Name: 뇌 구조를 표적으로 삼고 화학 유전 학적 신경 조절을 평가하기위한 집중 초음파 유도 혈액 뇌 장벽 개방 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-12-22T12:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 37 s
Description: 배우세요 초음파 유도 혈액 뇌 장벽 개방을 통한 화학 유전 학적 신경 조절 평가 방법을. 생쥐 모델에서 비침습적 유전자 전달과 DREADD 발현 분석을 수행하여 신경 메커니즘 연구에 활용할 수 있습니다.

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이 연구는 Brain and Behavior Foundation, NARSAD Young Investigator Award의 지원을 받았습니다. 여러 3D 프린팅 구성 요소는 원래 Fabien Rabusseau(Image Guided Therapy, France)가 설계했습니다. 저자는 원고 준비에 기술적인 도움을 준 John Heath(Caltech)와 Margaret Swift(Caltech)에게 감사드립니다.

이해 상충이 없습니다.

ATAC는 정확한 MRI 유도 표적화, FUS-BBBO 및 유전자 발현의 조직학적 평가를 포함하여 특정 신경 회로의 성공적인 신경 조절을 위한 여러 기술의 성공적인 구현이 필요합니다. 3D 프린팅 가능한 구성 요소는 이미징 유도 FUS-BBBO로 작은 뇌 구조의 표적화를 단순화하기 위해 개발되었습니다.
MRI 유도 집속 초음파(MRIgFUS) 관리에는 여러 가지 문제가 있습니다. 첫째, 일반적인 MRI 코일은 초음파 하드웨어가 아닌 표본만 수용하도록 설계된 공간이 제한되어 있습니다. MRI의 더 큰 보어는 신호가 코일(32)의 필 팩터와 관련되기 때문에 장비 비용을 증가시키고 이미지 품질을 감소시킨다. 결과적으로 MRI에서 동물 이미지 상단에 배치된 FUS 하드웨어는 이미징 품질을 저하시킵니다. 둘째, MRI 호환 장치를 설계하는 것은 어렵고 비용이 많이 듭니다. MRI 호환 재료는 반자성이어야 하고, 고주파 조사 중에 와전류를 생성하는 경향이 낮고, 높은 자기장에서 자화율이 낮아야 합니다. 모든 전도성 물질에서 와전류 생성 또는 자화율도 이미징 품질에 부정적인 영향을 미칩니다. 마지막으로, 사용 가능한 MRI 호환 재료는 정밀한 표적 기계(예: 정위 프레임)의 생산에 일반적으로 사용되는 금속보다 영률 및 내구성이 낮습니다. 위치 조정에 사용되는 모터는 MRI와 호환되어야 하며 크기 때문에 MRI 보어 외부에 배치해야 합니다. 이 모터는 MRI 호환 재료를 사용하여 MRI 보어 내부의 변환기에 멀리 떨어져 연결해야 합니다. 플라스틱 뒤틀림 문제, 견고한 크기의 구성 요소를 구현하기 위한 보어 내부의 충분한 공간 부족, 전체 뇌에서 타겟팅 위치를 변경할 수 있는 공간 부족은 이전 작업의 타겟팅 정확도에 영향을 미쳤습니다.
이러한 문제를 해결하기 위해 스캐너 외부에서 MRI 및 FUS-BBBO 관리에서 이미징을 수행하기로 결정했습니다. MRI 안내를 허용하기 위해 마우스는 MRI와 입체 좌표 공간 모두에서 마우스 뇌 구조를 국소화하는 데 사용할 수 있는 MRI 가시 표적 가이드가 있는 3D 프린팅 구속 장치 안에 배치되었습니다. 마우스 두개골과 표적 가이드가 모두 이어 바 홀더에 단단히 부착되어 있기 때문에(그림 1a,b), 표적 가이드를 사용하여 MRI 이미지 내의 공간 좌표를 상호 연관시키고 정위 도구를 영점화할 수 있습니다. 구속 장치에는 움직이는 부품이 없고 트랜스듀서가 포함되어 있지 않아 MRI 내부에 들어갈 수 있을 만큼 견고하고 충분히 작게 만들 수 있었고 트랜스듀서의 전자 장치에서 신호 간섭을 제거할 수 있었습니다. 일부 재료에 대한 3D 프린팅 지지대가 MRI에서 보이기 때문에 타겟팅 가이드 내부의 공간이 비어 있습니다(그림 1c). 스테레오택스 보정을 가능하게 하기 위해 어셈블리에 구멍이 뚫려 있습니다(그림 3). 초음파 트랜스듀서는 스테레오택스의 전극 홀더에 부착되었고, 타겟팅은 섹션 4(도 1d)에 기술된 바와 같이 수행되었다. 변환기는 수평 평면에서 벗어나는 것을 방지하기 위해 이어 바의 하우징으로 길이를 따라 지지되어야 합니다. 등-복부 방향의 표적화는 환형 배열의 위상 변이를 사용하여 달성할 수 있습니다.
실제 표적 정밀도는 초음파 초점과 두개골 감쇠에 의해 결정됩니다. FUS-BBBO 절차는 래트 11에 대해 상세히 기술되어 있으며, 다수의 다른 모델 유기체23,33,34 및 인간 16,17에서 구현되었다. 초음파 초점 크기 사이의 관계는 주파수에 반비례하며, 주파수가 높을수록 더 정확한 전달이 가능할 수 있습니다. 그러나 두개골의 감쇠는 주파수35에 따라 증가하여 두개골 가열 및 피질 영역의 손상을 유발할 수 있습니다. 정확한 타겟팅 전략은 뇌 사이트에 따라 다릅니다. 전폭의 절반 최대 압력이 뇌 조직 내에 맞는 부위는 선조체, 중뇌 및 해마와 같은 많은 뇌 구조에서 예측 가능하고 안전한 BBB 개방을 허용합니다. 뇌 기저부 근처의 영역은 생쥐에서 특정한 문제를 제기합니다. 쥐의 뇌는 등-복부 방향으로 약 8-10mm를 측정하며, 이는 상업적으로 이용 가능한 많은 변환기의 전체 너비 절반 최대 크기와 비슷합니다. 결과적으로, 두개골의 바닥을 표적으로 삼는 것은 외이도, 입 또는 기관에 존재하는 뼈와 공기로부터 초음파 반사를 유도할 수 있으며, 이는 예측할 수 없는 고압 및 저압 패턴을 초래할 수 있다(36). 이러한 압력 중 일부는 출혈 및 조직 손상을 유발하는 것으로 밝혀진 관성 캐비테이션 임계 값을 넘을 수 있습니다37. 두개골의 기저부 근처에 위치하는 영역을 표적으로 삼기 위해, 교차 ATAC(intersectional ATAC)7를 사용하는 것이 바람직할 수 있으며, 여기서 교차 유전학(intersectional genetics)(38)은 유전자 발현을 FUS 빔으로 표적화된 영역보다 더 작은 영역으로 제한하기 위해 사용된다. 공개된 교차 ATAC의 예에서, 도파민성 세포에서 유전자 편집 효소(Cre38)를 발현하는 형질전환 동물은 도파민성 세포를 포함하는 영역의 하위 섹션에서 초음파를 표적으로 삼았습니다. 마지막으로, 피질 영역은 FUS로 표적화 될 수 있지만 초음파의 회절 및 반사가 발생하여 고르지 않은 압력 프로파일이 발생할 수 있습니다. 이 프로토콜은 사용된 종에 크게 의존하기 때문에 피질 영역의 표적화를 다루지 않습니다. 그러나, 해마 7 위의 피질의 일부 표적화(예를 들어, 도 7)는 관찰되었으며, 적어도 마우스에서, 가능하다는 것을 나타낸다.
화학유전학적 활성제의 선택 및 투여량은 특정 실험 요구에 따라 달라집니다. 저자의 연구중 하나를 포함한 다수의 연구7에서는 유의한 비특이적 반응이 나타나지 않았으며39,40, 고용량(예: 10 mg/kg)은 적어도 어떤 경우에는 부작용을 일으킬 수 있다41. 그러나, 모든 행동 실험과 마찬가지로, 적절한 제어(31)는 CNO 및 그 대사산물(42)의 잠재적인 비표적 활성으로 인해 필수적이다. 이러한 대조군에는 DREADD를 발현하는 동물에 대한 CNO 및 식염수 대조군의 투여 및 야생형 동물에 대한 CNO 투여 또는 일부 특정 경우에 각각 화학유전학적 수용체를 발현하거나 발현하지 않는 뇌의 입시 및 반대쪽 부위의 비교가 포함될 수 있습니다. 또한, 최근 연구에서는 특이성이 향상된 다수의 새로운 DREADD 작용제가 밝혀졌다 28,29,43. 다른 화학유전학적 수용체 5,25,44는 또한 ATAC 절차와 함께 사용될 수 있다.
유전자 발현의 조직학적 평가는 모든 동물에 대해 사후에 필요합니다. 소수의 동물은 FUS-BBBO7 이후 불량한 유전자 발현을 보인다. 또한, mis-targeting이 가능하기 때문에 유전자 발현의 공간적 정확성과 특이성을 보여줄 필요가 있다. 참고로, 일부 AAV는 역행 또는 전향 추적 능력(45 )을 보일 수 있으며, 정확한 초음파 표적화에도 불구하고 초음파로 표적화된 부위로부터 멀리 떨어진 곳에서 형질감염을 일으킬 수 있다. 발현된 화학유전학적 수용체가 형광단에 융합되거나 동시 발현되는 경우, 조직 절편에서 형광단의 이미징은 발현의 국소화 및 강도를 평가하기에 충분할 수 있습니다. 그러나 많은 형광 단백질이 조직 고정 과정에 의해 손상되며, DREADD와 함께 자주 사용되는 mCherry 단백질에 대한 면역염색은 이전 연구에서 더 나은 신호를 나타냈다7. 마지막으로, 뇌의 특정 부분(예: 해마의 과립 세포층)에 있는 뉴런의 밀도로 인해, 융합과 달리 IRES에서 발현되는 핵 국소화 형광단을 사용하여 세포 계수를 수행하는 것이 핵이 DAPI 또는 TO-PRO-3과 같은 핵 염색으로 쉽게 분할되고 대조될 수 있기 때문에 유익할 수 있습니다. c-Fos 염색에 의한 신경 조절을 평가하려면 핵 대조 염색을 수행하고 형광 신호가 아닌 c-Fos 양성 핵을 계수하는 것이 필수적입니다. 어떤 경우에는 세포 파편이 형광을 나타내어 양성 세포의 측정을 혼란스럽게 할 수 있습니다.
FUS-BBBO를 사용한 약물 및 유전자 전달의 한계에는 침습적 두개내 주사를 통한 전달보다 해상도가 낮고 더 많은 양의 주사 약물 또는 바이러스 벡터가 필요하다는 것이 포함됩니다. 또한 뇌에 직접 주사하면 주사 부위에 독점적으로 전달되는 반면 FUS-BBBO는 정맥 주사 경로를 사용하여 말초 조직으로 전달할 수 있습니다. 신경 조절을 위한 화학유전학 사용의 한계에는 느린 시간 척도가 포함되며, 이는 신경 조절 강도의 급격한 변화를 필요로 하는 일부 행동 프로토콜에 부적절할 수 있습니다.

광유전학 1,2 및 화학유전학 3,4,5와 같은 회로 특이적 신경 조절 기술의 사용은 신경 회로 장애로서의 정신 상태에 대한 우리의 이해를 발전시켰습니다. 신경 회로는 연구하기 어렵고 일반적으로 특정 세포 유형, 뇌 영역, 분자 신호 전달 경로 및 활성화 시기에 의해 정의되기 때문에 뇌 질환 치료에서 제어하기가 훨씬 더 어렵습니다. 연구 및 임상 응용 모두에 이상적으로 이러한 제어는 비침습적으로 수행되지만 정확하고 비침습적인 신경 조절을 모두 달성하는 것은 어렵습니다. 예를 들어, 신경 활성 약물은 비침습적으로 뇌에 도달할 수 있지만 뇌 전체에 작용하여 공간적 특이성이 부족합니다. 반면, 전기 뇌심부 자극은 특정 뇌 영역을 제어할 수 있지만 특정 세포 유형을 제어하기 어렵고 수술과 장치 배치가 필요하다6.
ATAC(Acoustically Targeted Chemogenetics7)는 공간적, 세포 유형 및 시간적 특이성을 가진 신경 조절을 제공합니다. 공간 표적화를 위한 집속 초음파 유도 혈액뇌장벽 개방(FUS-BBBO), 세포 유형 특이적 프로모터의 제어 하에 유전자를 비침습적으로 전달하기 위한 아데노 관련 바이러스 벡터(AAV) 사용, 약물 투여를 통해 선택적으로 형질감염된 신경 회로를 조절하기 위한 조작된 화학유전학적 수용체의 세 가지 기술을 결합합니다. FUS는 밀리미터 단위의 공간 정밀도로 인간의 뇌를 포함한 조직 깊숙이 초점을 맞추는 초음파의 능력을 활용하는 FDA 승인 기술입니다. 고출력에서 FUS는 본태성 진전에 대한 FDA 승인 치료를 포함하여 비침습적 표적 절제술에 사용된다8. FUS-BBBO는 저강도 초음파와 전신적으로 투여된 미세 기포를 결합하여 초음파 초점에서 혈관에서 진동하여 BBB9의 국부적, 일시적(6-24시간) 및 가역적 개방을 초래합니다. 이러한 개구부는 설치류(10) 및 비인간 영장류(15)에서 심각한 조직 손상 없이 단백질(9,10), 소분자(small molecule)11 및 바이러스 벡터(viral vector)7,12,13,14를 뇌로 전달할 수 있게 한다. FUS-BBBO16,17에 대한 임상 시험이 진행 중이며, 이는 이 기술의 가능한 치료 적용을 나타냅니다.
AAV를 이용한 바이러스 유전자 전달은 최근 FDA 및 EU 규제 승인을 주요 이정표로 삼아 CNS 장애에 대한 임상 사용으로 빠르게 발전하고 있습니다. 마지막으로, 화학유전학적 수용체(chemogenetic receptors)18, 예컨대 디자이너 약물에 의해 독점적으로 활성화된 디자이너 수용체(Designer Receptors Activated Exclusive by Designer Drugs, DREDDs)는 형질전환 또는 형질감염된 동물(transfection된 동물)에서 뉴런 흥분에 대한 약리학적 제어를 제공하기 위해 신경과학자들에 의해 널리 사용된다19,20. DREADD는 내인성 리간드가 아닌 합성 화학유전학적 분자에 반응하도록 유전적으로 조작된 G 단백질 결합 수용체(GPCR)로, 이러한 리간드의 전신 투여가 DREADD 발현 뉴런의 흥분성을 증가시키거나 감소시킵니다. 이 세 가지 기술이 ATAC에 결합되면 공간, 세포 유형 및 시간적 정밀도로 선택된 신경 회로의 비침습적 변조에 사용할 수 있습니다.
여기에서는 간단한 3D 프린팅 표적 장비를 사용하여 마우스에서 FUS-BBBO로 뇌 영역을 정확하게 표적화하는 방법론을 포함하여 FUS-BBBO11 에 대해 이전에 발표된 프로토콜을 확장하고 업데이트합니다. 또한 FUS-BBBO를 ATAC에 적용하는 방법을 보여줍니다. 우리는 화학유전학적 수용체를 운반하는 AAV의 전달과 조직학에 의한 유전자 발현 및 신경 조절의 평가에 필요한 단계를 보여줍니다. 이 기술은 유전자 발현 또는 신경 조절을 위해 크거나 여러 뇌 영역을 표적으로 삼는 데 특히 적용할 수 있습니다. 예를 들어, 피질의 넓은 영역은 FUS-BBBO로 쉽게 형질도입되고 화학유전학을 사용하여 조절될 수 있습니다. 그러나 대체 기술인 두개내 주사를 통한 유전자 전달에는 많은 수의 침습적 주사와 개두술이 필요합니다. FUS-BBBO와 그 응용분야인 ATAC는 뇌 영역이 더 크고 침습적으로 표적으로 삼기 어려운 다양한 크기의 동물로 확장할 수 있습니다.

<table><tbody><tr><td>21게이지 바늘(BD)</td><td>Fisher Scientific</td><td>14826C</td><td></td></tr><tr><td>25게이지 버터플라이 카테터</td><td>Harvard Bioscience</td><td>725966</td><td></td></tr><tr><td>30게이지 바늘(BD)</td><td>Fisher Scientific</td><td>14826F</td><td></td></tr><tr><td>흡수성 파란색 패드</td><td>Office Depot</td><td>902406</td><td></td></tr><tr><td>Anti-c-Fos 항체</td><td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>SC-253-G</td><td></td></tr><tr><td>Anti-mCherry 항체</td><td>Thermofisher</td><td>PA534974</td><td></td></tr><tr><td>Bruker Biospec 70/30</td><td>Bruker</td><td>맞춤형</td><td>에는 RF 코일,</td></tr><tr><td>Clozapine-n-oxide</td>, <td>Tocris</td><td>4936</td><td></td></tr>, <tr><td>맞춤형으로 설계된 3D 프린팅 마우스 하네스 및 MRIgFUS 표적 구성 요소가</td><td></td><td></td> 포함됩니다 <td>szablowskilab.org/downloads</td></tr><tr><td>사용자 정의 MRIgFUS 기계</td><td>ImageGuidedTherapy</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Definity microbubbles</td><td>Lantheus</td><td>DE4</td><td></td></tr><tr><td>탈기 아쿠아소닉/초음파 젤</td><td>Fisher Scientific</td><td>5067714</td><td></td></tr><tr><td>탈모 cr&egrave; me</td><td>Nair</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>8요소 환형 어레이 트랜스듀서</td><td>Imasonic Inc.</td><td>맞춤형</td><td></td></tr><tr><td>에탄올 패드 / 알코올 면봉 (70 %) (BD)</td> <td>Office Depot</td><td>599893</td><td></td></tr><tr><td>Heparin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H3149-25KU</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Patterson Veterinary</td><td>07-893-1389</td><td></td></tr><tr><td>Ketamine</td><td>Patterson Veterinary</td><td>07-890-8598</td><td></td></tr><tr><td>중성 완충 포르말린 (10 %)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>HT501128-4L</td><td></td></tr><tr><td>광섬유 수중청음기</td><td>Precision Acoustics</td><td></td><td></td></tr><tr><td>PE10 튜빙</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC1513314</td><td></td></tr><tr><td>연동 펌프</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>인산염 완충 식염수(PBS)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>524650-1EA</td><td></td></tr><tr><td>Prohance 조영제</td><td>Bracco</td><td>0270-1111-04</td><td></td></tr><tr><td>Saline</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC9054335</td><td></td></tr><tr><td>2차 항체, 당나귀-안티 염소</td><td>ThermoFisher</td><td>A-11055</td><td></td></tr><tr><td>2차 항체, 당나귀-안티 토끼</td><td>ThermoFisher</td><td>84546</td><td></td></tr><tr><td>수술용 가위(스트레이트)</td><td>Fisher Scientific</td><td>17467480</td><td></td></tr><tr><td>ThermoGuide 소프트웨어</td><td>ImageGuidedTherapy</td><td></td><td></td></tr><tr><td>조직 접착제(Gluture)</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC9855218</td><td></td></tr><tr><td>투베르쿨린 주사기 (1 mL) (BD)</td><td>Fisher Scientific</td><td>14823434</td><td></td></tr><tr><td>VeroClear 3D 인쇄 가능한 재료</td><td>Stratasys</td><td>RGD810</td><td></td></tr><tr><td>Vialmix 마이크로 버블 활성화 장치</td><td>Lantheus</td><td>VMIX</td><td></td></tr><tr><td>진동 마이크로 톰</td><td>Compresstome</td><td>VF-300</td><td></td></tr><tr><td>Xylazine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>X1251-1G</td><td></td></tr></tbody></table>

뇌 구조를 표적으로 삼고 화학 유전 학적 신경 조절을 평가하기위한 집중 초음파 유도 혈액 뇌 장벽 개방

Focused Ultrasound Induced Blood-Brain Barrier Opening for Targeting Brain Structures and Evaluating Chemogenetic Neuromodulation

ATAC(Acoustically Targeted Chemogenetics)는 특정 신경 회로의 비침습적 제어를 허용합니다. ATAC는 집속 초음파(FUS) 유도 혈액-뇌 장벽 개방(FUS-BBBO), 아데노 관련 바이러스(AAV) 벡터를 사용한 유전자 전달, 엔지니어링된 화학 유전학, 단백질 수용체 및 동족 리간드를 사용한 세포 신호 활성화의 조합을 통해 이러한 제어를 달성합니다. ATAC를 사용하면 단일 비침습적 초음파 응용 프로그램을 사용하여 밀리미터 단위의 정밀도로 크고 작은 뇌 영역을 모두 transduction할 수 있습니다. 이 형질 도입은 나중에 약물을 사용하여 자유롭게 움직이는 동물에서 장기간의 비 침습적 장치없는 신경 조절을 허용 할 수 있습니다. FUS-BBBO, AAV 및 화학 유전학이 여러 동물에서 사용되었기 때문에 ATAC는 다른 동물 종에서도 사용할 수 있도록 확장 가능해야 합니다. 이 논문은 이전에 발표된 프로토콜을 확장하고 복잡한 MRI 호환 FUS 장치가 필요 없이 MRI 유도를 통해 FUS-BBBO를 사용하여 작은 뇌 영역에 유전자 전달을 최적화하는 방법을 간략하게 설명합니다. 또한 이 프로토콜은 모든 실험실에서 3D 프린팅할 수 있고 다양한 종 또는 맞춤형 장비에 맞게 쉽게 수정할 수 있는 마우스 타겟팅 및 구속 구성 요소의 설계를 설명합니다. 재현성을 돕기 위해 프로토콜은 ATAC 개발에서 미세 기포, AAV 및 정맥 천자가 어떻게 사용되었는지 자세히 설명합니다. 마지막으로 ATAC를 활용한 연구의 예비 조사를 안내하는 예제 데이터가 표시됩니다.

ATAC 프로토콜을 수행하는 첫 번째 단계는 원하는 뇌 영역에 FUS-BBBO를 표적화하는 것입니다. 예를 들어, 설명된 프로토콜에 따라 해마를 FUS-BBBO로 표적으로 삼고 조영제와 DREADD를 운반하는 AAV9를 마우스에 주입한 다음 마우스 뇌의 이미지를 획득하는 FLASH 3D MRI 시퀀스를 주입했습니다. T1 신호 향상은 해마 영역(그림 6)과 뇌의 다른 부분(그림 7)에서 달성되었습니다. 몇 주 후, DREADD는 표적 뇌 영역 내에서 발현되었습니다. 많은 DREADD가 형광 리포터(예: mCherry)에 융합되는 동안 포름알데히드로 관류 및 고정 과정은 이러한 단백질의 형광을 크게 감소시키는 것으로 밝혀졌습니다. mCherry 또는 DREADD에 대한 면역염색은 이전 경험을 바탕으로 발현의 보다 신뢰할 수 있는 검출을 유도했습니다(그림 8). 이전 실험에서, 마우스의 ~85%가 FUS-BBBO7에 따라 발현을 보였다. DREADD의 충분한 발현 수준에 대한 간단한 테스트는 세포 수준에서 기능을 테스트하는 것입니다. 예를 들어, 화학유전학적 리간드 또는 식염수 대조군, 예컨대 CNO19, 데스클로로클로자핀 28, 또는 기타29를 제공하고, 심장 관류 및 고정 전에 2시간을 대기시킴으로써 수행될 수 있다. 그런 다음 뇌 절편을 뉴런의 활성 증가를 나타내는 c-Fos 단백질30과 DREAD에 대해 공동 면역염색했습니다. DREADD를 표적으로 하는 뇌 부위가 식염수7을 투여받은 그룹과 비교했을 때 화학유전학적 리간드를 투여받은 그룹에서 c-Fos 양성인 신경 핵의 수가 유의하게 더 많거나 FUS-BBBO를 받지 않은 반대쪽 부위와 비교했을 때 실험은 성공적인 것으로 간주되었습니다. 주목할 점은, 이러한 리간드 중 일부가 DREADD의 발현 없이 비특이적으로 뉴런을 활성화할 가능성이 있다는 것입니다. 예를 들어, CNO는 생쥐에서 낮은 수준의 클로자핀으로 대사되는 것으로 나타났으며, 이는 BBB를 통과하여 높은 효능의 DREADD를 활성화시킨다27. 그러나 비특정 위치에도 결합하는 것으로 나타났습니다. 모든 실험에서와 마찬가지로, 화학유전학적 연구(31)에 모든 적절한 대조군을 포함시키는 것이 중요하다. 한가지 가능한 대조군은 원하는 행동 또는 조직학적 분석에 대한 약물 단독의 효과를 배제하기 위해 절차 없이 야생형 마우스에 화학유전학적 리간드를 투여하는 것이다. 또 다른 대조군은 4개의 그룹을 포함할 수 있다: DREADD + 리간드, DREADD + 비히클, EGFP + 리간드, EGFP + 비히클, 이는 FUS-BBBO를 이용한 유전자 전달 및 화학유전학적 리간드 둘 다의 임의의 잠재적 효과를 설명할 것이다.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61352/61352fig1.jpg"> 그림 1: ATAC에서 FUS의 MRI 유도 표적화 프로세스. (a) 이어바, 노즈콘 및 MRI 스캐너 내부에 들어갈 수 있는 플랫폼이 있는 마우스 배치. (b) MRI에서 볼 수 있는 3D 프린팅 가이드(파란색)를 이어바 프레임 끝에 부착한 다음 4개의 스냅온 볼트(반투명 파란색)가 포함된 표면 MRI 코일 홀더로 제자리에 고정했습니다. (c) 시상 MRI(왼쪽 패널)에서 3D 프린팅된 가이드의 모양으로, 변환기의 가상 표현의 하단이 가이드의 하단과 정렬(노란색 반원)되어 있습니다. 오른쪽 패널은 MRI에서 3D 프린팅된 가이드의 모습을 관상 보기에서 보여줍니다. 밝은 원은 MRI 대비가 강한 폴리젯 지지체 재료로 만들어졌습니다. 십자가는 플라스틱으로 형성되었습니다. 노란색 원은 입체 프레임 내부의 가이드와 동심원으로 정렬된 변환기 위치를 나타냅니다. (d) 뇌 구조를 표적으로 삼기 위해 가상 변환기를 마우스 위의 z 방향으로 이동하여 초음파 원뿔/하우징의 두께와 일치시켰습니다. 이 경우, 수조의 두께 때문에, 트랜스듀서는 정확한 타겟팅을 위해 가이드 위로 8.2 mm 이동하였다. MRI 영상 데이터를 사용하여 뇌 구조를 선택하고 MRI 좌표를 기록하여 정위 기계에 입력했습니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61352/61352fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61352/61352fig2.jpg"> 그림 2: 사용된 소프트웨어의 인터페이스. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61352/61352fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61352/61352fig3.jpg"> 그림 3: MRI 좌표 공간을 정체 기기와 일치시키는 프로세스. (a) 트랜스듀서 홀더 내의 3개의 구멍은 MRI 가이드 내의 3개의 구멍과 정렬되었으며 3개의 원추형 타겟팅 볼트는 전체 어셈블리에 굴곡을 일으키지 않고 삽입되었습니다. (b) 이상적으로는 세 개의 볼트가 모두 구멍의 중앙에 위치합니다. (c) 정렬에 부정확성이 있는 경우 세 개의 볼트가 모두 맞지 않는 경우(예: 1°의 작고 감지할 수 없는 요의 경우 하나의 볼트만 맞고 반대쪽 볼트는 MRI 가이드에 고정됩니다. 또는 볼트가 강제로 통과할 때 전체 어셈블리의 눈에 띄는 굴곡이 있을 수 있습니다. (d) 볼트 피팅의 확대도. 볼트는 최상의 정확도를 위해 동심원으로 배치해야 합니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61352/61352fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61352/61352fig4.jpg"> 그림 4: 주사기 내 미세 기포의 신속한 재분배. (a) 주사기는 혼합 후 5초 후에 촬영하였다. (b) 1분 후, 1mL 투베르쿨린 주사기 상단 근처에 일부 기포 농축액을 보여주는 명확하게 보이는 층이 있었습니다. 이 예는 특히 마이크로 버블 용액을 사용했습니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61352/61352fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61352/61352fig5.jpg"> 그림 5: 트랜스듀서의 중심을 MRI 가이드의 중심 위에 배치하는 과정. (a) 이 문서에 표시된 모델에서 빨간색 캐리어는 그림 10.56b에 표시된 위치에서 여기에 표시된 위치로 3mm 앞으로 이동하도록 설계되었습니다. (b) 초음파 처리 전에 파란색 MRI 가이드를 제거하고 초음파 통과를 보장하기 위해 마우스와 변환기 (주황색) 사이에 초음파 젤을 적용했습니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61352/61352fig5large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61352/61352fig6.jpg"> 그림 6: BBB 개구부의 MRI 시각화. (a) BBB 개구부의 축 방향 보기. 화살촉으로 지정된 더 밝은 영역은 MRI T1 조영제의 혈관외 유출을 나타냅니다. (b) FUS-BBBO(화살촉)로 표적화된 등쪽 해마와 해마 위 피질의 관상 보기. (c) FUS-BBBO(화살촉)로 표적이 된 중앙 해마의 관상 보기. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61352/61352fig6large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61352/61352fig7.jpg"> 그림 7: 이 논문에 설명된 3볼트 표적화 시스템을 사용한 4개의 뇌 부위 표적화 예. 화살촉이 있는 영역은 BBB가 MRI 조영제가 확산된 부위를 열었습니다. 4개의 사이트는 아래에서 위로 각 BBB 개구부 사이에 ~150초를 두고 연속적으로 표적이 되었습니다. 마지막 BBB 개봉 후 2분 이내에 촬영한 이미지입니다. 스케일 바는 2mm입니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61352/61352fig7large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 8" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61352/61352fig8.jpg"> 그림 8: DREADD 표현식 감지.  (a) DREADD에 부착된 형광단에 대한 면역염색, 이 경우 mCherry는 일부 연구에서 신뢰할 수 있는 검출 방법이었습니다. (b) (a)에서와 동일한 조건을 사용하여 해마를 표적으로 하는 DREADD가 있는 또 다른 대표적인 섹션에서 mCherry의 형광 자체는 강한 배경과 상대적으로 약한 신호를 생성했습니다. (c) 음성 대조군으로 AAV의 전신 주사를 받았지만 FUS-BBBO를 받지 않은 마우스를 사용했습니다. mCherry 면역염색에 의해 유의한 발현을 발견할 수 없습니다. 스케일 바는 500mm입니다(a, c의 데이터는 권한이 있는7 에서 수정됨, Copyright 2020 Nature-Springer). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61352/61352fig8large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

이 프로토콜은 집속 초음파 혈액 뇌 장벽(BBB) 개방, 결과 유전자 발현 평가 및 조직학적 검사를 통한 화학 유전 수용체의 신경 조절 활성 측정을 통해 유전자 전달에 필요한 단계를 설명합니다.

Acoustically Targeted Chemogenetics (ATAC) allows for the noninvasive control of specific neural circuits. ATAC achieves such control through a ...

당사의 프로토콜은 마우스에서 집속 초음파의 밀리미터 미만의 정밀도 표적화를 가능하게 합니다. 이를 통해 수술이나 MRI 호환 초음파 장비를 사용할 필요 없이 저렴한 3D 프린팅 부품을 사용하여 초음파를 표적화할 수 있습니다. 집속 초음파 혈액-뇌 장벽 개방은 처음에는 상당히 까다로울 수 있습니다.변환기가 탈기된 젤 또는 물을 사용하여 동물에 적절하게 결합되고 주입 중에 미세 기포가 무너지지 않는 것이 중요합니다. 이 절차를 시연하는 사람은 Caltech의 대학원생인 Richard Li입니다. 마취된 마우스에서 페달 반사에 대한 반응 부족을 확인한 후, 헤파린 식염수 1밀리리터당 10단위를 사용하여 깨끗한 25-35 게이지 카테터를 세척하고 에탄올 패드를 사용하여 동물의 꼬리를 소독합니다.카테터를 측면 꼬리 정맥에 삽입하고 조직 접착제를 사용하여 카테터를 제자리에 고정합니다. 바늘이 올바르게 삽입되면 카테터에서 혈액의 역류가 관찰됩니다. 접착제가 마르면 제모 크림으로 동물의 머리에 있는 털을 제거하고 마우스를 3D 프린팅 MRI 캐리지에 넣고 머리가 콧방울 안에 있는 바이트 바에 앞니를 장착합니다.뭉툭한 막대를 안전한 압력으로 두개골에 고정하고 30초 동안 호흡을 관찰하여 동물이 초당 한 번의 호흡 속도로 자유롭게 호흡하고 있는지 확인합니다. 타겟팅 가이드를 이어바에 연결하고 호흡을 다시 확인합니다. MRI 캐리지를 MRI 홀더에 넣고 홀더를 자석 구멍 안에 넣습니다.그런 다음 MRI 시퀀스를 획득하여 스캐너에서 마우스의 위치를 파악하고 3D 고속 로우 앵글 샷 시퀀스를 사용하여 전체 뇌를 이미지화합니다. MRI 유도 표적화를 수행하려면 캐리지를 입체 기구 내에 놓고 양면 테이프가 있는 금속 블록을 사용하여 입체 기구의 두 지지대에 블록을 고정합니다. MRI 이미지를 집속 초음파 유도 소프트웨어 프로그램이 실행 중인 컴퓨터로 전송하고 이미지를 엽니다.모든 이미지가 로드되면 마우스 오른쪽 버튼을 클릭하고 다시 포맷을 클릭하여 이미지를 세 축으로 다시 포맷합니다. 마우스 오른쪽 버튼을 클릭하여 변환기를 원형 표적 가이드에 지역화합니다. 시상면 보기에서 가상 변환기의 수직 위치를 조정하여 수조와 변환기 하우징의 두께를 고려합니다.궤적 계획에서 목표로 할 영역을 표시하고 스프레드시트에 좌표를 기록합니다. 원하는 대상 지정 깊이를 다이얼 인하고 앞에서 설명한 대로 좌표를 기록해 둡니다. 그런 다음 궤적 보내기를 클릭하고 실행하여 각 점을 대상으로 합니다.MRI의 좌표와 입체성 프레임의 상관 관계를 파악하려면 맞춤형 장착 변환기를 타겟팅 가이드 위에 놓고 세 개의 타겟팅 볼트가 각각 트랜스듀서 홀더와 타겟팅 가이드를 모두 통과할 수 있을 때까지 이동합니다. 볼트가 장력을 받거나 기울어지지 않았는지 확인하고 트랜스듀서가 MRI에서 표적 가이드의 중심이 나타나는 지점에 위치할 때까지 트랜스듀서를 전후 방향으로 10.56mm 앞으로 이동합니다. 그런 다음 가상 트랜스듀서의 중심에서 대상 영역까지의 거리를 결정하고 프레임을 사용하여 트랜스듀서를 이러한 좌표로 이동합니다.주사 용액을 준비하려면 800마이크로리터의 식염수와 100마이크로리터의 MRI 조영제를 1.5ml 튜브에 혼합하여 로드합니다. 다음으로, microbubble 활성화 장치에 있는 45 초 동안 micro-bubbles를 활성화하기 전에 활성화되지 않은 microbubble 해결책을, 실내 온도에 가져오십시오. 활성화 후에, 천천히 21 계기 바늘 장비된 1개 밀리리터 tuberculin 주사통으로 해결책의 중앙에서 마이크로 거품의 100 마이크로리터를 적재하고, 대조제 해결책으로 마이크로 거품의 80 마이크로리터를 추가하십시오.부유선광을 방지하기 위해 1.5ml 튜브를 15초 동안 부드럽게 뒤집어 준비된 용액을 혼합합니다. 혼합이 끝나면 200마이크로리터의 마이크로버블 용액을 바늘이 없는 주사기에 넣고 주사기를 뒤집습니다. 플런저를 눌렀다가 집어넣어 주사기가 거꾸로 되어 있는 동안 30게이지 바늘을 주사기에 혼합하고 부착합니다.그런 다음 바늘 끝에 물방울이 나타날 때까지 마이크로 버블 용액을 천천히 밀어냅니다. 마이크로 거품이 준비되자마자, 두개골에 압력의 0.3에서 0.45 메가 파스칼과 더불어 120의 반복과 더불어 10 밀리초에, 조정하십시오. 타겟팅 가이드를 제거하고 탈기된 초음파 젤을 마우스 머리에 바르고 거품이 생기지 않도록 주의합니다.이어바 홀더의 평평한 부분에 직접 놓일 때까지 변환기를 내리고 좌표를 입체 기기로 다이얼합니다. 관심 있는 아데노 관련 바이러스를 체중 농도 1g당 0.5-2배 10에서 10번째 바이러스 입자로 희석하고 바이러스 입자를 30게이지 바늘이 장착된 1ml 주사기에 로드합니다. 꼬리 정맥 카테터에 용액을 주입하고 80마이크로리터의 마이크로 버블 용액을 마우스에 주입합니다.MRI로 혈액-뇌 장벽의 개방을 평가하려면 시연된 대로 빠른 로우 앵글 샷 시퀀스를 기록합니다. DREADD 자극을 위해 클로자핀 N-옥사이드를 밀리리터당 1밀리그램 농도의 멸균 식염수에 용해시키고 복강내에 주입합니다. 출산 후 15분에서 45분 후에 동물의 행동 활동을 기록하기 시작합니다.신경 세포 활성화 분석을 위해서는 뇌 조직을 사용합니다. 입증된 프로토콜에 따라 T1 신호 향상은 해마 영역과 뇌의 다른 부분에서 달성될 수 있습니다. 관찰된 바와 같이, mCherry에 대한 면역 염색은 DREADD 발현의 보다 신뢰할 수 있는 검출로 이어집니다.이 절차에서는 마이크로 버블을 부드럽게 다루고 MRI 이미징 및 주입 중에 동물이 안정적인지 확인하는 것을 기억하십시오.

focused-ultrasound-induced-blood-brain-barrier-opening-for-targeting

Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

microbubbles의 Insonation는 유망 감소 시간 평균 음향 파워에서 종양 절제의 전략뿐만 아니라 치료제의 타겟으로 전달됩니다. 현재 연구의 목적은 피하 C6 gliomas가 아닌 열 microvascular 박리 및 페이로드 전송을 극대화하기 위해 낮은 듀티 사이클 초음파 pulsing 전략과 nanocarriers을 개발하는 것입니다.

명암 초음파 마약 베어링 Nanoparticle 배달 및 Microvascular 절제를 통해 마우스에서 Gliomas의 치료 타겟

혈액 - 뇌 장벽 (BBB)​​의 Microbubble-매개 집중 초음파 장애는 두뇌의 비침습 타겟 약물 전달을위한 유망...

쥐 모델에서 Transcranial 집중 초음파를 사용하여 혈액 - 뇌 장벽의 MRI를 유도 장애

이 비디오는 마이크로 버블 매개 집속 초음파(FUS)를 사용하여 일시적인 개구부를 만들어 혈액뇌장벽(BBB)을 일시적으로 파괴하는 방법을 설명합니다. 이러한 일시적인 국소 BBB 개구부는 결국 더 큰 크기의 약물 분자를 뇌 실질로 직접 전달하는 데 사용될 수 있습니다.

Focus Ultrasound based microbubble mediated Blood-Brain Barrier Opening: A technique to create localized transient openings in mouse by sosoporation(초음파 기반 마이크로버블 매개 혈액-뇌 장벽 개구부: 초음파 처리에 의한 마우스의 혈액-뇌 장벽에 국부적인 일시적인 개구부를 생성하는 기술)

마이크로 버블 에이전트를 가진 집중한 초음파는 혈액 두뇌 장벽을 초점하고 일시적으로 열 수 있습니다. 이 기술은 혈액 뇌 장벽을 통해 에이전트의 넓은 범위를 제공하기 위해 사용되었습니다. 이 문서에서는 MRI 지침유무이드 없이 설치류 뇌에 국소화된 전달을 위한 자세한 프로토콜을 제공합니다.

쥐 모델에서 집중 초음파를 사용하여 위치 특정 혈액 뇌 장벽 개방에 대한 벤치 탑 접근

혈액-뇌 장벽 (BBB) 일시적으로 마이크로 버블 매개 집중 초음파로 중단 될 수 있습니다 (FUS). 여기서는 비초음파 전문가가 액세스할 수 있는 모듈식 FUS 시스템을 사용하여 생체 내 고처리량 BBB 개방을 위한 단계별 프로토콜을 설명합니다.

설치류의 혈액 뇌 장벽 개방을 위한 고처리량 이미지 유도 입체 신경 탐색 및 집중 초음파 시스템

여기에 제시된 프로토콜은 대소 또는 마우스 뇌 전체에 걸쳐 혈액-뇌 장벽 (BBB)을 일시적으로 열어 형광 표지 항체를 전달하고 미세 아교세포를 활성화시키는 프로토콜입니다. 또한 조직학에 의한 항체 전달 및 미세아교세포 활성화를 검출하는 방법이 제시된다.

집중 스캐닝 초음파를 사용하여 뇌로 항체 전달

이 프로토콜은 혈액-뇌 장벽 투과성을 높이기 위해 집중 된 초음파 및 마이크로 버블 치료 중에 설치류 뇌의 생체 내 다광 형광 이미징에서 실시간으로 가능하게하는 수술 및 기술적 절차를 설명합니다.

혈액-뇌 장벽 투과성을 높이기 위해 집중된 초음파 및 마이크로 버블 치료를 시각화하는 실시간 인트라바이탈 다광원 현미경 검사법

이 연구는 자기공명영상(MRI)과 저강도 펄스 집속 초음파(FUS) 프로토콜을 결합한 방법을 설명하며, 경정맥 카테터 삽입이 있는 살아있는 쥐를 활용하여 혈액뇌장벽(BBB) 개구부를 모니터링합니다.

Monitoring Blood-Brain Barrier Opening in Rats with a Preclinical Focused Ultrasound System

기술은 광범위하게 microbubbles와 초음파를 사용하여 마우스의 혈액 - 뇌 장벽을 여는 대해 설명되어 있습니다. 이 기법을 사용하여, 망간은 마우스 뇌에 관리할 수 있습니다. 망간은 depolarized 뉴런에 축적 MRI 대비 에이전트이기 때문에, 이러한 방식의 연결 활동의 이미징을 가능하게합니다.

초음파 혈액 - 뇌 장벽 파괴 및 망간 향상된 MRI를 사용하여 기능성 Neuroimaging

이 연구에서 우리는 신경 퇴행 성 조건 하에서 혈액-뇌 장벽 장애를 평가 하기 위한 간단 하 고 효율적인 절차를 제시. 우리의 목표를 달성 하기 위해 우리는 높은 분자량 fluorescein isothiocyanate 표시 (FITC) 주입-마우스 경으로 알 부 민 정 맥 및 형광 현미경 검사 법에 의해 뇌 실질에 그것의 누설을 평가.

FITC 표시 된 알 부 민 신경 질환의 마우스 모델에서의 정 맥 주입에 의해 혈액-뇌 장벽 침투성의 평가

배우세요 초음파 유도 혈액 뇌 장벽 개방을 통한 화학 유전 학적 신경 조절 평가 방법을. 생쥐 모델에서 비침습적 유전자 전달과 DREADD 발현 분석을 수행하여 신경 메커니즘 연구에 활용할 수 있습니다.

뇌 구조를 표적으로 삼고 화학 유전 학적 신경 조절을 평가하기위한 집중 초음파 유도 혈액 뇌 장벽 개방

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