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DOI: 10.3791/55833-v
Lukas Kaufmann*1, Mohammedyaseen Syedbasha*1, Dominik Vogt1, Yvonne Hollenstein1, Julia Hartmann1, Janina E. Linnik1,2,3, Adrian Egli1,4
1Applied Microbiology Research, Department of Biomedicine,University of Basel, 2Department of Biosystems Science and Engineering,ETH Zurich, 3Swiss Institute of Bioinformatics, 4Clinical Microbiology,University Hospital Basel
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
제시 프로토콜 인플루엔자 백신 받는 사람 혈 청 샘플에서 인플루엔자-특정 항 체 titers 척도를 hemagglutination 억제 시험을 수행 하는 방법을 설명 합니다. 첫 번째 분석 결과 hemagglutination에 의해 최적의 바이러스 성 항 원 농도를 결정합니다. 두 번째 분석 결과 hemagglutination 저해 하 여 인플루엔자-특정 항 체 titers 단정.
이 혈구응집억제 분석법의 전반적인 목표는 관심 있는 특정 바이러스에 대한 항체 역가를 측정하는 것입니다. 이 방법은 다양한 인구 집단과 다양한 연령 및 환자 그룹 내에서 백신 매개 면역 및 보호에 대한 백신학 분야의 주요 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기법의 주요 장점은 정확하고 중화 항체의 존재 여부를 빠르게 역가를 측정할 수 있다는 것입니다.
이 방법은 인간 항체 역가에 대한 통찰력을 제공할 수 있지만, 마우스 혈청에 대한 항체 역가와 같은 다른 시스템에도 적용할 수 있습니다. 먼저 96웰 마이크로타이터 플레이트에 적절한 실험 정보를 라벨링합니다. 그런 다음 플레이트를 수직 방향으로 돌리고 멀티 채널 피펫을 사용하여 하단 후면 적정 열의 첫 번째 웰을 제외한 모든 웰에 25마이크로리터의 PBS를 추가합니다.
새로 준비된 관심 항원 용액 50마이크로리터를 역 적정 열의 첫 번째 웰에 추가한 다음 RDE 처리된 혈청 샘플 25마이크로리터를 상위 10개 열의 첫 번째 웰에 추가합니다. 25마이크로리터의 적절한 항혈청을 11번째 줄의 첫 번째 웰에 양성 대조군으로 추가합니다. 각 행의 첫 번째 웰에서 연속적인 웰로 25마이크로리터를 이송하여 연속적인 2배 희석을 수행합니다.
각 희석 단계에 대해 10-15회 피펫팅을 위아래로 수행하여 마지막 웰에서 최종 25마이크로리터를 버립니다. 다음으로, 1열에서 11행까지의 각 웰에 항원 용액 25마이크로리터를 추가하고 후면 적정 열의 각 웰에만 25마이크로리터의 PBS를 추가합니다. 접시를 4면 모두 10번 조심스럽게 두드려 섞습니다.
그런 다음 실온에서 30분 동안 접시를 덮습니다. 배양이 끝나면 각 웰에 50마이크로리터의 적혈구 용액을 넣고 플레이트를 더 두드리며 혼합합니다. 그런 다음 접시를 다시 덮고 표에 설명된 대로 사용된 종에 따라 적혈구를 배양합니다.
플레이트에 적혈구를 추가한 후 분석에 사용된 혈액 유형에 맞는 적절한 배양 시간을 준수합니다. 배양이 너무 짧거나 너무 길면 결과가 잘못 해석될 수 있습니다. 배양이 끝나면 플레이트를 25초 동안 90도 기울여 혈구응집도를 평가하고 플레이트가 여전히 기울어져 있는 동안 96웰 플레이트의 인쇄된 구성표에 따라 각 웰에 대한 결과를 표시합니다.
이 실험에서는 2015년 인플루엔자 시즌 24일 이전에 인플루엔자 A/H1N1/California/2009, A/H3N2/Texas/2012 및 B/Massachusetts/O2/2012를 포함하는 불활성화 3가 인플루엔자 백신을 투여받은 26명의 건강한 지원자를 대상으로 백신으로 유도된 항체 반응을 평가했습니다. A/H3N2/Switzerland/2013 및 A/H3N2/Texas/2012 바이러스 균주에 대한 교차 반응 면역 반응이 관찰되었으며, 인플루엔자 A/H3N2/Texas/2012에 비해 인플루엔자 A/H3N2/Switzerland/2013에 대한 기하 평균 혈응집 억제 역가가 현저히 낮고 혈청 보호가 유도되었습니다. 백신 접종 후, A/H3N2/Switzerland/2013 균주가 백신에 없었음에도 불구하고 두 균주에 대한 항체 역가가 증가했습니다.
바이러스성 적혈구 응응집소는 적혈구 적혈구형성에 대한 종 의존적 잠재력을 보여줍니다. 흥미로운 점은, 기니피그의 혈액은 인플루엔자 B와 적절하게 혈구응집이 되지 않으며, 칠면조 혈액은 높은 역가와 낮은 교차 반응성을 동반한 혈구응집이 발생할 가능성이 있다는 것입니다. 이 기술을 마스터하면 제대로 수행하면 3시간 안에 완료할 수 있습니다.
이 절차를 시도하는 동안 바이러스의 혈응집이 진행되는 동안 비특이적 억제제 및 비특이적 결합을 비활성화하기 위해 RDE와 함께 혈청을 사용하는 것을 기억하는 것이 중요합니다. 이 절차에 따라 ELISA와 같은 다른 방법을 수행하여 개별 병원체 특이적 면역글로불린의 역할에 대한 추가 질문에 답할 수 있습니다. 개발 후 이 기술은 바이러스 면역학 분야의 연구자들이 다양한 연령대의 건강한 환자와 면역 억제 환자의 백신 관련 면역에 대한 이해를 심화할 수 있는 길을 열었습니다.
이 동영상을 시청한 후에는 인플루엔자 균주 특이적 항체 역가를 대규모로 정량화하기 위해 혈응집 억제 분석을 수행하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다. 바이러스 항원, 동물 혈액 및 인간 혈청 샘플로 작업하는 것은 매우 위험할 수 있으며 이 절차를 수행하는 동안 항상 BSL2 실험실에서 작업하는 것과 같은 예방 조치를 취해야 한다는 것을 잊지 마십시오.
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