Name: 폴리 디메틸 실록산 박막을 사용하여 자동화 지질 이중층 제막 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-07-10T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 23 s
Description: 배우세요 자동화된 지질 이중층 형성 방법을 폴리디메틸실록산 박막을 사용하여 연구하세요. 이 기술은 1시간 이내에 재현 가능한 막을 형성하여 막-단백질 상호작용 연구를 간소화합니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

본 연구는 한국연구재단의 개척연구센터 프로그램(NRF-2012-0009575)과 국가연구재단 보조금(NRF-2012R1A1B4002413, NRF-2014R1A1A2059341)의 지원을 받았습니다. 이 연구는 인하대학교 연구 보조금의 일부 지원도 받았습니다.

1. 솔루션 준비 <ol><li> 버퍼 용액의 제조 : <ol><li> 버퍼 용액을 공식화 한 M의 KCl (염화칼륨), 10mM의 트리스 -HCl (트리스 - 히드로 클로라이드), 증류수에 1 mM의 EDTA (에틸렌 디아민 테트라 아세트산)을 용해하고 8.0의 pH를 조정한다. </li><li> 0.20 μm의 필터를 사용하여 상기 용액을 필터. 살균, 15 분 동안 121 ° C에서 상기 용액을 오토 클레이브. </li></ol></li><li> 프리 페인팅 지질 용액의 제조 : <ol><li> (w : v)로 DPhPC (1,2- diphytanoyl- SN -glycero -3- 포스파티딜콜린) 지질 사전 페인팅 지질 용액 제형이 3 %를 용해 (2)의 혼합물에 8 N -decane 및 헥사 (V : V). 회 전자를 사용하여 밤새 교반. </li></ol></li><li> 막 형성 지질 용액의 제조 : <ol><li> 0.1 % DPhPC (1,2- diphytanoyl- SN -glycero -3- 포스파티딜콜린) 지질을 용해, 막 형성 지질 용액을 공식화 (W : V) 2의 혼합물에 8 평방ualene와 헥사 (V : V). 회 전자를 사용하여 밤새 교반. </li></ol></li></ol> PDMS 박막의 형성 (2) <ol><li> PDMS의 예비 중합체를 형성하기 위해 믹싱 컵 1 (w / w) 비율 : 9에 PDMS와 경화제를 혼합한다. PDMS의에게 박막 (- 250 μm의 두께 200)를 형성하기 위해 페트리 접시에 PDMS 예비 중합체의 5g을 추가합니다. 박막을 형성하기 위해 10 초 동안 800 rpm에서 스핀 코터를 사용하여 PDMS 예비 중합체를 확산. </li><li> 기포를 제거하기 위해 2 시간 동안 100 mTorr의 압력에서 진공 건조기로 페트리 접시를 배치했다. 70 ° C에서 5 시간 동안 오븐 내에서 예비 중합체 박막 베이크 중합. </li><li> 정사각형 PDMS 박막을 만들기 위해 2 × 2cm이 사각형으로 중합 PDMS 박막을 자른다. PDMS 박막의 중심부에 구멍을 만들기 위해 500 ㎛의 마이크로 펀치를 사용한다. 8 N- 데칸 및 헥사 : 2로 혼합 3 % DPhPC 지질 솔루션을 사전 페인트 구멍. </li></ol> 3. 챔버 제조 및 ASSEmbly <ol><li> BLM 챔버를 제작하기 위해 4 cm X 1.5 cm × 1 cm이고, x 1.3 cm X 0.8 cm 17 1.5 cm의 내부 웰 차원의 외형 치수와 3D 드로잉 소프트웨어를 사용하여 챔버의 디자인이 대칭 블록. </li><li> CNC 기계와 PTFE 블록을 사용하여 챔버 공예 제조업체의 지침을 따르십시오. </li></ol> 4. 상공 회의소 총회 <ol><li> 챔버를 조립하기 위해, PTFE 두 블록 사이의 사전 - 그린 PDMS 박막 두는 PDMS 박막의 개구는 챔버 내의 홀과 정렬되도록. </li><li> 그리스와 커버 글래스 (광 관찰을 촉진)을 사용하여 상기 챔버의 외측 가장자리를 밀봉. 볼트와 너트를 사용하여 조립 실 고정시킨다. 참고 : 어떤 액체 누출이되지 않도록 챔버는 잘 밀봉되어 있는지 확인합니다. </li></ol> 신속 자기 조립 형성과 막 전구체의 5 형성 (MPES) <ol><li> 피펫을 사용하여 0.5을 증착N -decane 8 : 2로 혼합하여 0.1 % DPhPC 지질 ㎕의 챔버로 조립 PDMS 박막의 개구 위에 헥사. </li><li> 사용하는 냉동기 또는 10 ℃ 이하의 냉장고에 보관 챔버에 앞서. </li></ol> 6. 막 형성 및 검증 <ol><li> MPES와 BLM을 형성하는 냉장고에서 실을 인출하고 상기 챔버의 각 측면에 완충 용액 2 ㎖을 정지. 냉동 막 전구체가 해동 될 때까지 &lt;10 분 동안 따로 실을 설정합니다. </li><li> 정확하게 광원 현미경에 대해 높이를 제어하는​​ 미세 조작기에 챔버를 배치했다. BLM 형성 공정의 광 관찰 용 PDMS 박막의 개구를 밝게 할로겐 광섬유 일루미네이터를 사용하여 광원으로서 상기 챔버의 한면을 조명. </li><li> 다른 측면에서, BLM 형성을 관찰하기 위해 상기 광원에 대​​하여 수직으로 배치 디지털 현미경 (20 확대0X). </li><li> BLM 형성을 확인하기 위해, 색상이 고리보다 밝아진다 개구의 중심을 관찰한다. </li></ol> 7. 전기 녹화 <ol><li> 전기 측정을 위해&gt; 1 분 동안 차아 염소산 나트륨의 208 μm의 두께 실버 와이어와 표백제를 사용하여 자세 / CL 전극을 준비합니다. 깊이로 상기 챔버의 각 측면에 자세 / CL 전극 배치는 완충 용액에 침지한다. </li><li> 미세 전극 앰프에 전극을 연결합니다. 전기 생리학 소프트웨어를 이용하여 구형파를 취득하는 막에 걸쳐 ± 10 MV 삼각파를 적용한다. V_clamp (MV)에 표시된 화살표를 클릭하여 전압을인가 설정합니다. </li><li> 녹음 버튼 (빨간색 도트 아이콘)을 클릭하여 멤브레인의 전기적 특성을 기록합니다. 균일 한 사각 파가 관찰 될 때까지 녹화를 진행합니다. 검은 사각형 아이콘을 클릭하여 녹음을 종료합니다. </li></ol> 8. 이온 채널 설립 아니E : 조지아 지질 용액에 직접 첨가 될 때 그라 미시 딘 A (GA) 혼입는 BLM의 형성시에 자발적으로 발생한다. <ol><li> (GA) 채널의 활동을 관찰 멤브레인의 잠재력을 잡고 측정하기 위해 5 kHz의 샘플 속도에서 막에 걸쳐 100 MV를 적용합니다. V_clamp (MV)에 표시된 화살표를 클릭하여 전압을인가 설정합니다. </li><li> 녹음 버튼 (빨간색 도트 아이콘)을 클릭하여 조지아 법인의 전기적 특성을 기록합니다. 현재 점프가 관찰 될 때까지 녹화를 진행합니다. 검은 사각형 아이콘을 클릭하여 녹음을 종료합니다. </li><li> 전기 데이터 수집 후, 전기 생리학 소프트웨어를 사용하여 100 Hz에서 로우 패스 베셀 필터가 데이터를 필터링. </li><li> (~, 각 전류 점프 0.15 ns의 조지아 이온 채널의 이합체를 나타냅니다) 필터 잠재적 인 데이터를 들고 현재의 도약을 준수 조지아 법인을 확인 할 수 있습니다. </li></ol>

<ol><li>Hanke, W., Schulue, W. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHanke%2C+W+%22Planar+lipid+bilayers%3A+methods+and+applications%22">Planar lipid bilayers: methods and applications</a>. , Academic Press. (2012).</li>
<li>Mirzabekov, T. A., Silberstein, A. Y., Kagan, B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+planar+lipid+bilayer+membranes+for+rapid+screening+of+membrane+active+compounds%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Use of planar lipid bilayer membranes for rapid screening of membrane active compounds.</a> Methods Enzymol. 294, 661-674 (1999).</li>
<li>Bayley, H., Cremer, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stochastic+sensors+inspired+by+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Stochastic sensors inspired by biology.</a> Nature. 413 (6852), 226-230 (2001).</li>
<li>Fang, Y., Lahiri, J., Picard, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((G+protein-coupled+receptor+microarrays+for+drug+discovery%5BTitle%5D)+AND+%22Drug.+Discov.+Today%22%5BJournal%5D)">G protein-coupled receptor microarrays for drug discovery.</a> Drug. Discov. Today. 8 (16), 755-761 (2003).</li>
<li>Majd, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Applications+of+biological+pores+in+nanomedicine%2C+sensing%2C+and+nanoelectronics%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Applications of biological pores in nanomedicine, sensing, and nanoelectronics.</a> Curr. Opin. Biotechnol. 21 (4), 439-476 (2010).</li>
<li>Kim, Y. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthetic+Biomimetic+Membranes+and+Their+Sensor+Applications%5BTitle%5D)+AND+%22Sensors+%28Basel%29%22%5BJournal%5D)">Synthetic Biomimetic Membranes and Their Sensor Applications.</a> Sensors (Basel). 12 (7), 9530-9550 (2012).</li>
<li>Ryu, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Investigation+of+Ion+Channel+Activities+of+Gramicidin+A+in+the+Presence+of+Ionic+Liquids+Using+Model+Cell+Membranes%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Investigation of Ion Channel Activities of Gramicidin A in the Presence of Ionic Liquids Using Model Cell Membranes.</a> Sci Rep. 5, (2015).</li>
<li>Wood, C., Williams, C., Waldron, G. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patch+clamping+by+numbers%5BTitle%5D)+AND+%22Drug.+Discov.+Today%22%5BJournal%5D)">Patch clamping by numbers.</a> Drug. Discov. Today. 9 (10), 434-441 (2004).</li>
<li>Mueller, P., Rudin, D. O., Tien, H. T., Wescott, W. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reconstitution+of+cell+membrane+structure+in+vitro+and+its+transformation+into+an+excitable+system%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Reconstitution of cell membrane structure in vitro and its transformation into an excitable system.</a> Nature. 194, 979-980 (1962).</li>
<li>Montal, M., Mueller, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Formation+of+bimolecular+membranes+from+lipid+monolayers+and+a+study+of+their+electrical+properties%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.+S.+A%22%5BJournal%5D)">Formation of bimolecular membranes from lipid monolayers and a study of their electrical properties.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 69, 3561-3566 (1972).</li>
<li>Baaken, G., Sondermann, M., Schlemmer, C., Ruhe, J., Behrends, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Planar+microelectrode-cavity+array+for+high-resolution+and+parallel+electrical+recording+of+membrane+ionic+currents%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Planar microelectrode-cavity array for high-resolution and parallel electrical recording of membrane ionic currents.</a> Lab Chip. 8 (6), 938-944 (2008).</li>
<li>Costello, R., Peterson, I., Heptinstall, J., Byrne, N., Miller, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+robust+gel-bilayer+channel+biosensor%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Mater.+Opt.+Electron%22%5BJournal%5D)">A robust gel-bilayer channel biosensor.</a> Adv. Mater. Opt. Electron. 8 (2), 47-52 (1998).</li>
<li>Ide, T., Yanagida, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+artificial+lipid+bilayer+formed+on+an+agarose-coated+glass+for+simultaneous+electrical+and+optical+measurement+of+single+ion+channels%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem.+Biophys.+Res.+Commun%22%5BJournal%5D)">An artificial lipid bilayer formed on an agarose-coated glass for simultaneous electrical and optical measurement of single ion channels.</a> Biochem. Biophys. Res. Commun. 265 (2), 595-599 (1999).</li>
<li>Jeon, T. J., Malmstadt, N., Schmidt, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hydrogel-encapsulated+lipid+membranes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Chem+Soc%22%5BJournal%5D)">Hydrogel-encapsulated lipid membranes.</a> J Am Chem Soc. 128 (1), 42-43 (2006).</li>
<li>Malmstadt, N., Jeon, T. J., Schmidt, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-Lived+Planar+Lipid+Bilayer+Membranes+Anchored+to+an+In+Situ+Polymerized+Hydrogel%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Mater%22%5BJournal%5D)">Long-Lived Planar Lipid Bilayer Membranes Anchored to an In Situ Polymerized Hydrogel.</a> Adv. Mater. 20 (1), 84-89 (2008).</li>
<li>Jeon, T. J., Poulos, J. L., Schmidt, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+storable+and+shippable+lipid+bilayer+membrane+platform%5BTitle%5D)+AND+%22Lab.+Chip%22%5BJournal%5D)">Long-term storable and shippable lipid bilayer membrane platform.</a> Lab. Chip. 8 (10), 1742-1744 (2008).</li>
<li>Ryu, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+Lipid+Membrane+Formation+Using+a+Polydimethylsiloxane+Film+for+Ion+Channel+Measurements%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Automated Lipid Membrane Formation Using a Polydimethylsiloxane Film for Ion Channel Measurements.</a> Anal. Chem. 86 (18), 8910-8915 (2014).</li>
<li>Yaws, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aYaws%2C+C+%22Chemical+Properties+Handbooks%3A+Physical%2C+Thermodynamic%2C+Environmental%2C+Transport%2C+Safety%2C+and+Health+Related+Properties+for+Organic+and+Inorganic+Chemicals%22">Chemical Properties Handbooks: Physical, Thermodynamic, Environmental, Transport, Safety, and Health Related Properties for Organic and Inorganic Chemicals</a>. , MC GRAW HILL HANDBOOKS. (1999).</li>
<li>Windholz, M., Budavari, S., Stroumtsos, L. Y., Fertig, M. N. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aWindholz%2C+M+%22The+Merck+index.+An+encyclopedia+of+chemicals+and+drugs%22">The Merck index. An encyclopedia of chemicals and drugs</a>. , Merck & Co. (1976).</li>
<li>Miller, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMiller%2C+C+%22Ion+Channel+Reconstitution%22">Ion Channel Reconstitution</a>. , Springer Science & Business Media. (1986).</li>
<li>Miller, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Open-state+substructure+of+single+chloride+channels+from+Torpedo+electroplax%5BTitle%5D)+AND+%22Philos.+Trans.+R.+Soc.+Lond.+B.+Biol.+Sci%22%5BJournal%5D)">Open-state substructure of single chloride channels from Torpedo electroplax.</a> Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 299 (1097), 401-411 (1982).</li>
<li>Benz, R., Frohlich, O., Lauger, P., Montal, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrical+capacity+of+black+lipid+films+and+of+lipid+bilayers+made+from+monolayers%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim.+Biophys.+Acta%22%5BJournal%5D)">Electrical capacity of black lipid films and of lipid bilayers made from monolayers.</a> Biochim. Biophys. Acta. 394 (3), 323-334 (1975).</li>
<li>Priel, A., Gil, Z., Moy, V. T., Magleby, K. L., Silberberg, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ionic+requirements+for+membrane-glass+adhesion+and+giga+seal+formation+in+patch-clamp+recording%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Ionic requirements for membrane-glass adhesion and giga seal formation in patch-clamp recording.</a> Biophys. J. 92 (11), 3893-3900 (2007).</li>
</ol>

저자는 공개할 것이 없습니다.

당사의 BLM 형성 기술은 산업적 사용 가능성이 제한적인 기존 기술과 달리 세포막 및 이온 채널 연구를 위한 강력한 도구를 제공합니다. PDMS 박막을 이용한 멤브레인 전구체를 개발하고, 신속한 자가조립이 가능한 냉동막 전구체를 고안하였다.
막 형성이 필름과 지질 용액 사이의 표면 상호 작용을 통해서만 발생하는 소수성 필름을 사용한 기존의 막 형성 방법과 달리,20 PDMS 필름의 막 얇아짐은 표면 상호 작용 및 PDMS 필름에 의한 용매 추출을 통해 발생합니다. PDMS 박막 표면을 따라 용매 습윤뿐만 아니라 PDMS의 기공으로의 용매 흡수는 지질 이중층의 빠르고 일관된 형성을 촉진했습니다. 또한 점도가 높은 스쿠알렌과 어는점이 높은 헥사데칸의 조합으로 막 형성 시간을 제어할 수 있었습니다. 이 시스템을 통해 BLM 형성 성공률(< 80%)을 높이는 동시에 막 형성 시간(< 40분)을 줄일 수 있었습니다. 어는점이 높은 용매를 사용했기 때문에 멤브레인 전구체...

인공 지질 이중층 막 또는 블랙 지질막 (BLM)은 세포막 및 이온 채널의 메카니즘을 해명뿐만 아니라 이온 채널 이온 / 분자간 상호 작용을 이해하기위한 중요한 도구이다. 패치 - 클램프 방법이지만 1-7 종종 세포막 연구 금 표준을 고려하고,이 힘든이고, 이온 채널 측정 숙련 된 작업자를 필요로한다. 8 인위적 재구성 지질 이중층 막 이온 채널 연구 대체 공구로 부상하고 있지만, 9,10-들은 또한 수고와 연관된 프로세스 및 특정 전문 지식. 또한, 막은 기계적 교란에 취약하다. 따라서, 현재까지 도입 지질 이중층 기술은 제한된 실제 적용. (11) 지질 이중층 막, 카스텔 외. (12) 및 IDE와 야나기의 안정성과 수명을 향상시키기 위해서 <sup&gt; 13 하이드로 겔에 의해 지원되는 독립 지질 이중층을 고안 하였다. 그러나 향상된 수명에도 불구하고 (&lt;24 시간), 이중층 견고성이 향상되지 않았다. 전 등. 14 (몇 일까지) 강화 장수의 결과로, 친밀한 하이드로 겔 지질 이중층 연락처와 하이드로 겔 캡슐 막 (HEM)을 고안했다. 더 HEM의 수명을 증가시키기 위해, Malmstadt 및 전 등이. 하이드로 겔 지질이 두 시스템에서의 현장 공유 결합 (cgHEM). (15)를 통해 결합과 하이드로 겔 캡슐 막을 만들어, 막 수명이 크게 증가 (&gt; 십일) . 그러나, 막 형성 시스템은 충분히 강력하지 않았다 및 지질 이중층의 사용에 대한 전문 지식을 해방하는데 필요한 곳​​에 저장되거나 전달 될 수 없었다. 지질 이중층 플랫폼의 개발은 주로 증가 견고성과 BLMs의 수명 주위에 회귀하고있다. BLMs의 수명은 스와되었지만bstantially 향상된 최근 애플리케이션 인해 수송성 및 보존성의 부족에 한정되었다. 이러한 문제를 극복하기 위하여, 전은 외. 저장 가능한 막 시스템을 생성하고, MP를 구성하는 막 전구체 (MP). (16)를 도입들은 3 % DPhPC (1,2- diphytanoyl- 함유 N- 데칸 헥사 데칸의 혼합물을 제조 SN의 -glycero -3- 포스파티딜콜린)는 그것이 ~ 14 ℃ (실온 이하, 일반적인 냉장고 온도 이상)에서 동결되도록 지질 용액의 빙점을 제어한다. 이 실험에서, MP는 폴리 테트라 플루오로 에틸렌 (PTFE) 필름 상에 작은 구멍을 통해 분산시키고,이어서 4 ℃에서 냉장 냉동. 다용도 실온으로 기세 좋게하면 MP 해동 및 지질 이중층 자동 일반적 제막와 연관된 지식을 제거 형성 하였다. 그러나 MP에서 만든 BLM의 성공률은 ~ 27 % 및 막 상자 형성만큼 낮았다N 시간 (30 분 내지 24 시간)이었다 일관성 그 실제 응용을 제한. 이전 류에 의해보고 된 연구에서, 폴리 디메틸 실록산 (PDMS) 박막 대신에 (a)의 제어 제조 시간과 (b) BLM 형성의 성공 확률을 높이기 위해, 종래의 소수성 박막 (PTFE, 폴리 옥시 메틸렌, 폴리스티렌)로 사용되는 등. (17) 여기에서는, 제막 인해 PDMS의 다공성 특성의 용매 추출에 의해 촉진되고, 막 형성에 필요한 시간이 성공적으로 연구를 제어 하였다. 지질 용액 PDMS 박막에 흡수되었을 때,이 시스템에서는, 일정한 막 형성 시간이 달성되었다. 또한, 멤브레인의 수명 인해 PDMS 박막 지질 용액 스쿠알렌의 첨가의 결과로 용매를 서서히 흡수 연장 하였다. 우리는이 기술을 사용하여 형성 막 내가 적합한 지 확인하기 위해 광학 및 전기 측정을 실시채널 연구에.

<table><tbody><tr><td>염화칼</td>륨 : <td>Sigma-Aldrich</td><td>P9333</td><td>: 완충 용액</td></tr><tr><td>용 Tris-hydrochloride</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>1185-53-1</td><td>완충 용액</td></tr><tr><td>용 Ethylenediaminetetraacetic acid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>60-00-4</td><td>완충 용액</td></tr> <tr><td>n-decane</td><td>용 Sigma-Aldrich</td><td>44074-U</td><td>지질 용액 용</td></tr><tr><td>Hexadecane</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>544-76-3</td><td>지질 용액</td></tr><tr><td>용 Squalene</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S3626</td><td>지질 용액</td></tr><tr><td>Gramicidin A</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>11029-61-1</td><td>막 단백질</td></tr><tr><td>1,2-diphytanoyl-sn-glycero-3-phosphocholine</td><td>Avanti Polar Lipids, Inc.</td><td>850356</td><td>membrae 대형을 위해</td></tr><tr><td>Sylgard 184a와 184b elastromer 장비</td><td>다우 코닝 아시아</td><td></td><td>PDMS 박막</td></tr><tr><td>0.2를 생성하기 위하여; m 필터</td><td>Satorius stedim</td><td>16534----------K</td><td>완충액을 필터링하려면</td></tr><tr><td>Rotator</td><td>FinePCR</td><td>AG</td><td>지질을 균일하게 용해</td></tr>하려면 <tr><td>Autoclave</td><td>Biofree</td><td>BF-60AC</td><td>완충액을 살균하려면</td></tr><tr><td>Spin coater</td><td>Shinu Mst</td><td>SP-60P</td><td>PDMS 프리폴리머를 퍼뜨리기 위해</td></tr><tr><td>진공 데시케이터</td><td>Welch</td><td>2042-22</td><td>기포를 제거하려면 PDMS 프리폴리머</td></tr><tr><td>500 &mu; 엠&nbsp; punch</td><td>Harris Uni-Core</td><td>0.5</td><td>PDMS 박막 CNC 기계에 조리개를 만들려면</td></tr><tr><td></td><td>SME</td><td>거래 SME 2518</td><td>멤브레인 형성 챔버를 제작하려면</td></tr><tr><td>할로겐 광섬유 조명기</td><td>Motic</td><td>MLC-150C</td><td>광학 관찰을 위해 PDMS 박막의 조리개를 조명하려면</td></tr><tr><td>디지털 현미경 디지털</td><td>블루</td><td>QX-5</td><td>지질 이중층 멤브레인을 광학적으로 관찰합니다. 형성</td></tr><tr><td>전극</td><td>A-M 시스템</td><td></td><td>막 형성을 전기적으로 관찰하기 위해</td></tr><tr><td>미세 전극 증폭기 (Axopatch 증폭기)</td><td>Axon Instruments</td><td>Axopatch 200B 증폭기</td><td>멤브레인의 커패시턴스를 측정하기 위해 (원고에서 미세 전극 증폭기로 설명됨)</td></tr></tbody></table>

폴리 디메틸 실록산 박막을 사용하여 자동화 지질 이중층 제막

Automated Lipid Bilayer Membrane Formation Using a Polydimethylsiloxane Thin Film

인공 지질 이중층 또는 검은 지질 막 (BLM), 이온 채널 단백질의 상호 작용을 연구뿐만 아니라 바이오 센서 응용 프로그램을위한 강력한 도구입니다. 그러나, 기존의 BLM 형성 기술은 몇 가지 단점을 가지고 있고 그들은 종종 특정 전문 지식과 힘든 과정을 필요로한다. 특히, 기존의 BLMs 낮은 형성 성공률과 일치하지 않는 막 형성 시간을 겪는다. 여기서는, 폴리 디메틸 실록산 (PDMS)을 통상적으로 사용되는 필름 (폴리 테트라 플루오로 에틸렌, 폴리 옥시 메틸렌, 폴리스티렌)로 대체함으로써 조절 시닝 아웃 향상된 BLM 생성율 함께 보유하고 수송 BLM 형성 시스템을 보여준다. 이 실험에서는, 예컨대 PDMS 박막 등의 다공질 구조 중합체가 사용된다. 저점도 통상적으로 사용되는 용매는 대조적으로 또, 스쿠알렌의 사용은 막의 수명을 연장, PDMS에 의해 천천히 용매의 흡수를 통해 제어 시닝 아웃 시간을 허용. 광고에서시 조건은 스쿠알렌과 헥사 데칸의 혼합물을 사용함으로써, 지질 용액의 빙점 무기한 저장되고 용이하게 운반 할 수 있고, 전구체 막을 제작했다 이외에 (~ 16 ° C)를 증가시켰다. 이러한 막 전구체는 &lt;1 시간 BLM의 형성 시간을 단축하고 80 % ~ BLM의 형성 속도를 달성했다. 또한, 그래미시 딘 A의 이온 채널 실험 멤브레인 시스템의 타당성을 입증 하였다.

MPES 솔루션 구성의 최적화 지질 용매의 조성이 다른 성공적 MPES에서 지질 이중층 막을 재구성 시험 하였다. DPhPC 14 3 %를 함유하는 N- 헥사 데칸의 혼합물과의 MP 시스템 제막 (~ 27 %)의 낮은 성공률을 나타내었다. PDMS의 막이 연속적 지질 용액을 추출한 또한, 본래 지질 이중층 막을 유지하는 용매 조성물을 최적화 할 필요가 있었다. 스쿠알렌 사용한 경우 20 ° C. (19)에서 0.92 (Cp)의 점도를 갖는 대신 N- 데칸 사용한 C 18 20 ℃에서 12 (Cp)의 점도 따라서, 스쿠알렌, 안정성 및 수명 모두가로 인해 증가 PDMS에 의해 용매 흡수의 감소 속도는. 표 1은 다른 용매 조성 막의 얇아 아웃 시간, 수명 및 성공률을 비교합니다. <p class="jo...

우리는 보유, 수송 지질 이중층 형성 시스템을 보여준다. 냉동 막 전구체는 상온 상태로 전환하면 지질 이중층 막을 80 % 성공률 1 시간 내에 형성 될 수있다. 이 시스템은 이온 채널과 관련된 힘드는 과정과 전문​​ 지식을 줄일 수 있습니다.

An artificial lipid bilayer, or black lipid membrane (BLM), is a powerful tool for studying ion channels and protein interactions, as well as for ...

본 절차의 전반적인 목표는 폴리디메틸실록산(polydimethylsiloxane) 박막을 이용하여 자동화된 지질 이중층 형성을 연구하는 데 사용할 수 있는 방법을 설명하는 것입니다. 이 방법은 막-단백질 상호작용과 관련된 나노바이오센서 분야의 핵심 질문들에 대한 답을 찾는 데 도움을 줄 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 지질 이중층 형성이 자동화되어 있으며 재현 가능하다는 점입니다.먼저, 염화칼륨, tris hydrochloride 및 EDTA를 증류수에 혼합하여 완충 용액을 준비합니다. 그다음, 용액의 pH를 8.0으로 조정합니다. 이어서 0.2 micron 필터를 사용하여 용액을 여과하고, 121 °C에서 15분 동안 고압 증기 멸균합니다.다음으로, 부피 기준으로 undecane 2부와 hexadecane 8부로 구성된 혼합물에 지질 3%를 녹여 프리페인팅(pre-painting)용 지질 용액을 준비합니다. 로테이터를 사용하여 용액을 하룻밤 동안 교반합니다. 또한, 동일한 undecane 2부와 hexadecane 8부의 부피 혼합물에 지질 0.1%를 녹여 막 형성용 지질 용액을 준비합니다.이 용액 또한 로테이터에서 하룻밤 동안 교반하십시오. PDMS 박막을 준비하기 위해, 혼합 컵에 프리폴리머 9부와 경화제 1부를 섞습니다. 이 혼합물 5 g을 페트리 접시에 넣고, 800 rpm으로 10초 동안 스핀 코팅하여 두께가 200~250 µm인 막을 형성합니다.다음으로, 페트리 접시를 진공 데시케이터에 넣고 100 millitorr의 진공 상태를 2시간 동안 유지하여 잔류 기포를 제거합니다. 그런 다음, PDMS를 중합시키기 위해 오븐에서 70 °C로 5시간 동안 박막을 굽습니다. 냉각 후, 중합된 박막을 2 cm × 2 cm 크기의 정사각형으로 자르고, 직경 500 µm 펀치를 사용하여 정사각형 중앙에 작은 구멍을 만듭니다.그런 다음, 마이크로피펫을 사용하여 구멍에 3% 지질 용액 1 µL를 미리 도포합니다. 블랙 지질 막 챔버를 제작하려면, 3D 설계 소프트웨어를 사용하여 챔버용 대칭 블록 두 개를 설계하십시오. 그 후, PTFE 블록과 CNC 머신을 사용하여 챔버를 제작합니다.챔버를 조립하려면, PDMS 박막의 구멍이 챔버의 구멍과 중앙에 맞도록 미리 도색된 PDMS 박막을 두 개의 PTFE 블록 사이에 배치합니다. 커버 글라스와 진공 그리스를 사용하여 챔버의 외곽 가장자리를 밀봉합니다. 밀봉이 완료되면 너트와 볼트를 사용하여 조립된 챔버를 고정합니다.액체가 누출되지 않도록 챔버가 잘 밀봉되었는지 확인하는 것이 중요합니다. 피펫을 사용하여 0.1% 지질 용액 0.5 µL를 챔버와 결합된 PDMS 박막의 구멍 위에 떨어뜨립니다. 그런 다음, 챔버를 10 °C 이하의 냉각 환경에 두고 필요할 때까지 보관하십시오.신속한 자가 조립을 통해 블랙 지질 막을 형성하려면, 냉장고에서 챔버를 꺼내 챔버의 양측에 버퍼 용액 2 mL를 각각 넣습니다. 얼어있던 막 전구체가 녹을 때까지 챔버를 10분 동안 그대로 둡니다. 그런 다음, 광원 및 현미경에 대한 높이를 정밀하게 조절하기 위해 챔버를 마이크로 매니퓰레이터 위에 배치합니다.할로겐 광섬유 조명기를 사용하여 챔버의 한쪽 면을 비춤으로써 PDMS 박막의 조리개 부분을 밝게 합니다. 반대편에는 20x 대물렌즈를 조리개와 일직선이 되도록 배치하고, 색상이 환형(annulus)보다 더 밝아지는 중심부를 관찰합니다. 전기적 측정을 위해, 208 µm 두께의 은선을 차아염소산나트륨 용액에 최소 1분 동안 담가 염화은 전극을 준비합니다.다음으로, 전극을 마이크로전극 증폭기에 연결합니다. 그다음, 염화은 전극을 챔버의 양쪽에 배치하여 완충 용액에 잠기도록 합니다. 전기생리학 소프트웨어를 사용하여 막 전반에 10 millivolt 삼각형 파형을 가하여 사각형 파형을 획득합니다.녹화 버튼을 클릭하여 막의 전기적 특성을 기록합니다. 균일한 사각파가 관찰될 때까지 기록을 계속하십시오. 그런 다음, 검은색 사각형 아이콘을 클릭하여 기록을 중단합니다.그라미시딘 A를 지질 이중층에 통합하기 위해 두 가지 방법을 사용할 수 있습니다. 첫째, PDMS 박막의 구멍 위로 지질 용액을 도포하기 전에 그라미시딘 A를 지질 용액에 직접 첨가할 수 있습니다. 둘째, 지질 이중층이 형성되었을 때 챔버에 그라미시딘 A 용액을 첨가할 수 있습니다.gramicidin A 채널 활성을 관찰하려면, 5 kHz의 샘플링 속도로 막에 100 mV를 인가하여 막의 유지 전위를 측정합니다. 기록 버튼을 클릭하여 이전과 동일한 방식으로 전기적 특성을 기록합니다. 이온 채널 활성이 나타나면, 이온 채널의 삽입을 확인하기 위해 다양한 전류 도약이 관찰될 때까지 기록을 계속합니다.확인이 완료되면 검은색 사각형 아이콘을 클릭하여 기록을 종료합니다. 기록이 끝나면 전기생리학 소프트웨어를 사용하여 데이터를 100 hertz의 저역 통과 베셀 필터(low pass bessel filter)로 필터링합니다. 필터링된 유지 전위(holding potential) 데이터에서 전류 점프를 관찰합니다.이러한 도약은 그라미시딘 A 이온 채널의 이량체화를 나타냅니다. 냉동된 막 전구체를 실온으로 가져와 해동하면, 소수성 용매가 PDMS 박막으로 추출됨에 따라 지질 이중층 형성이 촉진됩니다. 이 일련의 이미지는 냉동 상태에서 가온될 때 자가 조립되는 지질 이중층의 형성 과정을 보여줍니다.여기서 전기 전도도는 gramicidin A의 삽입 및 이량체화를 보여줍니다. 이량체화가 일어나면 gramicidin A는 이온 채널을 형성하고 전도도 수준이 28 picosiemens로 급증하는데, 이는 이전 보고된 결과들과 일치하며 이 항생제가 지질 이중층으로 즉시 삽입되었음을 보여줍니다. 당사의 막 형성 기술은 실제 응용 가능성이 제한적인 기존 기술과 대조적으로, 세포막 및 나노채널 연구를 위한 강력한 도구를 제공합니다. 당사의 시스템은 막 형성이나 이온 채널 삽입 모두에 특별한 전문 지식을 필요로 하지 않으므로, 약물 스크리닝 및 바이오 센싱 응용 분야에 매우 적합합니다.

automated-lipid-bilayer-membrane-formation-using-polydimethylsiloxane

Research

연구

JoVE Journal

Bioengineering

생명공학

지원되는 지질 이중층과 천연 막 입자는 세포막의 특성을 근사 할 수 있고 분석 다양한 전략에 통합 될 편리한 시스템이다. 여기에서 우리는 지원 지질 이중층 코팅 된 SiO2로 비즈, 인지질 막 소포 또는 천연 입자로 구성된 마이크로 어레이를 제조하는 방법을 보여준다.

스퀴지 기반의 조립 방법과 생체막 마이크로 어레이의 형성

물방울 인터페이스 지질 이중층에 대한 미세 유체 분사는 막 비대칭, 횡단 단백질의 결합, 재료의 캡슐화 제어와 소포를 생성 할 수있는 신뢰할 수있는 방법을 제공합니다. 이 기술은 구획화 된 생체 분자가 소망되는 생물학적 시스템의 다양한 연구에 적용 할 수있다.

미세 유체 제트를 사용하여 지질 이중층 소포 세대

우리는 지질 소포를 사용하지 않고 고체 기판 상에지지 지질 이중층을 형성하는 실험 프로토콜을 제시한다. 우리는 다양한 생물학적 응용을위한 콜레스테롤이 풍부한 도메인과 지질 이산화 규소 및 골드 이중층뿐만 아니라지지 막을 형성하는 하나의 단계 방법을 보여준다.

용매를 이용한 지질 이중층 (SALB) 방법에 의해 생체막 제작

미세유체 이중 에멀젼 생성에는 일반적으로 패턴이 있는 습윤성 또는 맞춤형으로 제작된 유리 구성 요소가 있는 장치가 포함됩니다. 여기에서는 표면 처리나 복잡한 제조 공정이 필요하지 않고 14μm까지 이중 에멀젼을 생산할 수 있는 모든 폴리디메틸실록산(PDMS) 이중 에멀젼 발생기의 제조 및 테스트에 대해 설명합니다.

폴리 디메틸 실록산 (PDMS) 공동 축류 초점 장치를 사용하여 이중 에멀젼 생성

우리 제공 프로토콜 시험관에 마음과 나의 자기 조직 분석 오픈 챔버에 지원된 지질 bilayer에. 또한, 우리는 vivo에서 조건 반응 감 금에 의해 모방 PDMS microcompartments 지질 입은에 분석 결과 포함 하는 방법을 설명 합니다.

생체 외에서 자가 지원된 지질 Bilayers에 단백질 패턴 구성의 재구성

솔리드-지원, 단백질-무료, 이중 인지질 bilayer 막 (DLBM) 복잡 하 고 동적 지질 나노튜브 네트워크로 변형 될 수 있다 고 바인딩과 그물의 2D 상향식 모델로 사용할 수 있습니다.

자발적인 형성 및 바인딩과 그물에 대 한 상향식 모델로 인공 지질 나노튜브 네트워크의 재배치

우리는 구리 (II) 2,9,16,23 테트라 - 테르트 - 부틸 -29H,31H -phthalocyanine (CuPc) 분자와 지질 이중 층을 도핑하여 물 / 공기 인터페이스에서 하이브리드 지질 막을 생산하기위한 프로토콜을보고합니다. 그 결과 하이브리드 지질 막에는 지질/CuPc/지질 샌드위치 구조가 있습니다. 이 프로토콜은 또한 다른 기능성 나노 물질의 형성에 적용될 수 있다.

물/공기 인터페이스에서 소수성 유기 분자와 함께 도핑 하이브리드 지질 막의 자체 조립

이 프로토콜은 유니 지질 및 다중 지질 소포, 지원지질 이중층 및 일시 중단 된 지질 이중 층을 모방 하는 세포의 형성을 설명 합니다. 이러한 체외 모델은 다양한 지질 유형을 통합하도록 조정할 수 있으며 다양한 분자 및 거대 분자 상호 작용을 조사하는 데 사용할 수 있습니다.

분자 상호 작용 연구를 위한 세포 모방 지원 및 중단된 지질 이중층 모델의 조립

여기에서는 단일 분자 전반사 형광(smTIRF) 현미경을 사용하여 인공 군집 지질 막에서 단일 분자의 결합, 이동성 및 조립을 수행하고 분석하는 프로토콜이 제시됩니다.

단일 분자 확산 및 폴리머가 밀집된 지질 막에서의 조립

여기서, 나노바 담지 지질 이중층 시스템은 시험관 내에서 곡률 감지 능력을 가진 단백질의 특성 분석을 가능하게 하는 정의된 곡률을 갖는 합성 막을 제공하기 위해 개발된다.

시험관 내 막 곡률 감지 단백질 연구를 위한 나노바 지원 지질 이중층 시스템

본 프로토콜은 생체적합성 리포솜을 생성하기 위한 미세유체 기술인 옥탄올 보조 리포솜 어셈블리(OLA)를 설명합니다. OLA는 효율적인 캡슐화를 통해 단분산 미크론 크기의 리포솜을 생산하여 즉각적인 온칩 실험이 가능합니다. 이 프로토콜은 합성 생물학 및 합성 세포 연구에 특히 적합할 것으로 예상됩니다.

생명공학을 위한 온칩 옥탄올 보조 리포솜 어셈블리

배우세요 자동화된 지질 이중층 형성 방법을 폴리디메틸실록산 박막을 사용하여 연구하세요. 이 기술은 1시간 이내에 재현 가능한 막을 형성하여 막-단백질 상호작용 연구를 간소화합니다.

폴리 디메틸 실록산 박막을 사용하여 자동화 지질 이중층 제막

더 많은 동영상 탐색