-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Pomiar pętli głośności ciśnienia w myszy
Pomiar pętli głośności ciśnienia w myszy
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
Measuring Pressure Volume Loops in the Mouse

Pomiar pętli głośności ciśnienia w myszy

Full Text
16,871 Views
09:15 min
May 2, 2016

DOI: 10.3791/53810-v

DeWayne Townsend1

1Department of Integrative Biology and Physiology,University of Minnesota

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Ten rękopis opisuje szczegółowy protokół zbierania danych o ciśnieniu i objętości z myszy.

Ogólnym celem pomiaru pętli objętości ciśnienia u myszy jest uzyskanie szczegółowej oceny czynności serca. Metoda ta jest przydatna do fizjologicznej charakterystyki myszy posiadających określone manipulacje genetyczne, które z kolei mogą dostarczyć informacji na temat roli określonych białek w funkcji serca. Główną zaletą tej techniki jest to, że zapewnia szczegółową ocenę funkcji skurczu, która nie jest dostępna za pomocą innych metodologii.

Gdy mysz jest przygotowana do operacji, zacznij od wykonania nacięcia w wcięciu mostka rozciągającym się od około pięciu milimetrów na prawo od linii środkowej do około pięciu milimetrów na lewo od linii środkowej. Wykonaj drugie nacięcie rozciągające się wzdłuż prawej krawędzi pierwszego rostralnie do około dwóch milimetrów rozpieszczonych do końca żuchwy. Następnie wykonaj trzecie nacięcie rozciągające się od rostralnego końca drugiego nacięcia do około pięciu milimetrów na prawo od linii środkowej.

I cofnij powstały płat skóry w prawo, aby odsłonić podkreślone tkanki. Następnie, pod mikroskopem preparacyjnym, tępo wypreparuj śliniankę przyuszną i gruczoły ślinowe poniżej żuchwy w linii środkowej, aby odsłonić mięśnie podkreślające tchawicę. Następnie tępo oddziel prawy i lewy mięsień gnykowy mostka.

Gdy tchawica jest widoczna, przełóż dziesięciocentymetrowy kawałek jedwabnego szwu z trzema zerami pod tkanką gardła, uważając, aby nie objąć przełyku. Za pomocą igły o rozmiarze 20 wykonaj szerokie nacięcie w szczelinie, po prostu przyłóż do krtani przed pierwszym pierścieniem tchawicy. Następnie natychmiast zdejmij maskę anestezjologiczną ze zwierzęcia i ostrożnie włóż rurkę dotchawiczą do tchawicy.

Po zabezpieczeniu rurki przedłuż lewą krawędź pierwotnego nacięcia skóry w dół do wyrostka mieczykowatego i w poprzek linii środkowej do około jednego punktu pięć centymetrów na prawo od linii środkowej. Następnie użyj cięcia, aby cofnąć płat skóry na boki, odsłaniając mięśnie podkreślone. I użyj kleszczy rozszerzających naczynia, aby odizolować przyczep mięśnia piersiowego większego po prawej stronie w pobliżu rozpieszczonej części mostka.

Kauteryzuj i przetnij mięsień. Następnie przetnij mięsień piersiowy większy wzdłuż jego przyczepu do mostka. I podważyć najszerszy grzbietu po tej samej stronie.

Cofnij odcięty koniec czaszkowo, aby odsłonić żebra. I użyj pary ostrych kleszczy, aby ostrożnie przeciąć warstwy mięśni międzyżebrowych, aby dostać się do klatki piersiowej. Po otwarciu przestrzeni w liczbie mnogiej ostrożnie włóż rozszerzacze naczyń z końcówką i podnieś ścianę klatki piersiowej z delikatną siłą skierowaną w górę.

Teraz przetnij bocznie wzdłuż mięśni międzyżebrowych, uważając, aby nie przeciąć płata płuca i przedłuż nacięcie przyśrodkowo, zachowując trzy do czterech milimetrów z boku linii środkowej, aby uniknąć wewnętrznej tętnicy sutkowej biegnącej równolegle do mostka. Następnie umieść nasączony solą fizjologiczną mały aplikator z bawełnianą końcówką przez nacięcie w kierunku linii środkowej i zapewnij delikatną przyczepność w górę, aby odciągnąć ścianę klatki piersiowej od struktur poniżej. Ostrożnie użyj kauteryzacji, aby przeciąć ścianę klatki piersiowej, zaczynając od przyśrodkowej krawędzi nacięcia i kończąc około jednego centymetra po linii środkowej po lewej stronie.

Po dokładnym kauteryzacji tkanki użyj nożyczek, aby ostrożnie przeciąć mostek. Wierzchołek serca powinien być wyraźnie widoczny. Następnie, za pomocą rozwarstwienia, przerwij osierdzie i zidentyfikuj żyłę główną ogonową.

Aby umieścić cewnik do żyły szyjnej, ustaw cewnik igłowy o rozmiarze 30 G przymocowany do strzykawki zawierającej dziesięć procent albuminy w taki sposób, aby igła leżała na żyle szyjnej samodzielnie, skośną stroną do góry. Aby uwidocznić żyłę szyjną, chwyć igłę kleszczami jedną ręką i cofnij gruczoł ślinowy kleszczami tkankowymi drugą. Zastosuj delikatną trakcję do tkanki otaczającej żyłę szyjną diesla, aby wytworzyć napięcie na ścianie naczynia.

Następnie, używając płytkiego kąta natarcia, ostrożnie włóż igłę do żyły i wsuń końcówkę o trzy do czterech milimetrów w głąb naczynia. Gdy cewnik znajdzie się na swoim miejscu, przymocuj igłę do podciętych gruczołów ślinowych za pomocą kleju chirurgicznego i rozpocznij wlewanie roztworu albuminy. Aby umieścić cewnik objętościowy pod ciśnieniem, najpierw przesuń strzykawkę zawierającą zrównoważony roztwór soli fizjologicznej i cewnik objętościowy ciśnienia obok myszy z końcówką cewnika mniej więcej na tej samej wysokości co serce i wyzeruj odczyt ciśnienia.

Następnie, używając nasączonego solą fizjologiczną małego aplikatora z bawełnianą końcówką, manewruj sercem, aby uwidocznić wierzchołek i użyj igły o rozmiarze 25, aby wykonać nacięcie jak najbliżej środka wierzchołka. Po wyjęciu igły szybko, ale delikatnie wprowadzić cewnik przez nacięcie. Następnie można zmierzyć pętle objętości ciśnienia komorowego.

Po umieszczeniu cewnika zmniejsz znieczulenie, aby oświetlić działanie dipresyjne układu krążenia, które może mieć znieczulenie. Jeśli podczas zabiegu nastąpiła nadmierna utrata krwi, można po prostu zwiększyć objętość podawanej albuminy. Zgodnie z konwencją objętość jest wykreślana na osi X, a ciśnienie na osi y.

Pętle objętości ciśnienia wynikające z wykreślenia ciśnienia w stosunku do objętości powinny przypominać prostokąt, którego pionowe krawędzie reprezentują izowolumiczne zmiany ciśnienia. Dolna pozioma strona reprezentuje wypełnienie komory przez zastawkę mitralną, a górna pozioma strona reprezentuje opróżnianie komory przez zastawkę aortalną. U zdrowej myszy typu dzikiego oczekuje się ciśnienia w lewej komorze od 90 do 110 milimetrów słupa rtęci przy maksymalnej szybkości maksymalnej pochodnej ciśnienia od 8000 do 12000 milimetrów słupa rtęci na sekundę.

Co więcej, jednym z najczęstszych artefaktów pomiarowych, które mogą komplikować analizę danych dotyczących objętości ciśnienia, jest uwięzienie cewnika, które jest widoczne jako skok ciśnienia na końcu skurczu, prawdopodobnie wynikający z bezpośredniego ściskania przetwornika ciśnienia przez mięsień brodawkowaty lub inną dynamiczną strukturę w komorze. Podczas wykonywania tej procedury należy pamiętać o ciągłym monitorowaniu myszy, aby zapewnić wystarczającą głębokość znieczulenia. Po opanowaniu tej techniki można wykonać w ciągu około godziny, w zależności od protokołu zastosowanego po umieszczeniu cewnika.

Po zakończeniu tej procedury można zastosować infuzje związków eksperymentalnych do oceny ich wpływu na czynność serca. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak chirurgicznie umieścić cewnik objętości ciśnienia w lewej komorze myszy i uzyskać wysokiej jakości pętle objętości ciśnienia do analizy serca.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Słowa kluczowe: pętle objętości ciśnienia mysz czynność serca manipulacje genetyczne funkcja skurczowa chirurgia nacięcie tchawica rurka dotchawicza mostek mięsień piersiowy większy mięsień najszerszy grzbietu mięsień międzyżebrowy przestrzeń mnoga

Related Videos

Pomiar ciśnienia krwi u myszy za pomocą zapisu ciśnienia objętościowego, metoda mankietu ogonowego

08:54

Pomiar ciśnienia krwi u myszy za pomocą zapisu ciśnienia objętościowego, metoda mankietu ogonowego

Related Videos

53.1K Views

Pomiar ciśnienia w lewej komorze u myszy w późnym wieku embrionalnym i noworodkowym

08:15

Pomiar ciśnienia w lewej komorze u myszy w późnym wieku embrionalnym i noworodkowym

Related Videos

14.5K Views

Pomiary ciśnienia skurczowego prawej komory w połączeniu z pobieraniem próbek płuc i tkanek immunologicznych u myszy

10:20

Pomiary ciśnienia skurczowego prawej komory w połączeniu z pobieraniem próbek płuc i tkanek immunologicznych u myszy

Related Videos

25.9K Views

Pomiar funkcji oddechowych u myszy za pomocą nieskrępowanej pletyzmografii całego ciała

08:51

Pomiar funkcji oddechowych u myszy za pomocą nieskrępowanej pletyzmografii całego ciała

Related Videos

31.5K Views

Pomiar krzywej ciśnienie-objętość w płucach myszy

09:49

Pomiar krzywej ciśnienie-objętość w płucach myszy

Related Videos

19.4K Views

Cewnikowanie serca u myszy w celu pomiaru zależności objętości ciśnienia: badanie efektu Bowditcha

07:38

Cewnikowanie serca u myszy w celu pomiaru zależności objętości ciśnienia: badanie efektu Bowditcha

Related Videos

18.7K Views

Analiza pętli ciśnienie-objętość serca za pomocą cewników konduktancyjnych u myszy

08:15

Analiza pętli ciśnienie-objętość serca za pomocą cewników konduktancyjnych u myszy

Related Videos

19.9K Views

Dwukomorowa ocena czynności serca i pętli ciśnienie-objętość za pomocą cewnikowania w zamkniętej klatce piersiowej u myszy

08:21

Dwukomorowa ocena czynności serca i pętli ciśnienie-objętość za pomocą cewnikowania w zamkniętej klatce piersiowej u myszy

Related Videos

4.9K Views

Odpowiedź serca na stymulację β-adrenergiczną określona na podstawie analizy pętli ciśnienie-objętość

08:05

Odpowiedź serca na stymulację β-adrenergiczną określona na podstawie analizy pętli ciśnienie-objętość

Related Videos

4K Views

Wielokrotne dożylne dawkowanie bolusa i inwazyjna ocena hemodynamiczna w modelu nadciśnienia tętniczego płucnej myszy wywołanego niedotlenieniem

08:51

Wielokrotne dożylne dawkowanie bolusa i inwazyjna ocena hemodynamiczna w modelu nadciśnienia tętniczego płucnej myszy wywołanego niedotlenieniem

Related Videos

1.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code