$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Zacznij od transgenicznych mezenchymalnych komórek macierzystych myszy - multipotencjalnych komórek pochodzących ze szpiku kostnego.
Komórki są zaprojektowane tak, aby wyrażać GFP i terapeutyczne czynniki neurotroficzne, które wspierają wzrost i przeżycie neuronów.
Umyj komórki buforem i utrwal je, aby zachować integralność komórkową.
Ponownie przemyć buforem, a następnie dodać roztwór, aby przeniknąć błony komórkowe i jądrowe oraz zablokować niespecyficzne miejsca wiązania.
Wprowadzić przeciwciała pierwszorzędowe skierowane przeciwko białku markerowemu proliferacji komórek ulegającemu ekspresji wyłącznie w jądrze dzielących się komórek.
Przemyć buforem w celu usunięcia niezwiązanych przeciwciał.
Dodaj przeciwciała drugorzędowe sprzężone z fluoroforem skierowane do przeciwciał pierwszorzędowych i barwnik wiążący DNA, aby przeciwdziałać barwieniu jąder.
Przemyć buforem w celu usunięcia niezwiązanych odczynników.
Załaduj płytkę do systemu przesiewania o wysokiej zawartości i uchwyć obrazy w celu wykrycia sygnałów fluorescencyjnych.
Ekspresja markera proliferacji komórek wskazuje na aktywny podział komórek, co sugeruje przydatność komórek transgenicznych do zastosowań neuroterapeutycznych.
Aby przeprowadzić test proliferacji komórek Ki-67, użyj 0,1 molowego buforu fosforanowego do płukania kultur komórkowych przez jedną minutę. Po powtórzeniu prania użyj 4% paraformaldehydu lub PFA w temperaturze pokojowej przez 20 minut, aby utrwalić kultury.
Po utrwaleniu usunąć PFA i użyć PBS do trzykrotnego przepłukania studzienek przez siedem minut każda. Po zablokowaniu komórek zgodnie z protokołem tekstowym, nałóż 100 mikrolitrów roztworu przeciwciała pierwotnego do każdej studzienki. Przykryj płytkę i inkubuj przez noc w temperaturze 4 stopni Celsjusza.
Po umyciu komórek trzy razy przez siedem minut przy każdym myciu, nałóż przeciwciało wtórne, umieść komórki w ciemności i inkubuj w temperaturze pokojowej przez 90 minut. Po kolejnych trzech praniach przykryj płytkę i przechowuj ją w temperaturze 4 stopni Celsjusza do czasu wykonania obrazowania.
Aby wykonać automatyczne obrazowanie, załaduj płytkę znakowaną immunologicznie do systemu HCS i pozwól płytki zrównoważyć się przez 20 minut. Otwórz oprogramowanie do akwizycji i analizy obrazów systemu HCS. Wybierz ustawienia akwizycji dla obiektywu 10X, korzystając z łączenia kamery na 1 i ustawienia wzmocnienia na 2.
Użyj funkcji automatycznej ekspozycji, aby znaleźć płaszczyznę Z, w której znajdują się komórki, i obliczyć przesunięcie dla każdej interesującej nas długości fali. Na potrzeby przedstawionej tutaj analizy uchwyć obrazy dla DAPI, GFP i Cy3.
Wybierz maksymalny poziom intensywności, przy którym studzienki kontroli ujemnej nie wykazują sygnału do akwizycji obrazu. Użyj tych samych ustawień progowych dla dołków dodatnich. Na koniec przechwyć obrazy i zapisz je w bazie danych, zanim wykonasz analizę obrazu zgodnie z protokołem tekstowym.