April 3rd, 2026
Hier tonen we een standaardprotocol dat multi-fase massaspectrometriebomen combineert met een fragmentatieproces gebaseerd op Huoxiang Zhengqi orale vloeistof.
Er werd een multi-traps massaspectrometriefragmentatiemethode ontwikkeld om complexe bestanddelen in Huoxiang Zhengqi orale vloeistof te identificeren en te karakteriseren. Traditionele tandemmassaspectrometrie kan onbekende samengestelde structuren niet oplossen. Multi-traps massaspectrometrie biedt diepere fragmentatie voor een uitgebreide structurele opheldering.
Voor ultra-performance vloeistofchromatografie voorbereiding, begin met dubbelklikken op de Xcalibur-software om deze te openen. Klik op Klaar om te downloaden en klik vervolgens op Direct Control. Klik in het pop-upvenster op de kolom Pompmodule en stel percentage B in op 50, percentage C op nul en percentage D op nul.
Klik op de Motorknop om het naar de aan-stand te zetten. Klik op meer opties, stel de doorstroming in op vijf milliliter per minuut en de tijd op 180 seconden in het pop-upvenster. Klik op Purge en vervolgens op Uitvoeren ondanks waarschuwing in het pop-upvenster.
Ga terug naar het hoofdvenster van de software en klik op Sequence Setup View. Klik op Open om het bewerkte sjabloon te importeren. Klik met de rechtermuisknop op de methodnaam en open bestand om het methodebestand te openen.
In het hoofdvenster van de software stelt u de eerste massa in op 100 massa tot lading en de laatste massa op 1200 massa tot lading verhouding. Klik op Opslaan om de methode op te slaan. Klik op Sequence uitvoeren, kies Standby in het aftersequence-setsysteem, en klik dan op Oké in het pop-upvenster.
Wacht tot de monsterinjectie is afgerond. Klik op Roadmap View en vervolgens op het Qual Browser-icoon om het Qual Browser-venster te openen. Klik open, selecteer het databestand in RAW-formaat en dubbelklik om het te openen.
Klik met de rechtermuisknop op het chromatogramvenster en klik op Ranges. Selecteer in het scanfiltergedeelte ESI full MS. En in de sectie plottype kies je TIC en klik dan op Oké. Bekijk het totale ionenchromatogram dat wordt weergegeven.
Klik op de pushpinknop in het massaspectrumvenster. Klik en schuif in het chromatogramvenster om een tijdgebied met de sterkste relatieve abundie te selecteren. Observeer de bijbehorende massaspectrumionen en registreer de massa-ladingsverhouding.
Open het venster voor instrumenteninstellingen. Zoek de hoofdmassakolom van de N gelijk aan twee rijen en voer de eerder geregistreerde massa-ladingsverhouding in. Klik op Opslaan om de methode op te slaan.
Ga terug naar de sequentie-instellingen in het softwarevenster, wijzig de bestandsnaam en klik op Opslaan om de sequentie op te slaan. Klik op Run Sequence, en klik vervolgens op Oké in het pop-upvenster. Wacht tot de monsterinjectie is afgerond.
Ga naar het Qual Browser-venster, klik open, selecteer het RAW-databestand en dubbelklik om het te openen. Klik met de rechtermuisknop op het chromatogramvenster en klik op Ranges. Selecteer in het scanfiltergedeelte ESI full MS.In het plottype-gedeelte, kies TIC en klik op Oké om het chromatogram weer te geven.
Klik in het massaspectrumvenster op de pushpin-knop. Kies een tijdgebied met de sterkste relatieve abundantie en observeer de massaspectrumionen. Noteer de massa-ladingsverhouding waarden voor het volgende niveau van massaspectrometrie.
In het instrumentconfiguratievenster vind je de hoofdmassakolom van de N gelijk aan drie rijen en voer je de eerder geregistreerde massa-ladingsverhouding in. Klik op Opslaan om de methode op te slaan. Zoals eerder aangetoond, herhaal je de gegevensweergaveprocedure om de monsterinjectie en analyse te voltooien.
Na het openen van het ruwe databestand klik je op de pushpin-knop in het massaspectrumvenster en observeer je de veranderende fragmentionpieken. Ga in het instrumentinstellingsvenster naar de kolom Act Type en klik op CID. Selecteer vervolgens PQD of ETD om de botsingsmodus te wijzigen.
Klik in de kolom Normalized Collision Energy op 35 en verander deze naar 50 om de botsingsenergie aan te passen. Teken het moederion en fragmentatie-ionen in tekensoftware, inclusief de moederionstructuur, de naam van de verbinding en de massa-ladingsverhouding. Als voorbeeld, identificeer het fragment bij massa-ladingsverhouding 461,15 en onderzoek het voorloper-ion met massa-ladingsverhouding 623,21 in het tandem-massaspectrometriespectrum.
Bereken het massaverschil. Analyseer de verdere fragmentatie van het intermediaire ion met massa-ladingsverhouding 461,15. Om een production te genereren met een massa-ladingsverhouding van 315,09 in de MS in de kubieke MS, bereken je het massaverschil op basis van de binding positie en koppelingsanalyses van alle fragmenten.
Leid de uiteindelijke structuur van de onbekende verbinding af met een massa-ladingsverhouding van 623,21. De onbekende verbinding met een massa-ladingsverhouding van 623,21 verloor één hexose-eenheid en leverde een fragment-ion op met een massa-ladingsverhouding van 461,15. Tertiaire massaspectrometriefragmentatie van het intermediair leverde neobyakangelicol op met een massa-ladingsverhouding van 315,09 na het verlies van één rhamnose-eenheid.
Viervoudige massaspectrometrie van neobyakangelicol produceerde een fragmention met een massa-ladingsverhouding van 135,09. De structuur van de onbekende verbinding werd afgeleid uit het fragmentatiepatroon in meerdere fasen. De onbekende verbindingen met massa-ladingsverhoudingen van 545,41 en 365,12 werden afgeleid met dezelfde fragmentatiemethode.
Dit protocol maakt gedetailleerde analyse en structurele karakterisering van meer onbekende verbindingen in medicinale kruiden en Chinese patentgeneesmiddelen mogelijk. Een duidelijk begrip van de kernstructuur van de hoofdcomponenten is essentieel voor nauwkeurige fragmentatie en analyse met dit protocol. Deze procedure maakt de ontwikkeling mogelijk van een multi-fase massaspectrometriefragmentatiedatabase voor verbeterde verbindingsidentificatie en vergelijkende analyse.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
This article presents a comprehensive technique for the structural exploration of unknown compounds in Chinese herbal compounds (CHCs), with a focus on Huoxiang Zhengqi oral liquid. The method leverages advanced mass spectrometry, particularly linear ion trap technology, to achieve deeper fragmentation and more detailed molecular characterization than traditional approaches. The developed workflow is applicable to the analysis of bioactive small molecules in traditional Chinese medicine.
Comprehensive structural elucidation of unknown small molecules in complex herbal mixtures is critical for advancing discovery-stage confidence in traditional medicine-derived therapeutics. The use of linear ion trap mass spectrometry enables deeper fragmentation and more detailed molecular characterization, directly supporting target validation and mechanistic de-risking in early R&D. This approach enhances the ability to link bioactive constituents to pharmacological mechanisms, informing portfolio decisions and translational research continuity.
This structural analysis technique fits at the interface of early discovery and lead identification, providing foundational molecular data for subsequent screening and translational studies.