Name: 애완 동물 및 MRI 유도 세포종 쥐 모델의 방사선 마이크로 irradiator를 사용 하 여 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-12-28T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 48 s
Description: 학습하세요 MRI 및 PET 영상 유도 정위 방사선 조사법으로 쥐 뇌종양을 정밀 치료하는 방법을. 이 기술은 전임상 연구에서 종양 생물학을 이해하고 방사선 치료 효과를 향상시키는 데 활용됩니다.

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저자는 Stichting 루카 Hemelaere와 미스 인터내셔널이이 작업을 지원 하기 위한 감사 하 고 싶습니다.

연구 (ECD 09/23 및 ECD 12/28) 동물 실험 윤리 위원회에 의해 승인 되었다. 모든 상업 정보 테이블의 자료에서 찾을 수 있습니다.
1. F98 기가바이트 쥐 세포 모델
<ol>
	<li>Monolayers Dulbecco의 수정된이 글 매체, 10% 송아지 혈 청, 1% 페니실린, 1% 스, 1 %L-글루타민, 그리고 0.1% 암포 b를 사용 하 여, ATCC에서 얻은 F98 기가바이트 셀 문화 그리고 CO2 인큐베이터 (5% CO2 와 37 ° C)에.</li>
	<li>Glioma 셀 여성 피셔 F344 쥐 (몸 무게 170 g)의 뇌에 접종<ol>
		<li>불 임 악기를 사용 하 고 항상 멸 균 장갑 착용.</li>
		<li>인슐린 주사기 (1 mL, 29 G) 74 mg/kg 케 타 민 및 11 mg/kg xylazine intrapertioneally (IP)의 혼합물을 주입 하 여 쥐를 anesthetize. 다리의 철수 반사 반응의 부재는 anesthetization를 확인 합니다. 쥐 코와 귀에 대 한 고정 포인트를 사용 하 여 정위 적 장치에 고정 장소 carbomer 눈 마 취에서 눈의 건조를 방지 하기 위해 젤.</li>
		<li>두개골의 뒤에 눈 수준에서 쥐를 면도 하 고 povidone-요오드와 함께 피부를 소독.</li>
		<li>2 cm의 중간 선 두 피 절 개를 통해 두개골 고 게 2.5 m m를 1 m m 구멍 (다이아몬드 드릴) 2mm 후부 측면 bregma 바로 정면에서.</li>
		<li>Stereotactically 가이드 인슐린 바늘 (29 G)를 삽입 하 고 삽입 5 µ L 세포 현 탁 액 (20000 F98 기가바이트 셀) 3 m m microsyringe 펌프 컨트롤러를 사용 하 여 깊은 (설정: (I50) 주사, 1 nL/s (001 SDN) 비율).</li>
		<li>주사기를 천천히 철회 하 고 뼈 왁 스로 절 개를 닫습니다. 피부를 봉합 하 고 povidone-요오드 소독.</li>
		<li>빨간 램프를 사용 하 여 수술 후 동물의 체온을 안정. Sternal recumbency를 유지 하기 위해 충분 한 의식 회복 될 때까지 쥐의 각을 모니터링 합니다. 완전히 복구 될 때까지 다른 동물의 회사에는 동물을 반환 하지 않습니다. 음식과 물 광고 libitum(정상 명암 주기 12 h, 20-24 ° C, 및 40-70% 상대 습도) 환경 제어 조건 하에서 모든 동물 유지. 자신의 몸 무게, 음식, 물 섭취 량, 그리고 그들의 활동 및 정상적인 동작을 모니터링 하 여 동물을 밀접 하 게 수행 되었는지 확인 합니다. Pentobarbital 나트륨의 치명적인 복용량을 사용 하 여 20% 체중의 감소를 관찰 하는 경우 또는 정상 동작 (예를 들어, 손질의 부족) 심각 하 게 악화 하는 때 (160 mg/kg) 동물을 안락사.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. 종양의 성장 확인
참고: 종양 성장 8 일 후 접종 MRI T2-가중치, 동적 대비 강화 된 MRI (DCE-MRI) 대비 향상 된 T1 가중치 MRI를 사용 하 여 평가 합니다. 종양에는 2.5 x 2.5 x 2.5 m m3의 크기에 도달 하면, 치료에 대 한 쥐를 선택 합니다.
<ol>
	<li>첫째, 측면 꼬리 정 맥에 정 맥 배치는 60 cm 긴 관에 30g 바늘을 연결 합니다. 2 %isoflurane 산소 (0.3 L/min)와 혼합을 통해 코 쥐를 anesthetize. 쥐 철수 반사는 사지의에 응답 하지 않는 때 anesthetization를 확인 합니다. 열띤된 담요로 쥐를 커버 하 고 MRI 침대에 그들을 배치. 건조를 방지 하기 위해 carbomer 아이 젤을 사용 합니다.</li>
	<li>고정된 쥐 뇌 표면 코일 홀더에 침대를 놓고 침대 72 m m 쥐 전신 송신기 코일에 위치.</li>
	<li>로컬라이저 스캔 뒤에 종양의 성장을 평가 하 스핀 에코 T2 가중치 검색을 수행 합니다. T2-MRI 순서 세부 사항: TR/테 3661/37.1 ms, 109 µ m 등방성에 평면 해상도, 슬라이스 두께 600 µ m, 4 평균, TA 9 분 45 s.</li>
	<li>T 2가 중 수집에 종양을 확인 하는 경우 정 맥 배치 튜브 (MRI 대비 에이전트, 0.4 mL/kg)에 가돌리늄 포함 된 대조 대리인 주사 30 DCE MRI 수집의 시작 s. 총 (플래시) 시퀀스는 단일 슬라이스 (슬라이스 두께 1 m m)에 빠른 낮은 각도 사용 하 여 12 분 동안 DCE MRI를 취득 합니다. (312 µ m2)의 평면에 공간 해상도 1.34의 시간적 해상도 사용 하 여 s.</li>
	<li>이미지 시퀀스 분석 도구를 사용 하 여 시간이 지남에 따라 신호 강도 의심된 종양 지역 내 관심 (ROI)의 영역을 선택 합니다. 그 후, 세포종 (그림 3)의 존재를 확인 결과 DCE 곡선의 모양을 분석 합니다.</li>
	<li>마지막으로, 인수 대비 향상 된 T1 가중치 스핀-에코 시퀀스. T1-MRI 순서 세부 사항: TR/테 1539/9.7 ms, 117 µ m 등방성에 평면 해상도, 슬라이스 두께 600 µ m, 3 평균, TA 4 분 15 s. 전형적인 대비 향상 된 T1 가중치 미스터 이미지 그림 2에 표시 됩니다.</li>
	<li>T1-가중치 시퀀스 마무리 후 동물 수 일어나 지속적인 감독 하에 전체 의식 회복 될 때까지.</li>
</ol>
3. 대상 볼륨 선택 multimodality 이미징
참고: MRI 기반 3D를 수행 수 F98 기가바이트 쥐의 등각 방사선 애완 동물 기반 하위 볼륨 증폭, 이미징 형식 수행할 필요가 3와 모델입니다. 첫째, radiotracer, 주입 후 MRI를 수행할 추적 통풍 관 동안 수행 이후 정적 애완 동물 수집 및 치료 계획 ct.
<ol>
	<li>코 콘을 사용 하 여 2 %isoflurane 산소 (0.3 L/min)와 혼합 된 동물 anesthetize 쥐 철수 반사는 사지의에 응답 하지 않는 때 anesthetization를 확인 합니다. 마 취에서 건조를 방지 하기 위해 carbomer 아이 젤을 사용 합니다.</li>
	<li>꼬리 정 맥에 카 테 터 (26 G)를 삽입, 200 µ L 염 분에 녹아 37 애완 동물 MBq 방사성 추적 프로그램의 주입을 사용 합니다. 각각 18F-FET 또는 18F-아무도, 30 분 또는 2 h 애완 동물 수집, 하기 전에 주사.</li>
	<li>애완 동물 수집 하기 전에 15 분 카 테 터를 사용 하 여 꼬리 정 맥에 MRI 대비 에이전트 (0.4 mL/kg)를 정 맥 주사.</li>
	<li>쥐에는 사내 multimodality 침대를 만들어 놓고 이미징 및 마이크로 조사 (그림 1) 동안 고정된 위치를 유지 하는 후크 및 루프 패스너를 사용 하 여 보안.</li>
	<li>아래, 위, 및 두개골의 오른쪽에 3 개의 multimodality 마커 (물으로 채워진 모 세관)을 수정 합니다. 쥐, 여전히 MRI 스캐너의 동물 소유자에서 multimodality 침대에 고정 배치, 쥐 뇌 표면 코일을 해결 하 고 72 m m 쥐 전신 송신기 코일에서이 설정의 위치. 대비 향상 된 T1 가중치 스핀-에코 시퀀스 다음 지역화 스캔을 수행 합니다.</li>
	<li>18F-FET 또는 18F-아무도 애완 동물 수집을 수행 하기 위해 동물을 전송 합니다. 목록 모드에서 30 분 정적 애완 동물 검사 취득. 스캔 해야 18F-아무도 주입 후 18F-FET 주입 후 또는 2 시간 중 30 분을 인수.</li></ol>60 반복 및 0.5 × 0.5 × 1.157 m m의 복 셀 크기를 사용 하 여 2D 최대 가능성 기대 극대화 (MLEM) 알고리즘에 의해 모든 애완 동물 검사는 200 × 200 × 64 매트릭스로 재구성 합니다.
	<li>장소는 동물 아직도 플라스틱 홀더 마이크로 irradiator의 4 축 로봇 위치 테이블에 보안에 multimodality 침대에 고정. 1 m m와 20 x 20 cm (1024 x 1024 픽셀) 비정 질 Si 평면 패널 감지기의 알루미늄 필터를 사용 하 여 고해상도 치료 계획 CT 스캔을 수행 합니다. 등방성 복 크기의 0.2 m m. CT 이미지 튜브 전압을 수정 하 고 현재 70 튜브 재구성 kV 및 0.4 mA, 각각. 360 예측 이상 360 °의 총 취득.</li>

4. 실시간 치료 계획
<ol>
	<li>전 임상 치료 계획 치료 계획 시스템 (PCTPS)를 사용 합니다. PCTPS로 계획 CT를 가져오고 3 개의 다른 조직 클래스로이 CT 이미지를 수동으로 세그먼트: 뼈, 부드러운 조직, 그리고 공기. 이 수동 구분 계획 중부에 3 개의 다른 회색 값 임계값을 정의 기반 뇌에 공기는 결 석 하 고 두개골의 그 뼈 두께 0이 아닌 이러한 수동으로 선택한 회색 값 임계값을 선택 합니다. 일단이 임계값을 정의 하면 재료 밀도 뼈, 부드러운 조직, 그리고 공기 (그림 4)에 대 한 PCTPS에 의해 할당 됩니다.</li>
	<li>MRI 지도 필요 하는 경우에 MRI 스캔을 로드 하 고 공동 계획 CT는 PCTPS를 사용 하 여 등록.<ol>
		<li>(3 개의 번역 및 3 개의 회전) 강 체 변환을, multimodality 마커 및 두개골을 사용 합니다. 정확한 fusion 오버레이하여 두개골의 증가 신호 강도 CT, MRI에 검은 신호, 수 달성 (그림 5).</li>
		<li>T1-가중치 MRI에 대비 향상 종양의 센터에서 방사선에 대 한 대상 선택 그림 6 과 그림 7을 참조 하십시오.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>애완 동물 정보를 추가 포함 되어야 합니다, 생물 의학 이미지 정량화 소프트웨어 (BIQS)를 사용 하 여 CT/MRI/애완 동물 공동 등록을 포함 합니다.<ol>
		<li>애완 동물/MRI 이미지 퓨전 (그림 8)을 달성 하는 BIQS에서 컨투어링 도구를 사용 합니다. 공동 등록 후 BIQS (그림 9)에서 증가 애완 동물 추적기 통풍 관의 센터에서 대상을 선택 하 고 다음 변환을 사용 하 여 PCTPS에 좌표를 수동으로 입력 하는 방법: X → X, Y → Z, 그리고 Z → Y.</li>
		<li>소정의 복용량, 호, 호 위치, 회전 범위 호와 겨냥 틀 크기 (그림 10)의 수를 선택 합니다.</li>
		<li>MRI 기반 실시간에 대 한 다음 설정을 사용 하 여: 20 Gy, 120 °의 아크 회전-45 °, 0 °, 45 °의 각 소파와 5 x 5 mm의 겨냥 틀 크기에 위치 3 호 소정의 복용량.</li>
		<li>애완 동물 MRI 유도 하는 RT에 대 한 다음 설정을 사용 하 여: 3 호와 5 x 5 mm 겨냥 틀 및 여분의 5 Gy를 사용 하 여 하위 볼륨 증폭 3 비 동일 평면 호 및 1 x 1 m m 겨냥 틀을 사용 하 여 20 Gy의 소정의 복용량. 소파 (-45 °, 0 °, 45 °)의 위치를 변경 하는 동안 모든 호에 대 한 120 °의 회전을 선택 합니다.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>동물과 PCTPS를 사용 하 여 대상에 소정의 복용량을 전달 하기 위해 빔 배달 매개 변수 내에서 복용량 분산을 계산 합니다. 실제 조사 하기 전에 조사 하는 동안 어떤 충돌을 방지 하기 위해 다른 소파 위치에서 원호 회전 테스트.</li>
	<li>실제 조사에 대 한 0.15 m m 구리 필터 선택, 220 x 선 전압 설정 kV, x-선 설정 13 엄마, 그리고 위치는 미사일 구조물에 오른쪽 겨냥 틀을 현재. 마이크로-irradiator에는 PCTPS에서 적절 한 빔 배달 매개 변수를 전송 하 여 RT를 실행 합니다.</li>
	<li>이 절차 동안, 쥐 연속 isoflurane 마 취 유지 (산소와 혼합 2% isoflurane 0.3 L/min). 지난 호 실행 동물 수 일어나 지속적인 감독 하에 완전 한 의식 회복 될 때까지.</li>
</ol>
5. 복용량 볼륨 히스토그램 (DVHs)
참고: 종양 대상 볼륨와 주변 정상 뇌 조직에 전달 하는 실제 복용량을 비교 하려면 DVHs 계산 합니다.
<ol>
	<li>T1-가중치 대비 강화 된 씨 이미지에 평균, 최대 및 최소 복용량 (그림 11)을 계산 하는 볼륨의-관심 (목소리 야) 종양과 정상 뇌 주위를 그립니다.</li>
	<li>최대한, 의미 및 종양 볼륨 및 정상 뇌 조직 볼륨에 최소한의 복용량에 대 한 대리로 서 D2와 D50, D90을 계산 합니다. D x 받은 복용량에 대 한 의미는 볼륨의 %는 첨자로 표시 및 결과 DVH에서 파생 될 수 있다.</li>
</ol>
6. TMZ와 가짜 화학 요법
<ol>
	<li>세포종 환자에서의 치료, 모방을 수 반하는 화학 요법 방사선24, 의 일에 시작 하는 5 일 동안 하루에 한 번 25 %dimethylsulfoxide (DMSO)와 식 염 수에 용 해 TMZ 29 mg/kg의 IP 주사를 사용 하 여 관리 25. 사용 1 mL, 29 G 인슐린 주사기 주입을 관리.</li>
	<li>컨트롤 그룹에 대 한 단계의 6.1 TMZ 없이 주입을 관리 합니다.</li>
</ol>

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저자는 공개 충돌의 관심을가지고

쥐 두뇌에서 세포종 종양 대상의 정확한 조사를 위해 마이크로-irradiator의 내장 된 CT 지도 충분 하지 않았다. 대비 향상을 사용 하는 경우에 뇌종양 때문에 부족 한 연 조직 대비 거의 볼 수 있습니다. 이와 같이, MRI 보다 정확한 조사를 허용 하도록 포함 될 필요가 있다. 두뇌에 대비 향상 종양 조직에 복용량을 대상 7 T 시스템 순차적 미스터 수집 수 있었습니다 마이크로 irradiator에 코네티컷 인수를 사용 하 고 복용량 계획 계획 코네티컷을 사용 하 여 계산 이것은 PCTPS17를 사용 하 여 이미지 퓨전과 복용량 계산 후 가능 했다. 그러나, 그것은 MRI는이 프로토콜에 정정 하지 기하학적 왜곡 하는 경향이 마음에 지켜져야 한다. 또한,이 조사 프로토콜 신체의 다른 부분을 번역 하기 전에 추가 연구 필요 하다. 낮은 kV 에너지 광자의 사용으로 인해 정확한 조직 세분화의 중요성을 고려해 야 합니다. 3 조직 클래스로 세분화 쥐 뇌에 충분 한 될 수도, 더 많은 ...

고급 glioma 성인 현재 치료 modalities에도 불구 하 고 1 년의 메디아 생존에 가장 일반적이 고 가장 공격적인 악성 뇌 종양입니다. 치료의 표준 결합된 외부 빔 방사선 치료 (RT) 뒤 최대한 외과 절제술 및 temozolomide (TMZ), 유지 보수 TMZ1,,23다음을 포함 합니다. 도입 이후 TMZ의 지금 더 보다 15 년 전, 아니 크게 향상이이 종양의 치료에 되었습니다. 따라서, 새로운 치료 전략의 구현 시급 하지만 작은 동물 암 치료 모델 (주로 쥐 및 쥐)에 먼저 조사 해야 합니다. 새롭고 복잡 한 방사선 프로토콜, 가능 하 게 하거나 라디오-보호 에이전트를 조사 하기 위해 방사선 응답 (새로운) 다른 치료 에이전트와 결합의 효능을 조사 하기 위해 종양 방위 쥐 모델을 사용할 수 있습니다. 전 임상 방사선 연구의 가장 큰 장점은 결과 가속된 데이터 항복 설치류의 짧은 수명 때문에 큰 무리를 사용 하 여 제어 실험 조건 하에서 작동 하는 기능입니다. 전 임상 연구 결과 다음 현재 연습4보다 훨씬 빠르고 더 효율적인 방법으로 임상 시험으로 번역 되어야 한다.
작은 동물 방사선 실험 마지막 십 년간에서 일반적으로 달성 되었습니다 고정된 방사선 소스5,,67, 예를 들면, 137Cs, 60Co, 동위 원소, 또는 선형 가속기 MV 엑스레이6,,89,10,11단일 방사선 분야를 적용 하는 인간의 임상 사용을 위한. 그러나, 이러한 장치 서브 밀리미터 정밀도, 작은 동물12필요한에 도달 하지 않습니다. 또한, MV 엑스레이 등을 해 작은 목표를 위해 부적 한 특성 동물 순서 범위와 광속의 입구 지역에서 공기-조직 인터페이스에 복용량 구축 크기 자체4,6 ,,89,,1011. 후자 네요 주변 정상 뇌 조직4,,89,10,11을 살려주는 동안 종양에 일정 한 복용량을 제공 하는 매우 도전. 따라서, 그것은 여전히 어느 정도 현재 동물 연구는 현대 RT 연습12관련 분명 하지입니다. 이 점에서 최근에 개발 된 3 차원 (3D) 등각 작은 동물 마이크로-균 장치는 3D 이미지 기반 실시간 같은 고급 기술, 강도 변조 방사선 치료 (IMRT) 간의 기술 격차를 해소를 약속 또는 등각 호 인간과 현재 작은 동물 조사4,13에 사용. 이러한 플랫폼 만들기와 복용량 형성을 피하기 위해 날카로운 penumbras 얻기 위해 kilovoltage (kV) x 선 소스의 사용. 이러한 플랫폼 포함 위치, kV는 동물에 대 한 컴퓨터 제어 무대 영상 및 방사선 치료, 다양 한 각도 모양 방사선 광속 collimating 시스템에서 방사선 배달 있도록 회전 갠트리 어셈블리에 대 한 x 선 소스 4. 2011 년, 마이크로 irradiator 겐트 대학 (그림 1)의 전 임상 이미징 연구실에 설치 되었다. 이 시스템 현대 인간의 방사선 치료 연습 비슷합니다 이며 전 임상 실험, 다른 치료, 복잡 한 방사선 구성표 및 하위 대상 이미지 기반 부스트 연구와 방사선의 시너지 효과 등의 다양 한 수 있습니다.
이러한 마이크로-균 장치 계획 치료 CT, 인간의 계획 시스템14,15에 기반으로 합니다. CT 영상, 내장 된 x 선 검출기 처리 동안 사용 되는 동일한 kV x 선 튜브와 함께에서 사용 됩니다. CT 영상 그것 정확한 동물 위치 허용와 세분화를 통해 개인 방사선 복용량 계산에 필요한 정보를 제공 하는 데 사용 됩니다. 그러나, 때문에 코네티컷에 낮은 소프트-조직 대비 고급 glioma 같은 작은 동물의 두뇌에서 이미징, 종양 수 없습니다 수 쉽게 구분 된. 멀티 적임 이미징의 따라서 정확한 대상 볼륨 묘사는 필요 하다. MRI CT에 비해 훨씬 뛰어난 소프트-조직 대비를 제공 합니다. 이것은 병 변의 경계에서 볼 수 있듯이 더 비추는 병 변 조직, 주변을 방지를 돕는 대상 볼륨의 훨씬 더 나은 묘사를 시각화를 훨씬 쉽게 그림 24, 16. 추가적인 이점은 MRI 비 이온화 방사선, 전리 방사선을 사용 하는 CT와 달리 사용 하는 것입니다. MRI의 주요 단점은 상대적으로 긴 획득 시간과 높은 운영 비용입니다. 그것은 중요 한 MRI 검사 복용량 계산에 사용할 수 없습니다 너무 미스터 LINACS의 최근 개발으로이 분야에서 진행 되 고 있지만 그들은 필요한 전자 밀도 정보를 제공 하지 않습니다. 따라서, 결합 된 CT/MRI 데이터 집합 (MRI 기반 볼륨)를 대상으로 고 선 량 계산 (CT 기반 전자 밀도)에 대 한 필요한 모두 정보가 포함 된 악성 glioma의 조사 계획에 대 한 선택의 방법입니다.
작은 동물 방사선 및 임상 일과 사이의 격차를 줄이려면 MRI 명확 하 게 해야 마이크로 irradiator의 작업 흐름에 통합 될 MRI와 CT, 사소한 멀리 사이 정확한 등록을 요구 합니다. 이 논문에서는, MRI 기반 3D 등각 방사선 F98 쥐에서 세포종, 토론에 대 한 우리의 프로토콜 이었던17최근 출판.
마이크로-irradiator의 워크플로에서 CT 및 MRI를 통합 하는 것은 작은 동물 조사 연구에 명확한 단계 앞으로, 비록 이러한 해부학 이미징 기술을 대상 볼륨의 전체 정의 항상 허용 하지 않습니다. CT 및 MRI에 두뇌에 있는 병리학 변화 증가 물 콘텐츠 (부 종), 혈액-뇌 장벽 또는 대비 향상의 누설에 의해 특징. 그러나, 콘트라스트 향상 및 MRI T2가 중에 하이퍼 강렬한 지역 되지 않습니다 항상 종양 넓이의 정확한 측정.종양 세포 대비 향상12의 마진 보다 훨씬 발견 되었습니다. 또한, 이러한 기술의 없음 치료 저항 및 종양 재발에 대 한 책임 수 있습니다 종양 내에서 가장 적극적인 부분을 식별할 수 있습니다. 따라서, 분자 이미징 기술 같은 애완 동물 수 있습니다 부가 가치 RT에 대 한 추가 정보 이러한 기술은 생물 학적 경로 vivo에서12,18, 시각화를 사용 하기 때문에 볼륨 정의 대상 19.
2000 년에, 링 외. 로 방사선 치료, 그들은 다차원 등각 방사선 치료20이라고에 지도 해 부와 기능적인 이미지를 통합 하 여 생물 학적 대상 볼륨 (BTV)의 개념을 소개 했다. 이 복용량 예 애완 동물 이미지를 사용 하 여 대상 영역을 비균일 복용량을 제공 하 여 타겟팅을 개선 하는 가능성을 만듭니다. 가장 널리 사용 되는 애완 동물 추적기 종양 준비에 대 한 이며 치료 모니터링 하 응답 fluor-18 (18F) fluorodeoxyglucose (FDG), 포도 당 물질 대사21시각화를 표시 합니다. 머리와 목 암, 이전 연구 나타났습니다 18F FDG 애완 동물의 사용 실제 종양 볼륨의 더 나은 견적을 주도 pathologic 표본, CT 및 MRI22와 비교 하 여 정의 된 대로. 기본 뇌에서 종양, 어디 FDG (FET) 정상적인 두뇌, 최근에 18F-fluoroetthyltyrosine 11C-메티오닌 등 아미노산에서에서 매우 강한 배경 신호 때문에 유용 하지 않습니다, GTV에 대 한 조사 되었습니다. 종종 표시 차이점 아미노 산 애완 동물 및 MRI 기반 GTVs23으로 묘사. 그러나,이 발견의 의미를 조사 하 고 잠재 재판 아직 수행 되었습니다. 이 연구에서 우리는 아미노 산 추적 18F-FET와 hypoxia 추적 18F-fluoroazomycin-arabinoside (18F-아무도) 선택. 18 F-FET와 18F-아무도 선정 됐다 증가 산 성 아미노산 통풍 관은 GB 종양의 확산 속도와 강한 상관 관계가 있기 때문에 반면 hypoxia 애완 동물 추적기의 통풍 관은 저항 (화학) 방사선 치료18 을 연관 , 23. 쥐에서 F98 기가바이트 종양의 애완 동물 정의 부분에 추가 방사선 복용량을 제공 하 여 최적화 되었다 서브 볼륨 증폭 마이크로-irradiator를 사용 하 여.

<table><tbody><tr><td>GB RAT 모델</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>F98 교모세포종 세포주</td><td>ATCC</td><td>CRL-2397</td><td></td></tr><tr><td>Fischer F344/ICO crl Rats</td><td>Charles River</td><td>N/A</td><td>http://www.criver.com/products-services/basic-research/find-a-model/fischer-344-rat</td></tr><tr><td>Micropump system</td><td>World Precision Instruments</td><td>UMP3</td><td>마이크로 4 : https://www.wpiinc.com/products/top-products/make-selection-ump3-ultramicropump/#tabs-1</td></tr><tr><td>입위 프레임</td><td>Kopf</td><td>902</td><td>모델 902 듀얼 작은 동물 입체 프레임</td></tr><tr><td>diamant 드릴</td><td>Velleman</td><td>VTHD02</td><td>https://www.velleman.eu/products/view/?id=370450</td></tr><tr><td>뼈 왁스</td><td>Aesculap</td><td>1029754</td><td>https://www.aesculapusa.com/products/wound-closure/hemostatic-bone-wax</td></tr><tr><td>인슐린 주사기 Microfine</td><td>Beckton-Dickinson</td><td>320924</td><td>1 mL, 29G</td></tr><tr><td>InfraPhil IR 램프</td><td>Philips</td><td>HP3616/01</td><td></td></tr><tr><td>Ethilon</td><td>Ethicon</td><td>662G/662H</td><td>FS-2, 4-0, 3/8, 19 mm</td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td> 카탈로그 번호</td><td>Comments</td></tr><tr><td>Cell culture</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Invitrogen</td><td>14040-091</td><td></td></tr><tr><td>Penicilline-streptomycine</td><td>Invitrogen</td><td>15140-148</td><td></td></tr><tr><td>L-glutamine</td><td>Invitrogen</td><td>25030-032</td><td></td></tr><tr><td>Fungizone</td><td>Invitrogen</td><td>15290-018</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA</td><td>Invitrogen</td><td>25300-062</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Invitrogen</td><td>14040-224</td><td></td></tr><tr><td>Falcons</td><td>Thermo Scientific</td><td>178883</td><td>175 cm2 nunclon 표면, 필터 캡이 있는 세포 배양용 일회용품</td></tr><tr><td>세포 동결 매체</td><td>Sigma-aldrich</td><td>C6164</td><td>세포 동결 매체-DMSO, 멸균 여과, 적합 세포 배양의 경우 내독소 테스트 완료</td></tr> <tr><td>Name</td><td>Company</td><td>카탈로그 번호<</td><td>strong>Comments</strong</td></tr><tr><td>>Animal irradiation</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Micro-irradiator</td><td>X-strahl</td><td>SARRP</td><td></td></tr><tr><td>소프트웨어 조사 X-strahl</td><td></td><td>MuriPlan</td><td>전임상 치료 계획 시스템(PCTPS), 버전 2.0.5.</td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>카탈로그 번호</td><td>Comments</td></tr><tr><td>Small animal PET</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>microPET 시스템 가능성 1</td><td>Molecubes</td><td>B-Cube</td><td>http://www.molecubes.com/b-cube/</td></tr> <tr><td>microPET 시스템 가능성 2</td><td>TriFoil 이미징, 노스 리지 CA</td><td>플렉스 Triumph II</td><td>http://www.trifoilimaging.com</td></tr><tr><td>PET 추적기</td><td>사내에서 만든</td><td></td><td>18F-FDG, 18F-FET, 18F-FAZA, 18F-콜린</td></tr><tr><td><강한>이름</td><td>Company</td><td>카탈로그 번호</td><td>코멘트</td></tr><tr><td>작은 동물 MRI</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>microMRI 시스템</td><td>Bruker Biospin</td><td>Pharmascan 70/16</td><td>https://www.bruker.com/products/mr/preclinical-mri/pharmascan/overview.html</td></tr><tr><td>Dotarem 조영제</td><td>Guerbet</td><td></td><td>MRI 조영제, Dotarem 0,5 mmol/ml</td></tr><tr><td>쥐 전신 송신기 코일</td><td>Rapid Biomedical</td><td>V-HLS-070</td><td></td></tr><tr><td>쥐 뇌 표면 코일</td><td>Rapid Biomedical</td><td>P-H02LE-070</td><td></td></tr><tr><td>수성 가열 장치</td><td>Bruker Biospin</td><td>MT0125</td><td></td></tr><tr><td>IV 주입용 30G 바늘</td><td>Beckton-Dickinson</td><td>305128</td><td>30G</td></tr><tr><td>PE 10 튜빙(60cm/주입)</td><td>Instech laboratories, Inc</td><td>BTPE-10</td><td>BTPE-10, 폴리에틸렌 튜빙 0.011 x .024인치(0.28 x 60mm), 비멸균, 30m(98피트) 스풀, Instech laboratories, Inc 플리머스 회의 PA USA- (800) 443-4227- http://www.instechlabs.com</td></tr><tr><td>비헤파린 미세 헤마토크릿 모세관</td><td>GMBH</td><td>7493 21</td><td>이 모세혈관은 물로 채워져 MRI 및 CT에서 볼 수 있는 마커를 생성합니다<</td></tr><tr><td>strong>Name<</td><td>strong>Company</td><td>카탈로그 번호</td><td>Comments</td></tr><tr><td>Consumables</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>이소플루란: 이소</td>플로 <td>조에티스</td><td>B506</td><td>마취</td></tr><tr><td>케타민: 케타미도르</td><td>에쿠파르</td><td></td><td>마취</td></tr><tr><td>자일라진: 세닥실</td><td>코디파르 NV</td><td></td><td>마취</td></tr><tr><td>카테터</td><td>테루모</td><td>베르사투스-W</td><td>26G</td></tr><tr><td>테모졸로미드</td><td>시그마-알드리치</td><td>T2577-100MG</td><td>화학요법</td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma-aldrich</td><td>276855-100ML</td><td></td></tr><tr><td>인슐린 주사기 Microfine</td><td>Beckton-Dickinson</td><td>320924</td><td>1 mL, 29G</td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>카탈로그 번호<</td><td>strong>Comments</td></tr><tr><td>Image analysis</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>PMOD 소프트웨어</td><td>PMOD technologies LLC</td><td>PFUS (융합 도구)</td><td>생체 의학 이미지 정량 화 소프트웨어(BIQS), 버전 3.405,</td></tr> <tr><td>https://www.pmod.com/web/?portfolio=22-image-processing-pfusName<</td><td>strong>Company<</td><td>strong>카탈로그 번호</td><td>Comments</strong</td></tr><tr><td>>Anesthesia-equipment</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>마취 movabe 단위</td><td>ASA LTD</td><td>ASA 0039</td><td>ASA LTD, 5 valley road, Keighley, BD21 4LZ</td></tr><tr><td>산소 발생기</td><td>수의학 기술 Int.</td><td>7F-3</td><td>BDO-Medipass, 이무이덴</td></tr></tbody></table>

애완 동물 및 mri 유도 세포종 쥐 모델의 방사선 마이크로 irradiator를 사용 하 여

PET and MRI Guided Irradiation of a Glioblastoma Rat Model Using a Micro-irradiator

수십 년 동안, 작은 동물 방사선 연구 대상 특정 이나 잘 delineated 종양 볼륨을 상당히 조잡 실험 설정 능력 없이 간단한 단일 빔 기술을 적용을 사용 하 여 주로 수행 되었다. 방사선의 납품 고정된 방사선 또는 megavoltage (MV) 엑스레이 생산 하는 선형 가속기를 사용 하 여 달성 되었다. 이 소자는 작은 동물에 필요한 서브 밀리미터 정밀도 달성 하기 위해 수 없습니다. 또한, 높은 복용량은 건강 한 주변 조직 바구니 응답 평가를 전달. 작은 동물 연구와 인간 사이 변환을 증가, 우리의 목표는 쥐 모델에서 인간의 세포종의 치료를 모방 했다. 전 임상 설정에서 더 정확한 조사를 활성화 하려면 최근, 정밀 이미지 유도 작은 동물 방사선 연구 플랫폼은 개발 되었다. 마찬가지로 인간의 계획 시스템, 치료 이러한 마이크로-균 장치에 계획은 컴퓨터 단층 촬영 (CT)에 기반. 그러나 CT에 낮은 소프트-조직 대비 매우 어려운 뇌 등 특정 조직에서 목표를 지역화 하는. 따라서, CT에 비해 소프트-조직 대조는, 자기 공명 영상 (MRI), 통합 것 가능 방사선에 대 한 대상의 더 정확한 묘사 지난에서 10 년간 또한 생물 학적 영상 기법, 양전자 방출 단층 촬영 (PET) 등 방사선 치료 치료 지침에 대 한 관심을 얻었다. 애완 동물 예를 들면, 포도 당 소비, 아미노 산 수송, 또는 저 산소 증, 종양에의 시각화 수 있습니다. 더 높은 복용량으로 종양의 그 높은 증식 또는 라디오 저항 부분을 대상으로 하는 것은 생존 혜택을 줄 수 있습니다. 이 가설 생물 학적 종양 볼륨 (BTV) 외에 기존의 총 대상 볼륨 (GTV), 임상 대상 볼륨 (CTV), 그리고 계획된 대상 볼륨 (PTV)의 소개로 이끌어 냈다.
겐트 대학교의 전 임상 영상 연구소, 마이크로-irradiator, 작은 동물 애완 동물, 그리고 7 T 작은 동물 MRI 사용할 수 있습니다. 목표는 MRI 기반 조사 및 애완 동물 기반 하위 볼륨 증폭 세포종 쥐 모델에 통합 했다.

전 임상 모델에서 세포종의 방사선에 대 한 인간의 치료 방법론을 모방, MRI 유도 방사선 치료의 포함이 필요 했다. 사용 하는 PCTPS 마이크로 irradiator 인터페이스 여러 멀 비 같은 호 T1 가중치 MRI17에 대비 강화 지역 타겟팅과 쥐에서 F98 세포종을 비추는 수 있었습니다. 멀티 모달 침대와 함께에서 고정-바디 변환 MRI 및 ct. 계획 사이 이미지 등록을 위해 사용 되었다 방사선에 대 한 isocenter T1 가중치 MRI (그림 7)에 대비 향상 된 종양의 센터에서 선정 되었다.
5 다른 동물 (그림 12) 복용량 배포판 및 대상 볼륨 및 정상 뇌 조직 볼륨의 평균, 최소, 및 최대 복용...

과거에 작은 동물 조사 대상 잘 delineated 종양 볼륨 수 없이 일반적으로 수행 되었다. 목표는 쥐에서 인간 세포종의 치료를 모방 했다. 작은 동물 조사 플랫폼을 사용 하 여, 우리는 MRI 기반 3D 등각 방사선 조사 전 임상 설정에서 애완 동물 기반 하위 볼륨 증폭을 수행.

애완 동물 및 MRI 유도 세포종 쥐 모델의 방사선 마이크로 irradiator를 사용 하 여

For decades, small animal radiation research was mostly performed using fairly crude experimental setups applying simple single-beam techniques without ...

이 방법론의 전반적인 목표는 작은 동물에서 이미지 유도 등각 방사선 조사를 수행하는 것입니다. 이 방법은 표적 방사선 치료를 위해 특정 종양 부피를 묘사하는 방법에 대한 방사선 분야의 주요 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 가장 큰 장점은 인간의 암 치료를 모방하고 쥐의 종양에 대한 세포 방사선 조사를 허용한다는 것입니다.PET를 사용하여 방사선 제거 빔을 안내하면 암 생물학을 소동물 방사선 요법 분야의 새롭고 유망한 개발로 고려할 수 있습니다. 생물학적 표적 부피를 포함하면 종양의 가장 활동적이고 방사선에 내성이 있는 부위를 표적화할 수 있어 치료의 더 나은 결과를 얻을 수 있습니다. 마취된 170g 암컷 피셔 5344 쥐의 뇌에 신경교종 세포를 접종하기 위해, 암컷 피셔 5344 쥐에게 신경교종 세포를 접종하기 위해, 먼저 발가락 꼬집음에 대한 반응 부족으로 진정 작용을 확인하고, 눈높이에서 두개골 뒤쪽까지의 털을 제거하고, 동물의 눈에 연고를 바른다.정위 장치에서 동물을 고정시킵니다. 노출된 피부는 포비돈 요오드로 소독하고, 두피 정중선 2cm 절개로 두개골을 노출시킨다. 다이아몬드 드릴을 사용하여 오른쪽 전두엽 반구의 브레그마에서 뒤쪽으로 2mm, 옆으로 2mm 반으로 1mm 구멍을 만듭니다.다음으로, 29 게이지 인슐린 주사기의 바늘에 5 마이크로 리터의 세포 현탁액을 장전하고, 마이크로 주사기 펌프 컨트롤러를 사용하여 정위 유도하에 두개골에 3mm 깊이의 세포를 주입하고 바늘을 천천히 빼냅니다. 뼈 왁스로 절개 부위를 봉합합니다. 그런 다음 포비돈 요오드로 피부를 봉합 및 소독하고 빨간색 램프를 사용하여 수술 후 동물의 체온을 안정화하고 완전히 회복될 때까지 모니터링하십시오.접종 후 8일이 지나면 30게이지 바늘을 60cm 길이의 튜브에 연결합니다. 측면 꼬리 정맥 내에 정맥 주사하고 마취된 동물을 MRI 침대에 놓습니다. 고정된 쥐 뇌 표면 코일이 있는 홀더에 침대를 놓고 72mm 쥐 홀드 본체 투과기 코일에 침대를 배치합니다.그런 다음 국소 스캔으로 종양 성장을 평가한 다음 T2 가중 스핀 에코 스캔을 수행합니다. 종양이 확인되면 12분 동적 계약 강화 MRI 획득을 시작하여 스캔 시작 30초 후 정맥 주사된 튜브에 조영제가 포함된 가돌리늄을 주입합니다. 시간 경과에 따른 신호 강도를 플롯하려면 이미지 염기서열 분석 툴을 사용하여 의심되는 종양 영역 내에서 관심 영역을 선택하고 결과 동적 수축 강화 곡선의 모양을 분석하여 교모세포종의 존재를 확인합니다.그런 다음 대비가 향상된 T1 가중치, 스핀 에코 시퀀스를 획득합니다. 대상 부피의 다중 방식 이미징을 위해 26 게이지 카테터를 꼬리 정맥에 삽입하고 관심 PET 방사성 추적자 37메가베크렐과 식염수 200마이크로리터를 카테터에 주입합니다. PET 채취 15분 전에 꼬리 정맥 카테터를 통해 MRI 조영제를 주입하고 마취된 쥐를 맞춤형 다중 양식 침대에 눕힙니다.하나의 다중 양식 마커를 두개골의 아래, 위, 오른쪽에 배치합니다. 후크 및 루프 패스너를 사용하여 쥐를 침대에 고정합니다. MRI 스캐너의 동물 홀더에 침대를 놓고 쥐 뇌 표면 코일을 고정하고 전체 설정을 72mm 쥐 홀드 본체 투과체 코일에 배치합니다.로컬라이저 스캔을 얻은 후 시연된 대로 대비 향상된 T1 가중 스핀 에코 시퀀스를 얻습니다. T1 스캔이 끝나면 동물을 PET 기기로 옮기고 주입된 PET 추적자의 매개변수에 따라 목록 모드에서 적절한 30분 정적 PET 스캔을 얻습니다. 그런 다음 마이크로 조사기의 4축 로봇 포지셔닝 테이블에 고정된 플라스틱 홀더로 침대를 옮깁니다.그리고 1mm의 알루미늄 필터와 20 x 20cm 비정질 실리콘 평판 검출기를 사용하여 고해상도 치료 계획 CT 스캔을 얻습니다. 뼈, 연조직 및 공기의 양호한 분할을 얻을 때까지 수동으로 회색 값 임계값을 선택합니다. 두개골 내부에 공기가 없는지 확인하십시오.치료 계획을 위해 계획 컴퓨터 단층 촬영(CT)을 전임상 치료 계획 시스템(PCTPS)으로 가져오고 CT 이미지를 세 가지 다른 조직 클래스로 수동으로 분할합니다. CT 스캔에서 두개골의 증가된 신호 강도를 MRI 스캔의 검은색 신호로 덮어씌움으로써 정확한 융합을 달성할 수 있습니다. MRI 스캔을 로드하고 강성 변환(rigid transformations)과 다중 양식 마커(multi-modality markers) 및 두개골을 사용하여 공동 정합합니다.MRI를 PCTPS에 로드합니다. 그런 다음 먼저 변환 행렬을 채웁니다. CT에서 MRI로, 그리고 그 반대로 전환하여 융합 상태를 확인하고 완벽한 융합이 이루어질 때까지 왼쪽, 오른쪽, 후방, 전방, 하부의 우수한 변형 및 회전을 추가합니다.그런 다음 T1 가중 MRI에서 조영제 강화 종양 중앙의 표적 또는 방사선 조사를 선택합니다. 추가 PET 정보를 포함해야 하는 경우 생체 의학 이미지 정량화 소프트웨어를 사용하여 CT/MRI PETCO 등록을 포함하십시오. 먼저 CT 스캔을 로드한 다음 PET 스캔을 로드합니다.적재 시 PET 스캔의 방향을 확인하십시오. PET 이미지의 색상 스케일과 방향을 변경합니다. 이미지에 가우시안 필터를 적용하여 종양의 추적자 흡수가 명확하게 보이도록 합니다.CT 대비를 조정하여 PET MRI 이미지 융합을 달성하기 위한 이미지 융합 프로세스를 시작하고 정량화 소프트웨어의 윤곽 도구를 사용합니다. 공동 등록 후 정량 소프트웨어에서 증가된 PET 추적자 흡수의 중심에 있는 대상을 선택합니다. 회전과 평행 이동을 모두 사용하고 이미지의 모든 슬라이스에서 융합을 확인합니다.트레이서 활용률이 가장 높은 영역의 중심을 선택하고 좌표를 추출합니다. 그리고 PCTPS에 좌표를 수동으로 입력합니다. 자동 PET MRI 및 CT 이미지 융합 도구가 양호한 융합을 생성하지 못하는 경우 윤곽 도구와 수동 변형을 사용하여 융합 결과를 개선할 수 있습니다.규정된 선량, 호 수, 호 위치, 호의 회전 범위 및 시준기 크기를 선택하고 적절한 MRI 또는 PET-MRI 유도 방사선 요법에 대한 설정을 조정합니다. 실제 조사의 경우 0.5mm 구리 필터를 선택하고 X선 전압을 220kW로, X선 전류를 13mA로 설정하고 갠트리에 올바른 시준기를 배치합니다. 그런 다음 PCTPS에서 마이크로 조사기로 적절한 빔 전달 매개변수를 전송하여 방사선 치료를 실행합니다.전임상 모델에서 교모세포종 조사에 대한 인간 치료 방법론을 모방하기 위해, 방금 시연된 바와 같이 T1 가중 MRI에서 조영제 강화 종양 영역의 중심에서 방사선 조사를 위한 iso-center를 선택합니다. 이 실험에서는 5개의 서로 다른 동물에 대해 목표 부피의 평균, 최소 및 최대 용량, 정상 뇌 조직 부피의 분포 및 누적 용량량 히스토그램을 계산했습니다. MRI 및 CT 양식의 공동 정합을 위해 생체 의료 이미지 정량화 소프트웨어를 사용하면 강성 매칭을 위한 많은 도구를 사용할 수 있습니다.간단한 변환을 적용하면 MRI 및 PET 기반 iso-centers를 모두 PCTPS로 전송하여 각 iso-center 내 방사선의 선량을 계산할 수 있습니다. 하나의 작은 특정 기술은 적절하게 수행되면 우리에게 수업에서 쥐와 생쥐의 종양을 조사하는 데 사용할 수 있습니다. 이 절차를 수행함으로써 동물이 마취되는 동안 동물을 주의 깊게 모니터링하는 것을 기억하는 것이 중요합니다.이 비디오를 시청한 후에는 관심 종양 표적에 대해 이미지 유도 소동물 방사선 조사를 적용하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다.

pet-mri-guided-irradiation-glioblastoma-rat-model-using-micro

Research

연구

JoVE Journal

Cancer Research

암 연구

뇌종양 환자는 정기적으로 두개골 방사선 치료를 받아야하고, 쇠약인지 장애에 도움이 치료는 종종 결과를하면서. 이 심각한 해결되지 않은 문제는, 현재도 임상을 일으키하지 않으며 방사선 유발인지 감소의 복구를 위해 줄기 세포 기반 요법을 고안하기 위해 노력을 주도하고 있습니다.

두개골 방사선 치료에 의한인지 기능 장애의 회복을위한 세포 이식 전략을 줄기

이 문서의 목적은 chemoradiation 연구를위한 orthotopic glioblastoma 모델의 사용을 설명하는 것입니다. 이 문서에서는 이온 주입, 세포 가공 불구하고 이동하고 intracranial 모델을 사용하여 마우스의 방사선 치료합니다.

Orthotopic 마우스 뇌종양 모델의 조합 방사선 치료

C57BL에 GL261 셀 / 6 마​​우스의 Intracranial 이식은 인간 glioblastoma multiforme의의 특징 중 많은 것들을 요점을 되풀이하다 악성 gliomas을 생산하고 있습니다. 우리는 우리가 사용할 수 있도록 안정 루시페라제 표현 GL261 세포를...

이후 3D로 Intracranial 주입 VIVO에서</emMurine Gliomas의> 발광 생물 이미징

우리는 누드 마우스 및 이후 일련의 뇌에 인간 glioblastoma multiforme의 세포의 정확한, stereotactic 주입을위한 통합 방법을...

Stereotactic Intracranial 주입 및<em&gt; 생체에</emGlioblastoma의 Multiforme의 마우스 모델 시스템에서 종양 Xenografts의&gt; 발광 생물 이미징

출처: Bolcaen, J., et. al., 마이크로 조사기를 사용한 교모세포종 쥐 모델의 PET 및 MRI 유도 조사.  J. Vis. Exp. (2017)이 비디오는 뇌종양을 유발하는 교모세포종 세포를 전전두엽 피질에 정위 주사하여 교모세포종 쥐 모델을 확립하는 절차를 보여줍니다.

교모세포종 쥐 모델 생성

만능 줄기 세포 유래 teratomas 위한 치료 전략에 대 한 연구는 줄기 세포 치료의 임상 번역 중요 합니다. 여기, 우리 첫째, 쥐에서 그리고, 선택적으로 대상 줄기 세포 유래 teratomas를 생성 하 고 생체 조건 작은 동물 irradiator를 사용 하 여 이러한 종양을 치료 하는 프로토콜을 설명 합니다.

만능 줄기 세포 유래 Teratomas 외부 빔 방사선을 사용 하 여 작은 동물 모델에서의 타겟 및 선택적 치료

여기서는 정확성과 효율성을 최적화하기 위해 사내에서 개발한 알고리즘을 사용하여 쥐 교모세포종 모델에서 전임상 양전자 방출 단층 촬영 기반 방사선 요법을 수행하는 프로토콜을 제시합니다.

작은 동물 방사선 연구 플랫폼을 사용하여 교모 세포종 쥐 모델에서 양전자 방출 단층 촬영 기반 용량 페인팅 방사선 요법

여기에서 우리는 유전자 조작 마우스 모델 종양에서 파생된 세포의 두개내 주입에 의해 확립된 GBM에 대한 전임상 동소 마우스 모델을 설명합니다. 이 모델은 인간 GBM의 질병 특징을 표시합니다. 중개 연구를 위해 마우스 뇌종양은 생체 내 MRI 및 조직병리학에 의해 추적됩니다.

다형성 교모세포종의 번역 동소 모델

우리는 마우스 모델에서 형광 표지된 산화철 나노입자를 교모세포종에 전달하는 종양 전달에 대한 이광자 현미경에 대한 새로운 접근 방식을 제시합니다.

쥐 모델에서 교모세포종의 Two-Photon Intravital Microscopy

혈액-뇌 장벽은 치료법이 없는 질병인 교모세포종에 대한 치료법을 전달하는 데 중요한 장애물입니다. 여기에서, 우리는 크기 덕분에 이러한 생리적 장벽을 우회하고 종양에 축적될 수 있는 in vivo image-guided iron oxide therapeutic nano platform을 보고합니다.

Glioblastoma multiforme animal model에서 oligonucleotide payload의 나노입자 전달

교모세포종은 파괴적인 형태의 원발성 뇌암이며, 레이저 간질성 열 요법은 수술이 불가능한 교모세포종에 대한 기존 외과적 절제술의 유망한 대안으로 부상하고 있습니다. 이 프로토콜은 치료 효과 또는 보조 및 조합 치료를 연구하는 데 사용할 수 있는 최적화된 전임상 마우스 모델을 설명합니다.

교모세포종의 레이저 간질성 열처리 치료를 위한 면역 역량 있는 쥐 모델

학습하세요 MRI 및 PET 영상 유도 정위 방사선 조사법으로 쥐 뇌종양을 정밀 치료하는 방법을. 이 기술은 전임상 연구에서 종양 생물학을 이해하고 방사선 치료 효과를 향상시키는 데 활용됩니다.

애완 동물 및 MRI 유도 세포종 쥐 모델의 방사선 마이크로 irradiator를 사용 하 여

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