 덴테이트 자이루스에서 전신 기록 및 신경 재건을위한 등산 해마에서 급성 슬라이스의 준비

학습하세요 설치류 급성 해마 조각을 이용한 시냅스 태깅 및 캡처 메커니즘 연구 방법을. CA1 피라미드 뉴런에서 장기 가소성과 기억 형성 과정을 전기생리학적으로 분석하는 실험 기술을 습득하세요.

설치류에서 급성 해마 조각을 사용하여 시냅스 태그 / 캡처 및 크로스 캡처 조사

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