-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Analiza pętli ciśnienie-objętość serca za pomocą cewników konduktancyjnych u myszy
Analiza pętli ciśnienie-objętość serca za pomocą cewników konduktancyjnych u myszy
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
Cardiac Pressure-Volume Loop Analysis Using Conductance Catheters in Mice

Analiza pętli ciśnienie-objętość serca za pomocą cewników konduktancyjnych u myszy

Full Text
19,926 Views
08:15 min
September 17, 2015

DOI: 10.3791/52942-v

Dennis Abraham1, Lan Mao1

1Department of Medicine,Duke University Medical Center

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Analiza pętli ciśnienia i objętości serca jest najbardziej wszechstronnym sposobem pomiaru funkcji serca w nienaruszonym sercu. Opisujemy technikę wykonywania i analizy pętli objętościowych ciśnienia w sercu przy użyciu cewników konduktancyjnych.

Ogólnym celem tej procedury jest ocena zależnych od obciążenia i niezależnych pomiarów funkcji komorowej, skurczowej i rozkurczowej. Osiąga się to najpierw poprzez umieszczenie cewnika konduktanckiego w lewej komorze serca myszy. W drugim etapie aorta jest zwężana w celu zmiany obciążenia następczego, po którym następuje zmiana obciążenia wstępnego poprzez zwężenie żyły dolnej cva.

W ostatnim etapie cewnik konduktancyjny jest starannie kalibrowany, aby dokładnie ocenić zmiany w objętości komory serca. Ostatecznie analiza objętości ciśnienia sercowego służy do uzyskania zależnych od obciążenia i niezależnych pomiarów czynności serca. Implikacje tej techniki rozciągają się w kierunku terapii dysfunkcji serca, ponieważ pozwala ona zarówno na rygorystyczną ocenę funkcji serca, jak i na potencjał w maskowaniu fenotypów funkcjonalnych pominiętych w testach nieinwazyjnych.

Tę procedurę zademonstruje dr Lan Mao, neurochirurg myszy z naszego laboratorium, na 30 minut przed umieszczeniem cewnika konduktanckiego w komorze lewej komory. Namocz końcówkę cewnika w ciepłym roztworze soli fizjologicznej, podczas gdy końcówka moczy. Ogol szyję i klatkę piersiową znieczulonej dorosłej myszy i umieść zwierzę na podgrzewanej podkładce.

Po nałożeniu maści na oczy zwierzęcia wykonaj nacięcie w linii środkowej szyi i wypreparuj mięśnie tchawicy, aby odsłonić tchawicę. Następnie umieść rurkę dotchawiczą w ustach, wizualizując tchawicę w celu prawidłowego umieszczenia rurki i podłącz rurkę do respiratora. Ustaw ustawienia respiratora w zależności od wagi zwierzęcia, jak wskazano.

Następnie, aby umieścić cewnik z dostępu szyjnego, wykonaj nacięcie nad prawą tętnicą szyjną od żuchwy do mostka i wypreparuj otaczającą tkankę, aby odsłonić prawą tętnicę szyjną. Następnie przetnij nerw błędny, który biegnie w sąsiedztwie tętnicy szyjnej i zabezpiecz jedwabny sześcian wokół dystalnego końca tętnicy szyjnej. Umieść dwa dodatkowe szwy pod tętnicą szyjną proksymalnie do pierwszego szwu, luźno wiążąc szew środkowy.

Następnie delikatnie pociągnij szew proksymalny i za pomocą zacisku przymocuj szew do skóry. Po zaciśnięciu tętnicy szyjnej zarówno proksymalnie, jak i dystalnie wykonaj małe nacięcie w prawej tętnicy szyjnej proksymalnie do pierwszego szwu i rozciągające się podłużnie w kierunku klatki piersiowej. Teraz włóż końcówkę cewnika konduktanckiego nasączonego solą fizjologiczną do naczynia przez nacięcie za pomocą środkowego szwu, aby zabezpieczyć cewnik.

Następnie delikatnie wsuń cewnik do lewej komory przez tętnicę szyjną. Obserwowanie śledzenia pętli objętości ciśnienia w celu zapewnienia prawidłowego umieszczenia, optymalne umieszczenie cewnika spowoduje powstanie pętli objętości ciśnienia, które wydają się prostokątne przez pięć do 10 minut po zapisie umieszczenia Pętle objętości ciśnienia wyjściowego, aż do osiągnięcia stanu ustalonego w celu umieszczenia cewnika metodą podejścia wierzchołkowego. Wykonaj początkowe nacięcie od wyrostka mieczykowatego przez ścianę klatki piersiowej bocznie, aż przepona będzie widoczna.

Przeciąć przeponę, aby uwidocznić wierzchołek serca i użyj igły o rozmiarze od 25 do 30, aby wykonać ranę kłutą w wierzchołku lewej komory. Następnie wprowadzić cewnik konduktujący przez ranę kłutą, aż elektroda proksymalna znajdzie się tuż wewnątrz komory. I zapisz pętle objętości ciśnienia podstawowego, jak właśnie pokazano, aby zmieniać obciążenie następcze wraz z przejściową okluzją aorty.

Zacznij od wykonania małego poziomego nacięcia w górnej części klatki piersiowej i wypreparuj otaczającą tkankę, aby odsłonić aortę poprzeczną. Umieść jedwabną ligaturę 6.0 pod aortą poprzeczną. Następnie, gdy pętle objętości ciśnienia powrócą do linii podstawowej, umieść oba końce ligatury w małym segmencie rurki klasy PE 50 oba końce szwu za pomocą zacisku igły i delikatnie i powoli podnoś szew przez okres jednej do dwóch sekund, po czym następuje powolne zwalnianie napięcia na naczyniu.

Optymalne zapisy powinny mieć co najmniej pięć cykli pętli objętości ciśnienia i wykazywać stały wzrost końcowego ciśnienia skurczowego podczas przykładania naprężenia na szew. Aby zmienić napięcie wstępne za pomocą przejściowej okluzji CVA żyły dolnej. Wykonaj pionowe nacięcie poniżej wyrostka mieczykowatego i pod przeponą, aby odsłonić żyłę dolną cva.

Umieść sześcioma jedwabną ligaturę pod żyłą dolną cva. Następnie, po tym, jak pętle objętości ciśnienia powrócą do linii podstawowej, zaciśnij oba końce szwu zaciskiem igły i delikatnie i powoli podnieś szew przez okres jednej do dwóch sekund, po czym nastąpi powolne zwalnianie napięcia na naczyniu. Optymalne zapisy powinny mieć co najmniej pięć cykli pętli objętości ciśnienia i wykazywać stały spadek ciśnienia w lewej komorze i rozkurczu podczas przykładania napięcia do szwu w celu wykonania kalibracji soli fizjologicznej.

Na zakończenie badania wstrzyknij zwierzęciu 10 mikrolitrów soli fizjologicznej hipertonicznej przez żyłę szyjną, aby uzyskać równoległą wartość przewodności. Widoczny wzrost objętości będzie obserwowany bez zmiany ciśnienia w wyniku zmiany przewodnictwa w sadzawce krwi. Aby przeprowadzić kalibrację vete, należy ogrzać vete z dołkami o znanej średnicy do 37 stopni Celsjusza i wypełnić pierwsze trzy otwory świeżymi, ciepłymi heparynami.

Krew myszy poddawanych badaniom hemodynamicznym pasuje do plastikowego adaptera dostarczonego przez producenta do weterynarza. Spowoduje to utrzymanie cewnika konduktancji nieruchomo podczas kalibracji. Następnie włóż cewnik konduktancyjny do pierwszej studzienki, aż wszystkie elektrody zostaną zanurzone.

Na koniec zapisz przewodnictwo w kanale objętościowym, aby sprawdzić, czy ligand angiotensyny typu pierwszego z polaryzacją beta arrestiny TR RV 1 2 0 0 2 3 wpływa na czynność serca. Analizę pętli objętości ciśnienia in vivo przeprowadzono na myszach typu dzikiego otrzymujących konwencjonalne lub nowe blokery receptora angiotensyny. Rzeczywiście, w tym eksperymencie dożylna infuzja TR RV 1 2 0 0 2 3 znacznie zwiększyła kurczliwość serca w porównaniu z leczeniem konwencjonalnym i kontrolnym.

Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak przeprowadzić analizę pętli objętości ciśnienia przy użyciu zwężenia zarówno aorty, jak i żyły głównej dolnej, aby uzyskać zarówno zależne, jak i niezależne pomiary czynności serca.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Słowa kluczowe: analiza pętli ciśnienia i objętości serca cewniki konduktancyjne czynność komór kurczliwość podatność obciążenie następcze obciążenie wstępne myszy techniki mikrochirurgiczne przewodnictwo elektryczne szacowanie objętości genetyczne zmutowane modele myszy badania nad leczeniem farmakologicznym pomiary hemodynamiczne analiza danych

Related Videos

Cewnikowanie serca u myszy w celu pomiaru zależności objętości ciśnienia: badanie efektu Bowditcha

07:38

Cewnikowanie serca u myszy w celu pomiaru zależności objętości ciśnienia: badanie efektu Bowditcha

Related Videos

18.7K Views

Pomiar pętli głośności ciśnienia w myszy

09:15

Pomiar pętli głośności ciśnienia w myszy

Related Videos

16.9K Views

Dwukomorowa ocena czynności serca i pętli ciśnienie-objętość za pomocą cewnikowania w zamkniętej klatce piersiowej u myszy

08:21

Dwukomorowa ocena czynności serca i pętli ciśnienie-objętość za pomocą cewnikowania w zamkniętej klatce piersiowej u myszy

Related Videos

4.9K Views

Odpowiedź serca na stymulację β-adrenergiczną określona na podstawie analizy pętli ciśnienie-objętość

08:05

Odpowiedź serca na stymulację β-adrenergiczną określona na podstawie analizy pętli ciśnienie-objętość

Related Videos

4K Views

Zamknięte dwukomorowe nagrania pętli ciśnieniowo-objętościowej klatki piersiowej z cewnikami wstępnymi w modelu wieprzowym

07:56

Zamknięte dwukomorowe nagrania pętli ciśnieniowo-objętościowej klatki piersiowej z cewnikami wstępnymi w modelu wieprzowym

Related Videos

4.2K Views

Kontrolowana stymulacja procedura oceny funkcji rozkurczowych zależnych od częstości akcji serca w modelach mysiej niewydolności serca

07:49

Kontrolowana stymulacja procedura oceny funkcji rozkurczowych zależnych od częstości akcji serca w modelach mysiej niewydolności serca

Related Videos

1.9K Views

Wykrywanie w czasie rzeczywistym wpływu kwasu ferulowego na lewą komorę szczura za pomocą cewnika konduktometrycznego ciśnienie-objętość

04:27

Wykrywanie w czasie rzeczywistym wpływu kwasu ferulowego na lewą komorę szczura za pomocą cewnika konduktometrycznego ciśnienie-objętość

Related Videos

833 Views

Techniki patch clamp i perfuzji do badania kanałów jonowych ulegających ekspresji w oocytach Xenopus

10:19

Techniki patch clamp i perfuzji do badania kanałów jonowych ulegających ekspresji w oocytach Xenopus

Related Videos

21.7K Views

Bioinżynieria ludzkich sieci mikronaczyniowych u myszy z niedoborem odporności

06:55

Bioinżynieria ludzkich sieci mikronaczyniowych u myszy z niedoborem odporności

Related Videos

12.8K Views

Ekspresja i oczyszczanie transbłonowego białka regulatora przewodnictwa mukowiscydozy w Saccharomyces cerevisiae

14:56

Ekspresja i oczyszczanie transbłonowego białka regulatora przewodnictwa mukowiscydozy w Saccharomyces cerevisiae

Related Videos

19.1K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code