RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Komórki nabłonkowe obecne na zewnętrznej powierzchni jajnika mogą ulegać złośliwej transformacji w komórki rakowe, które mogą przekształcić się w guzy jajnika.
Aby wyizolować te nabłonkowe komórki raka jajnika lub EOC, zacznij od pobrania próbki guza jajnika i zmielenia jej na małe kawałki. Przenieść zmielone kawałki do probówki zawierającej bufor wytrawiający uzupełniony pożądanym enzymem proteazą.
Proteazy te degradują białka macierzy zewnątrzkomórkowej w tkance, uwalniając komórki EOC, erytrocyty i kilka zdysocjowanych fibroblastów do zawiesiny.
Przefiltruj zawiesinę komórek przez sitko, aby oddzielić zawieszone pojedyncze komórki od niezdysocjowanych kawałków tkanki. Odwirować zawiesinę w celu granulacji komórek EOC, erytrocytów i fibroblastów. Odrzucić supernatant zawierający enzym.
Zawiesić osad komórkowy w nabłonkowym pożywce wzrostowej i przenieść go do naczynia hodowlanego. Inkubuj kulturę, aby umożliwić komórkom EOC i fibroblastom przyczepienie się do podstawy szalki, podczas gdy erytrocyty unoszą się w pożywce.
Usuń zawieszone erytrocyty, odświeżając pożywkę. Z biegiem czasu pożywka ułatwia selektywny wzrost komórek EOC nad fibroblastami, tworząc monowarstwę komórek pierwotnego raka jajnika.
Pobrać próbkę z sali operacyjnej i przetransportować ją na lodzie do laboratorium. Pozostając w transportowanym pojemniku, umieścić próbkę w biologicznym kapturze bezpieczeństwa. Przenieś próbkę z 50-mililitrowej stożkowej rurki na szalkę Petriego o wymiarach 60 milimetrów na 60 milimetrów zawierającą 10 mililitrów świeżego, lodowatego PBS.
Następnie za pomocą sterylnej żyletki pokrój próbkę na 2 milimetry lub mniejsze kawałki. Następnie potraktuj DMEM dyspazą II w 15-mililitrowej stożkowej probówce. Przenieść zmielone tkanki do probówki z mieszaniną DMEM dispazy II. Następnie inkubuj próbkę w 5% dwutlenku węgla i temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 30 minut. Ręcznie mieszaj gnojowicę komórkową co pięć minut, aby zapewnić optymalne trawienie.
Po inkubacji przenieś zawiesinę komórek przez sitko o siatce 70 mikrometrów umieszczone na 50-mililitrowej stożkowej rurce. Delikatnie docisnąć siatkę za pomocą tłoka strzykawki. Wyrzuć wszelką niezdysocjowaną tkankę pozostałą na wierzchu siatki i zbierz uzyskaną zawiesinę komórek w 50-mililitrowej sterylnej stożkowej probówce.
Następnie odwirować stożkową probówkę o sile 320 x g przez siedem minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Wyrzuć supernatant i ponownie zawieś osad komórkowy w 10 mililitrach DMEM zawierającym 10% FBS i 1% PS. Następnie przenieś zawiesinę komórkową na szalkę Petriego i inkubuj zawiesinę w 5% dwutlenku węgla i 37 stopniach Celsjusza. Zmień pożywkę 24 godziny po początkowym posiewie, aby usunąć resztki komórkowe i większość erytrocytów obecnych w hodowli.
Na koniec należy zmieniać pożywkę co trzy dni przez kolejne dwa tygodnie, po czym hodowle pierwotnych komórek EOC są gotowe do dalszych zastosowań.
Related Videos
07:32
Related Videos
27K Views
07:16
Related Videos
14.3K Views
11:50
Related Videos
13.7K Views