Name: Zautomatyzowana zrobotyzowana technika dozowania do prowadzenia powierzchni i biodruku komórek (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-11-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 14 s
Description: Poznaj zautomatyzowaną technikę dozowania komórek w biodruku z wykorzystaniem topograficznych wskazówek powierzchniowych. Ta metoda umożliwia precyzyjną kontrolę zachowania i rozmieszczenia komórek w inżynierii biomedycznej.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Praca prezentowana tutaj jest wspierana przez Singapore National Research Foundation w ramach programu CREATE (NRF-Technion): The Regenerative Medicine Initiative in Cardiac Restoration Therapy Research Program oraz przez Public Sector Funding (PSF) 2012 od Science and Engineering Research Council (SERC) przy Agencji ds. Nauki, Technologii i Badań (A*STAR).

UWAGA: Ten protokół opisuje użycie zrobotyzowanego systemu dozowania wspomaganego zwrotnym ciśnieniem (Rysunek 1A) jako wytrawiania powierzchni (Rysunek 1B) i biodrukarki opartej na wytłaczaniu (Rysunek 1C)10.
1. Modyfikacja powierzchni styropianu
<ol>
	<li>Używaj arkuszy polistyrenu o grubości 1 mm, ponieważ płytki do hodowli tkankowych polistyrenu mają tendencję do wyginania się do góry w środku, rujnując spójność wysokości zarówno trawienia, jak i drukowania. 
	UWAGA: Ponieważ arkusze polistyrenu nie są modyfikowane pod kątem adhezji komórek, przeprowadza się obróbkę plazmową.</li>
	<li>Leczenie plazmą tlenową.
	<ol>
		<li>Najpierw wybierz ciśnienie 2 bar na regulatorze butli tlenowej podłączonej do maszyny plazmowej. Następnie włącz maszynę plazmową i wprowadź następujące warunki do panelu sterowania maszyny: 150 W, 30 sscm tlenu, 10 min (odpowiednio dla mocy, przepływu gazu i czasu).</li>
		<li>Umieść podłoże styropianowe w komorze plazmowej, uszczelnij drzwiczki i naciśnij przycisk start na panelu sterowania. Namoczyć podłoże polistyrenowe poddane plazmie tlenowej w płodowej surowicy bydlęcej i inkubować w temperaturze 37 °C przez 2 godziny przed trzykrotnym myciem 1x soli fizjologicznej buforowanej fosforanami (PBS).</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. Programowanie wzorców wydruku
<ol>
	<li>Użyj programu, aby najpierw wytrawić powierzchnię rysikiem lub skalpelem.
	<ol>
		<li>Używając rysika, włóż igłę tekstylną o średnicy 1,5 mm (od wewnątrz z dużą ostrożnością) do dyszy strzykawki dozującej (5 lub 10 ml), aż zostanie zaklinowana i zabezpieczona. Jeśli używasz skalpela, wybierz skalpel z okrągłą rękojeścią, tak aby można go było zamocować w mechanizmie zaciskowym ramienia drukującego. 
		UWAGA: Rysik wytrawia zakrzywione wzory lepiej niż ostrze skalpela.</li>
		<li>Próbując po raz pierwszy stworzyć układ bioprint, naszkicuj żądany wzór na papierze milimetrowym z ponumerowanymi osiami, aby wygenerować współrzędne X-Y. Następnie wprowadź współrzędne wytrawionego/biodrukowanego wzoru do oprogramowania arkusza kalkulacyjnego (Rysunek 2). 
		UWAGA: "Pożądany wzór" może mieć wiele kształtów, takich jak liniowy, w kształcie litery S lub okrągły. Wybór zależy od wymaganego modelu eksperymentalnego, takiego jak równoległe linie liniowe do różnicowania MSCs do kardiomiocytów, jak pokazano tutaj. Funkcja wykresu punktowego pozwala na wizualizację proponowanego wzoru wykresu.</li>
		<li>Otwórz oprogramowanie do drukowania/dozowania. Wybierz "Program > Dodaj program", a następnie "Edytuj > dodaj punkt", aby skonfigurować program. Eksportuj wartości współrzędnych x i y uzyskane z arkusza kalkulacyjnego do oprogramowania do drukowania/dozowania za pomocą funkcji "Kopiuj i wklej".</li>
		<li>Skalibruj wysokość "z" robota przed każdym uruchomieniem, aby umieścić rysik/dyszę drukującą na powierzchni.
		<ol>
			<li>W oprogramowaniu do drukowania/dozowania wybierz opcję "Robot", kliknij "Zmiana trybu" i włącz opcję "Tryb uczenia". Po wybraniu oprogramowanie włącza funkcję "Jog" robota.</li>
			<li>Aby impulsować, najpierw zainicjuj robota do jego domyślnej pozycji, wybierając następujące polecenia z paska menu: "Robot > Meca Initialize", a następnie wybierz "Robot > Jog". Wprowadź wartości liczbowe (w mm) w "szczelinach X i Y" wymaganych do umieszczenia rysika dokładnie na początku wzoru.</li>
			<li>Następnie wprowadź wartość liczbową (w mm) w "gnieździe Z", aby umieścić rysik lub dyszę drukującą w kontakcie z powierzchnią, ale nie zginać ani nie wgniatać powierzchni. Ten punkt jest oznaczony jako wartość początkowa "Z". 
			UWAGA: Głębokość każdego rowka można łatwo zmieniać za pomocą wysokości Z systemu. Wykazano, że rowki o grubości 40, 80 i 170 μm wrzynają się w powierzchnię arkuszy polistyrenu o grubości 1 mm (rysunek 4 i tabela 1).</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Wybierz instrukcję drukowania dla każdego z punktów współrzędnych, tj. "Początek dozowania linii", aby zdefiniować pierwszy punkt i rozpoczęcie drukowania, "Przejście linii", aby wyznaczyć punkty pośrednie i "Dozowanie na końcu linii", aby zasygnalizować robotowi zakończenie drukowania.</li>
		<li>Przekaż program robotowi, wybierając następujące polecenia z górnego paska menu: "Robot > Wyślij dane C&T".</li>
		<li>Rozpocznij proces trawienia/drukowania, przełączając robota w tryb "Run". Zrób to, wybierając "Robot > Zmiana trybu > Przełącz tryb pracy" z górnego paska menu.</li>
		<li>Rozpocznij procedurę drukowania, naciskając zielony "przycisk start" na konsoli dozownika robota.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. Przygotowanie i drukowanie biotuszu żelatynowego zawierającego komórki
<ol>
	<li>Rozpuścić 2% żelatyny w Minimum Essential Medium Alpha Medium (αMEM) (uzupełnionym 10% FBS i 2% antybiotykiem/antybiotykiem) w temperaturze 60 °C przez 2 godziny, aby przygotować roztwory biotuszu.</li>
	<li>Wstępna hodowla białka czerwonej fluorescencji z ekspresją mezenchymalnych komórek macierzystych (RFP-MSC) do 70% konfluencji w 10-centymetrowych szalkach do hodowli tkankowej przy użyciu αMEM / 10% FBS. Uwolnić przyłączone komórki do zawiesiny, usuwając pożywkę i pokrywając 1x roztworem trypsyny-EDTA przez 5 minut w temperaturze 37 °C.</li>
	<li>Osadzać komórki przez odwirowanie przy 1 000 x g przez 5 minut i usunąć supernatant. Zawiesić osad komórkowy w 0,5 ml 1x PBS i policzyć gęstość komórek za pomocą hemocytometru.</li>
	<li>Po pozostawieniu biotuszu do ostygnięcia do temperatury pokojowej, delikatnie wymieszaj z wystarczającą objętością do zawiesiny RFP-MSC w biotuszu, aby uzyskać końcowe stężenie 5 x 106 komórek ml−1.</li>
	<li>Wlej komórkę zawierającą biotusz do strzykawki drukarskiej z uszczelnioną dyszą. Schłodzić załadowaną strzykawkę do temperatury 4 °C w celu uzyskania lepkości nadającej się do drukowania.</li>
	<li>Umieść załadowaną strzykawkę na zautomatyzowanym zrobotyzowanym systemie dozowania i podłącz przewody ciśnieniowe powietrza. Wyjmij uszczelkę Luer strzykawki i zamocuj dyszę drukującą.</li>
	<li>Wytłaczaj komórkowe biotusze w cienkie linie za pomocą przeciwciśnienia 0,05 MPa, z prędkością zapisu 5 mm/s ze strzykawki o pojemności 10 ml za pomocą igły/dyszy 27 G (zalecanej stożkowej zamiast cylindrycznej) na powierzchnię folii polistyrenowej, postępując zgodnie z zaprogramowanym wzorem osadzania opisanym w kroku 2.1, aby umieścić komórkowy biotusz na wstępnie wytrawionych rowkach.</li>
	<li>Po 1 godzinie inkubacji w temperaturze pokojowej dodaj 10 ml pożywki wzrostowej (uzupełnionej 10% FBS i antybiotykami) i inkubuj komórki przez 24 godziny (aby komórki mogły wyczuć i zareagować na wytrawione cechy) przed obejrzeniem za pomocą odwróconego mikroskopu fluorescencyjnego przy 10-krotnym powiększeniu.</li>
</ol>

<ol><li>Ma, Z., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMa%2C+Z+%22Cell+and+Organ+Printing%22">Cell and Organ Printing</a>. Ringeisen , R. B., Spargo, J. B., Wu, K. P. , Springer. Netherlands. 137-159 (2010).</li>
<li>Kaji, H., Camci-Unal, G., Langer, R., Khademhosseini, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+systems+for+the+generation+of+patterned+co-cultures+for+controlling+cell-cell+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim+Biophys+Acta%22%5BJournal%5D)">Engineering systems for the generation of patterned co-cultures for controlling cell-cell interactions.</a> Biochim Biophys Acta. 1810 (3), 239-250 (2011).</li>
<li>Goubko, C. A., Cao, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patterning+multiple+cell+types+in+co-cultures%3A+A+review%5BTitle%5D)+AND+%22Materials+Science+and+Engineering%3A+C%22%5BJournal%5D)">Patterning multiple cell types in co-cultures: A review.</a> Materials Science and Engineering: C. 29 (6), 1855-1868 (2009).</li>
<li>Pati, F., Jang, J., Lee, J. W., Cho, D. W. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPati%2C+F+%22Essentials+of+3D+Biofabrication+and+Translation%22">Essentials of 3D Biofabrication and Translation</a>. Yoo, J. J. , Academic Press. 123-152 (2015).</li>
<li>Derby, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Printing+and+prototyping+of+tissues+and+scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Printing and prototyping of tissues and scaffolds.</a> Science. 338 (6109), 921-926 (2012).</li>
<li>Malda, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((25th+anniversary+article%3A+Engineering+hydrogels+for+biofabrication%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Mater%22%5BJournal%5D)">25th anniversary article: Engineering hydrogels for biofabrication.</a> Adv Mater. 25 (36), 5011-5028 (2013).</li>
<li>Billiet, T., Vandenhaute, M., Schelfhout, J., Van Vlierberghe, S., Dubruel, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+review+of+trends+and+limitations+in+hydrogel-rapid+prototyping+for+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">A review of trends and limitations in hydrogel-rapid prototyping for tissue engineering.</a> Biomaterials. 33 (26), 6020-6041 (2012).</li>
<li>Skardal, A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSkardal%2C+A+%22Essentials+of+3D+Biofabrication+and+Translation%22">Essentials of 3D Biofabrication and Translation</a>. Yoo, J. J. , Academic Press. 1-17 (2015).</li>
<li>Irvine, S. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Printing+cell-laden+gelatin+constructs+by+free-form+fabrication+and+enzymatic+protein+crosslinking%5BTitle%5D)+AND+%22Biomed+Microdevices%22%5BJournal%5D)">Printing cell-laden gelatin constructs by free-form fabrication and enzymatic protein crosslinking.</a> Biomed Microdevices. 17 (1), 16(2015).</li>
<li>Bhuthalingam, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+3D+printing+method+for+cell+alignment+and+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Bioprinting%22%5BJournal%5D)">A novel 3D printing method for cell alignment and differentiation.</a> International Journal of Bioprinting. 1, 57-65 (2015).</li>
<li>Curtis, A., Wilkinson, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Topographical+control+of+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Topographical control of cells.</a> Biomaterials. 18 (24), 1573-1583 (1997).</li>
<li>Tay, C. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micropatterned+matrix+directs+differentiation+of+human+mesenchymal+stem+cells+towards+myocardial+lineage%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Micropatterned matrix directs differentiation of human mesenchymal stem cells towards myocardial lineage.</a> Exp Cell Res. 316 (7), 1159-1168 (2010).</li>
<li>Tay, C. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bio-inspired+micropatterned+platform+to+steer+stem+cell+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Small%22%5BJournal%5D)">Bio-inspired micropatterned platform to steer stem cell differentiation.</a> Small. 7 (10), 1416-1421 (2011).</li>
<li>Li, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+laser+machining-induced+topographic+pattern+promotes+up-regulation+of+myogenic+markers+in+human+mesenchymal+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomater%22%5BJournal%5D)">Direct laser machining-induced topographic pattern promotes up-regulation of myogenic markers in human mesenchymal stem cells.</a> Acta Biomater. 8 (2), 531-539 (2012).</li>
<li>Kolind, K., Leong, K. W., Besenbacher, F., Foss, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guidance+of+stem+cell+fate+on+2D+patterned+surfaces%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Guidance of stem cell fate on 2D patterned surfaces.</a> Biomaterials. 33 (28), 6626-6633 (2012).</li>
<li>Agrawal, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Smooth+Muscle+Cell+Alignment+and+Phenotype+Control+by+Melt+Spun+Polycaprolactone+Fibers+for+Seeding+of+Tissue+Engineered+Blood+Vessels%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Smooth Muscle Cell Alignment and Phenotype Control by Melt Spun Polycaprolactone Fibers for Seeding of Tissue Engineered Blood Vessels.</a> International Journal of Biomaterials. 2015, (2015).</li>
<li>Chang, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phenotypic+modulation+of+primary+vascular+smooth+muscle+cells+by+short-term+culture+on+micropatterned+substrate%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Phenotypic modulation of primary vascular smooth muscle cells by short-term culture on micropatterned substrate.</a> PLoS One. 9 (2), e88089(2014).</li>
<li>Li, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+cell+alignment+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol+Adv%22%5BJournal%5D)">Engineering cell alignment in vitro.</a> Biotechnol Adv. 32 (2), 347-365 (2014).</li>
<li>Blaeser, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Controlling+Shear+Stress+in+3D+Bioprinting+is+a+Key+Factor+to+Balance+Printing+Resolution+and+Stem+Cell+Integrity%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Healthc+Mater%22%5BJournal%5D)">Controlling Shear Stress in 3D Bioprinting is a Key Factor to Balance Printing Resolution and Stem Cell Integrity.</a> Adv Healthc Mater. 5 (3), 326-333 (2016).</li>
<li>Nery, A. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+mesenchymal+stem+cells%3A+From+immunophenotyping+by+flow+cytometry+to+clinical+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry+Part+A%22%5BJournal%5D)">Human mesenchymal stem cells: From immunophenotyping by flow cytometry to clinical applications.</a> Cytometry Part A. 83A (1), 48-61 (2013).</li>
<li>Guvendiren, M., Lu, H. D., Burdick, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Shear-thinning+hydrogels+for+biomedical+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Soft+Matter%22%5BJournal%5D)">Shear-thinning hydrogels for biomedical applications.</a> Soft Matter. 8 (2), 260-272 (2012).</li>
<li>Markstedt, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+Bioprinting+Human+Chondrocytes+with+Nanocellulose-Alginate+Bioink+for+Cartilage+Tissue+Engineering+Applications%5BTitle%5D)+AND+%22Biomacromolecules%22%5BJournal%5D)">3D Bioprinting Human Chondrocytes with Nanocellulose-Alginate Bioink for Cartilage Tissue Engineering Applications.</a> Biomacromolecules. 16 (5), 1489-1496 (2015).</li>
<li>Kolesky, D. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+bioprinting+of+vascularized%2C+heterogeneous+cell-laden+tissue+constructs%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Mater%22%5BJournal%5D)">3D bioprinting of vascularized, heterogeneous cell-laden tissue constructs.</a> Adv Mater. 26 (19), 3124-3130 (2014).</li>
<li>Merceron, T. K., Murphy, S. V. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMerceron%2C+TK+%22Essentials+of+3D+Biofabrication+and+Translation%22">Essentials of 3D Biofabrication and Translation</a>. Yoo, J. J. , Academic Press. 249-270 (2015).</li>
<li>Carrow, J. K., Kerativitayanan, P., Jaiswal, M. K., Lokhande, G., Gaharwar, A. K. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCarrow%2C+JK+%22Essentials+of+3D+Biofabrication+and+Translation%22">Essentials of 3D Biofabrication and Translation</a>. Yoo, J. J. , Academic Press. 229-248 (2015).</li>
<li>Lee, K. V., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLee%2C+KV+%22Bioprinting+in+Regenerative+Medicine%22">Bioprinting in Regenerative Medicine</a>. Turksen, K. , Springer International Publishing. 33-66 (2015).</li>
<li>Ozbolat, I. T., Hospodiuk, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Current+advances+and+future+perspectives+in+extrusion-based+bioprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Current advances and future perspectives in extrusion-based bioprinting.</a> Biomaterials. 76, 321-343 (2016).</li>
<li>Li, M., Tian, X., Schreyer, D. J., Chen, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+needle+geometry+on+flow+rate+and+cell+damage+in+the+dispensing-based+biofabrication+process%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol+Prog%22%5BJournal%5D)">Effect of needle geometry on flow rate and cell damage in the dispensing-based biofabrication process.</a> Biotechnol Prog. 27 (6), 1777-1784 (2011).</li>
<li>Nikkhah, M., Edalat, F., Manoucheri, S., Khademhosseini, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+microscale+topographies+to+control+the+cell-substrate+interface%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Engineering microscale topographies to control the cell-substrate interface.</a> Biomaterials. 33 (21), 5230-5246 (2012).</li>
<li>Khademhosseini, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+patterning+for+fabrication+of+contractile+cardiac+organoids%5BTitle%5D)+AND+%22Biomed+Microdevices%22%5BJournal%5D)">Microfluidic patterning for fabrication of contractile cardiac organoids.</a> Biomed Microdevices. 9 (2), 149-157 (2007).</li>
<li>Chelli, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+cell+alignment+by+patterning+gradients+of+the+extracellular+matrix+protein+laminin%5BTitle%5D)+AND+%22Interface+Focus%22%5BJournal%5D)">Neural cell alignment by patterning gradients of the extracellular matrix protein laminin.</a> Interface Focus. 4 (1), 20130041(2014).</li>
<li>Aubin, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Directed+3D+cell+alignment+and+elongation+in+microengineered+hydrogels%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Directed 3D cell alignment and elongation in microengineered hydrogels.</a> Biomaterials. 31 (27), 6941-6951 (2010).</li>
<li>Béduer, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+of+adult+human+neural+stem+cells+differentiation+through+surface+micropatterning%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Engineering of adult human neural stem cells differentiation through surface micropatterning.</a> Biomaterials. 33 (2), 504-514 (2012).</li>
<li>Bian, W., Jackman, C. P., Bursac, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Controlling+the+structural+and+functional+anisotropy+of+engineered+cardiac+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Biofabrication%22%5BJournal%5D)">Controlling the structural and functional anisotropy of engineered cardiac tissues.</a> Biofabrication. 6 (2), 024109(2014).</li>
<li>Chen, P. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+of+large+perfusable+macroporous+cell-laden+hydrogel+scaffolds+using+microbial+transglutaminase%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomater%22%5BJournal%5D)">Fabrication of large perfusable macroporous cell-laden hydrogel scaffolds using microbial transglutaminase.</a> Acta Biomater. 10 (2), 912-920 (2014).</li>
<li>Bertassoni, L. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct-write+bioprinting+of+cell-laden+methacrylated+gelatin+hydrogels%5BTitle%5D)+AND+%22Biofabrication%22%5BJournal%5D)">Direct-write bioprinting of cell-laden methacrylated gelatin hydrogels.</a> Biofabrication. 6 (2), 024105(2014).</li>
<li>Zhao, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+patterned+substrates+for+bioartificial+blood+vessels+-+The+effect+of+hydrogels+on+aligned+cells+on+a+biomaterial+surface%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomater%22%5BJournal%5D)">3D patterned substrates for bioartificial blood vessels - The effect of hydrogels on aligned cells on a biomaterial surface.</a> Acta Biomater. 26, 159-168 (2015).</li>
</ol>

Autorzy deklarują, że nie mają konkurencyjnego interesu finansowego.

Krytycznym etapem tej procedury jest faktyczne dostarczenie komórek macierzystych do biodruku, ponieważ proces ten musi umożliwiać sedymentację komórek do cech, drukowanie bez rozprzestrzeniania się / krwawienia biotuszu, dostarczanie komórek bez stresu ścinającego śmierć komórki i nie powodować różnicowania w kierunku niechcianej linii.
Jeśli oczekiwane wyrównanie komórek nie nastąpi, należy ocenić lepkość biotuszu pod kątem jego przydatności do drukowania. Ważne jest, aby biotusz umożliwiał ...

Celowe wzorowanie rozmieszczenia komórek umożliwia tworzenie kultur, które naśladują organizację komórkową in vivo 1. Rzeczywiście, badania nad interakcją między wieloma typami komórek mogą być wspomagane przez organizację ich przestrzennego rozmieszczenia2,3. Większość systemów modelowania opiera się na procedurach modyfikacji powierzchni w celu promowania lub zapobiegania adhezji komórek, a następnie pasywnemu osadzaniu komórek. Bioprinting zapewnia przestrzenną i czasową kontrolę nad rozmieszczeniem komórek1. Oprócz tych funkcji, bioprinting został opisany jako technicznie prosta, szybka i opłacalna metoda generowania geometrycznie złożonych rusztowań4. Wykorzystuje oprogramowanie do projektowania komputerowego i umożliwia wprowadzenie komórek do procesu produkcyjnego4.
Systemy biodruku zostały skategoryzowane na podstawie ich zasad działania jako oparte na laserze, na bazie atramentu lub na bazie ekstruzji4. Bioprinting ekstruzyjny został opisany jako najbardziej obiecujący, ponieważ pozwala na wytwarzanie zorganizowanych konstruktów o klinicznie istotnych rozmiarach w realistycznych ramach czasowych4-6. Odbywa się to poprzez mechaniczne lub wspomagane przeciwciśnieniowo wytłaczanie biotuszu hydrożelowego zawierającego komórkę. W przedstawionej tu metodzie zastosowano przeciwciśnienie. Jak wspomniano, komórki są dostarczane w biotuszu cytokompatybilnym. Taki biotusz powinien wspomagać dostarczanie komórek bez wytwarzania szkodliwych naprężeń ścinających i mieć wystarczającą lepkość, aby zachować integralność wydrukowanego śladu, bez zapadania się lub rozprzestrzeniania (określanego jako "wyciek atramentu")7-10.
Wiadomo, że interakcja komórek z przylegającą do nich powierzchnią wpływa na zachowanie komórek. Topografia powierzchni może kontrolować kształt komórki, orientację11, a nawet fenotyp. W szczególności wykazano, że wytwarzanie rowków i kanałów indukuje rozciągniętą, wydłużoną morfologię na wielu typach komórek. Stwierdzono, że przyjęcie tej morfologii wpływa na fenotyp komórek multipotencjalnych i pluripotencjalnych. Na przykład, po ustawieniu na rowkach, mezenchymalne komórki macierzyste (MSC) wykazują dowody na różnicowanie w kierunku kardiomiocytów12,13, a komórki mięśni gładkich naczyń przyjmują fenotyp kurczliwy w stosunku do syntetycznego10,14-17.
Kanały lub rowki wyrównujące komórki mogą być generowane na powierzchni polimerowej za pomocą wielu metod, na przykład głęboko reaktywnego trawienia jonowego, litografii wiązką elektronów, bezpośredniego druku laserowego, lasera femtosekundowego, fotolitografii i suchego trawienia plazmowego18. Podejścia te są często czasochłonne, wymagają złożonej aparatury i mogą być ograniczające pod względem kształtu generowanego wzoru. Ponadto nie synchronizują wzorcowania z bioprintingiem i nie pozwalają na natychmiastową komórkowość. Skoordynowany ruch zautomatyzowanego systemu dozowania może podążać za złożonymi wzorcami osadzania roztworów. Tutaj pokazujemy, w jaki sposób można wykorzystać ruch kontrolowany w mikroskali do tworzenia kanałów do orientacji komórek. Zaostrzony rysik lub skalpel jest przymocowany do głowicy drukującej zamiast strzykawki do wytłaczania, a sprzęt może następnie wytrawić powierzchnię polimeru pod kierunkiem oprogramowania do kreślenia. Metoda oferuje wszechstronność w projektowaniu wzorów i ma zastosowanie do materiałów polimerowych powszechnie stosowanych w bioinżynierii, takich jak polistyren, PTFE i polikaprolakton. Kolejnym krokiem do wytrawiania jest biodrukowanie komórek bezpośrednio na porysowanych rowkach. Zastosowany tutaj biotusz żelatynowy był w stanie zarówno utrzymać ślad, jak i umożliwić osadzonym komórkom wyczucie wytrawionych cech. Wykazano, że mezenchymalne komórki macierzyste biodrukowane na wytrawionych rowkach wydłużają się wzdłuż nich w wyraźnych liniach.

<table><tbody><tr><td><silny>Sprzęt< / silny></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zrobotyzowany system dozowania</td><td>Janome</td><td>2300N</td><td></td></tr><tr><td>Maszyna plazmowa</td><td>Femto Science</td><td>Covance</td><td></td></tr><tr><td>Mikroskop</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>USB Mikroskop optyczny</td><td>Olympus</td><td>IX71</td><td></td></tr><tr><td><silny>Nazwa</silny></td><td><silny> Firma</td><td>Numer katalogowy</td><td>Komentarze</td></tr><tr><td>Software</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Arkusz kalkulacyjny</td><td>Excel</td> Oprogramowanie do drukowania w <td>programie Excel</td><td></td></tr><tr><td>Oprogramowanie do</td> obrazowania <td>punktów C-Oprogramowanie</td><td></td>do obrazowania <td>Janome</td></tr><tr><td></td><td>JR National Institutes of Health (NIH)</td><td>ImageJ</td><td></td></tr><tr><td>Nazwa</td><td>Firma</td><td>Numer katalogowy</td><td>Komentarze</td></tr><tr><td>Sprzęt</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rysik (ostrze)</td><td>OLFA</td><td>AK-5</td><td></td></tr><tr><td>strzykawka drukarska 5 ml</td><td>San-ei Tech</td><td>SH10LL-B</td><td></td></tr><tr><td>30 G igła drukarska</td><td>San-ei Tech</td><td>SH30-0,25-B</td><td></td></tr><tr>Arkusze <td></td><td>styropianu 1 mm</td><td>Zakupione lokalnie</td><td></td></tr><tr><td>Surowica bydlęca</td><td>płodu Invitrogen&nbsp;</td><td>10270-098</td><td></td></tr><tr><td>Sól fizjologiczna buforowana fosforanami</td><td>Invitrogen</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Żelatyna ze skóry wieprzowiny, Moc żelu 300, Typ A</td><td>Sigma Aldrich</td><td>9000-70-8</td><td></td></tr><tr><td>&alpha; MEM</td><td>Invitrogen</td><td>41061-029</td><td></td></tr><tr><td>Antibiotc przeciwgrzybicze</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A5955-100ML</td><td></td></tr><tr><td>Mezenchymalne komórki macierzyste z czerwonego fluorescencyjnego białka (RFP-MSC)</td> <td>Cyagen Biosciences Incorporation</td><td>RASMX-01201</td><td></td></tr></tbody></table>

zautomatyzowana zrobotyzowana technika dozowania do prowadzenia powierzchni i biodruku komórek

Automated Robotic Dispensing Technique for Surface Guidance and Bioprinting of Cells

Ten manuskrypt opisuje wprowadzenie funkcji kierowania komórkami, a następnie bezpośrednie dostarczanie komórek do tych cech w hydrożelowym biotuszu za pomocą zautomatyzowanego zrobotyzowanego systemu dozowania. Konkretny biotusz został wybrany, ponieważ pozwala komórkom osadzać się w kierunku i wyczuwać cechy. System dozowania biodrukuje żywotne komórki w biotuszach hydrożelowych za pomocą głowicy drukującej wspomaganej ciśnieniem zwrotnym. Jednak zastępując głowicę drukującą zaostrzonym rysikiem lub skalpelem, system dozowania może być również wykorzystany do tworzenia wskazówek topograficznych poprzez wytrawianie powierzchni. Ruch trzpienia pomiarowego można zaprogramować w krokach co 10 μm w kierunkach X, Y i Z. Wzorzyste rowki były w stanie zorientować mezenchymalne komórki macierzyste, wpływając na ich przyjęcie wydłużonej morfologii zgodnie z kierunkiem rowków. Wzór można zaprojektować za pomocą oprogramowania do kreślenia w liniach prostych, koncentrycznych okręgach i falach sinusoidalnych. W kolejnej procedurze fibroblasty i mezenchymalne komórki macierzyste zawieszono w 2% żelatynowym biotuszu w celu biodruku w głowicy drukującej z wytłaczaniem napędzanym ciśnieniem wstecznym. Komórka zawierająca biotusz została następnie wydrukowana przy użyciu tych samych zaprogramowanych współrzędnych, które zostały użyte do wytrawienia. Biodrukowane komórki były w stanie wyczuć i zareagować na wytrawione cechy, o czym świadczy ich wydłużona orientacja wzdłuż kierunku wytrawionych rowków.

Reprezentatywne wyniki wykazują, że robotyczny system dozowania wspomagany ciśnieniem wstecznym może być wykorzystywany jako biodrukarka oparta na ekstruzji do wykonywania zarówno trawienia powierzchni, jak i drukowania bioatramentu (Rycina 1 A). Może on służyć do tworzenia wytrawionych rowków w powierzchniach polimerowych, a następnie do drukowania bioatramentu zawierającego komórki bezpośrednio w tych strukturach (Rycina 1 B i C).
<p class="jove_con...

Ten protokół opisuje metodologię biodruku przy użyciu zautomatyzowanego zrobotyzowanego systemu deponowania, który łączy wytrawione wskazówki topograficzne z precyzyjnym osadzaniem biotuszu z hydrożelu na komórce. Wydrukowane komórki są dostarczane bezpośrednio do wytrawionych elementów i są w stanie je wyczuć i zorientować się w sytuacji.

Zautomatyzowana zrobotyzowana technika dozowania do prowadzenia powierzchni i biodruku komórek

This manuscript describes the introduction of cell guidance features followed by the direct delivery of cells to these features in a hydrogel bioink using ...

Ogólnym celem tej zautomatyzowanej robotycznej techniki dozowania jest stworzenie powierzchni do topograficznego kierowania komórkami, a następnie dostarczenie komórek do tych struktur zgodnie z zaprogramowanym wzorem, co pozwala na kontrolę nad zachowaniem i rozmieszczeniem komórek. Metoda ta może pomóc w udzieleniu odpowiedzi na kluczowe pytania z dziedziny inżynierii biomedycznej, takie jak wpływ topografii powierzchni na zachowanie komórek, zarówno w monokulturze, jak i w kokulturze. Główną zaletą tej techniki jest to, że programowanie i drukowanie wzorów kierujących komórkami jest mniej czasochłonne w porównaniu z bardziej ugruntowanymi metodami.Obejmuje ona również etap dostarczania komórek w celu kontrolowanego dozowania. Pomysł na tę metodę pojawił się, gdy zdaliśmy sobie sprawę, że wzory komórek 2D osadzone w hydrożelach mogłyby odnieść korzyść z prowadzenia powierzchniowego. W związku z tym opracowaliśmy tę technikę drukowania hydrożeli w sposób odpowiadający cechom powierzchni.Niniejszy protokół opisuje zastosowanie zrobotyzowanego systemu dozującego z wspomaganiem ciśnieniem wstecznym jako biodrukarki do trawienia powierzchni i ekstruzji. Aby przygotować powierzchnię polistyrenową do trawienia i drukowania, należy wybrać arkusz polistyrenu o grubości 1 mm. Grubsze arkusze będą bardziej wyginać się.Następnie poddaj arkusz działaniu plazmy tlenowej. Ustaw regulator gazu tlenowego na dwie bary. Następnie włącz urządzenie do plazmy oraz pompę próżniową.Następnie zaprogramuj urządzenie na 150 watów oraz przepływ tlenu wynoszący 30 standardowych centymetrów sześciennych na minutę i poddaj arkusz tym warunkom przez 10 minut. Po tym czasie odessaj powietrze z komory, zamknij szczelnie drzwi i uruchom cykl. Następnie zanurz potraktowany arkusz w czystej płodowej surowicy bydlęcej i inkubuj go w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez dwie godziny przy ciągłym mieszaniu.Po traktowaniu surowicą wypłucz arkusz trzykrotnie w 1X PBS i wysterylizuj go. Po ostatnim płukaniu pozostaw arkusz w piecu w temperaturze 37°C do wyschnięcia na noc, przez około 12 godzin. W pierwszej kolejności przygotuj rylec drukujący do trawienia.Z dużą ostrożnością włóż igłę tekstylną o średnicy 1,5 mm do dyszy strzykawki dozującej, aż zostanie ona ciasno osadzona i zabezpieczona. Przy pierwszej próbie stworzenia układu biodrukowanego, naszkicuj pożądany wzór na papierze milimetrowym z ponumerowanymi osiami, aby wyznaczyć współrzędne x, y. Następnie wprowadź współrzędne wzoru do arkusza kalkulacyjnego.Następnie w oprogramowaniu do drukowania wybierz Program, Dodaj program, a następnie Edytuj, Dodaj punkt, aby utworzyć program. Następnie skopiuj wartości współrzędnych x i y z arkusza kalkulacyjnego do oprogramowania do dozowania w druku. Przed każdym uruchomieniem skalibruj wysokość z robota, aby ustawić pozycję styku rylca.Najpierw wybierz opcję Robot. Następnie kliknij Changing Mode i aktywuj opcję Teaching Mode. Umożliwi to korzystanie z funkcji JOG robota.Aby przesunąć robota w trybie JOG, najpierw ustaw go w pozycji domyślnej, wybierając Robot, Meca Initialize. Następnie wybierz Robot, JOG. W kolejnym kroku, w polach x i y, wprowadź odległość w milimetrach niezbędną do precyzyjnego umieszczenia rylca w punkcie początkowym wzoru.Następnie, również w milimetrach, wprowadź wartość numeryczną w polu z, aby umieścić rylec lub dyszę w kontakcie z powierzchnią, nie powodując jej ugięcia ani wgniecenia. Jest to określone jako wartość początkowa z. Głębokość każdego rowka można zmieniać za pomocą wysokości z.Na przykład nacięte rowki mogą mieć głębokość 40, 80 lub 170 mikronów. Wymaga to koncentracji i uważnej obserwacji, aby znaleźć punkt styku, w którym nie występuje ugięcie rylca ani zauważalne wgniecenie powierzchni. Aby zapewnić sukces, zalecamy przygotowanie kilku arkuszy i uruchomienie programu przy różnych wysokościach z, aby znaleźć idealną pozycję startową.Kolejnym krokiem jest zdefiniowanie instrukcji drukowania dla każdego z punktów współrzędnych. Należy użyć funkcji Start of Line Dispense, aby zdefiniować pierwszy punkt i rozpocząć drukowanie. Do wyznaczenia punktów pośrednich należy użyć funkcji Line Passing, a na koniec funkcji End of Line Dispense, aby zasygnalizować robotowi zakończenie procesu drukowania.Aby przesłać program do robota, wybierz Robot, Send C&T Data. Następnie uruchom proces, wybierając Robot, Changing Mode, Switch Run Mode i zmieniając ustawienie na Run. Na koniec rozpocznij drukowanie.Aby przygotować biotusz, rozpuścić 2% żelatyny w pożywce Alpha MEM uzupełnionej o 10% FBS i 2% antybiotyk-antymykotyk. Pozostawić pożywkę w temperaturze 60°C przez dwie godziny, aby żelatyna mogła się w niej rozpuścić. Hodować komórki do biotuszu do osiągnięcia 70% konfluencji w szalkach 10-centymetrowych.Można wykorzystać dowolne komórki reagujące na cechy kierowania powierzchniowego, które powinny być oznakowane markerem fluorescencyjnym, aby były widoczne podczas procesu zatapiania. Należy uwolnić przytwierdzone komórki do zawiesiny poprzez usunięcie medium, przemycie komórek roztworem PBS i inkubację komórek z 1X roztworem Trypsyny-EDTA przez pięć minut w temperaturze 37 °C. Po zneutralizowaniu Trypsyny medium, należy zebrać komórki w zawiesinie i odwirować je w celu uzyskania osadu przy 1 000 g przez pięć minut.Odwirować nadsącz i resuspenderować komórki w 0,5 mililitrów medium. Po zmierzeniu gęstości komórek, wymieszać zawiesinę z ochłodzonym roztworem bioatramentu, aby uzyskać roztwór zawierający pięć milionów komórek na milimetr. Następnie przelać bioatrament z komórkami do przygotowanej strzykawki drukarskiej zamkniętej za pomocą korka typu luer.Schłodzić napełnioną strzykawkę do temperatury 4 °C, aby uzyskać odpowiednią do druku lepkość. Następnie wyjąć napełnioną i schłodzoną strzykawkę, zdjąć z niej nasadkę i zamocować dyszę drukującą. Następnie umieścić napełnioną strzykawkę w systemie dozującym i podłączyć ją do linii ciśnienia powietrza.Aby wydrukować bioatrament zgodnie z wcześniej zaprojektowanym wzorem, krawędzie i linie muszą być wyraźne. Precyzyjny druk uzyskuje się poprzez optymalizację ciśnienia wstecznego dozownika oraz rozmiaru igły dyszy drukującej. Dla strzykawki o pojemności 10 milliliter z igłą stożkową o rozmiarze 34-gauge należy ustawić ciśnienie wsteczne dozownika na 0.05 megapascals.Następnie w oprogramowaniu ustaw prędkość drukowania na 5 mm/s na powierzchni folii polistyrenowej. Teraz, zgodnie z zaprogramowanym wzorem, nanieś biotusze z komórkami do wcześniej wytrawionych rowków. Po naniesieniu komórek inkubuj arkusz przez 20 minut w temperaturze pokojowej.Następnie przykryć wydrukowane rusztowanie komórkowe odpowiednią pożywką wzrostową i inkubować komórki przez 24 godziny, aby umożliwić ich przyleganie przed dalszymi eksperymentami. Komórki macierzyste wysiane metodą biodruku w bioatramencie ostatecznie osiadły na powierzchni, a następnie wykryły i wydłużyły się wzdłuż kierunku dyskretnie wytrawionych linii. Komórki wysiane w pożywce hodowlanej bez zastosowania biodruku również ułożyły się w kierunku struktur.Jednakże pokrywały one całą powierzchnię, w związku z czym bioatrament ograniczył komórki do wydrukowanego śladu. Po wysianiu na arkusze bez wytrawionych struktur, komórki nie wykazywały orientacji ani wyrównania. Po obejrzeniu tego filmu powinni Państwo posiadać dokładną wiedzę na temat tego, jak precyzyjnie wytrawić rowki na arkuszu polistyrenowym, a następnie precyzyjnie biodrukować komórki w tych rowkach.Po opanowaniu tej techniki można ją przeprowadzić w około dwie do trzech godzin. Jest ona bardzo użyteczna dla badaczy w dziedzinie bioinżynierii do badania oddziaływań na powierzchni komórek w modelach, w których wymagana jest anizotropia i określone rozmieszczenie komórek. Należy pamiętać, że bioatrament zawiera żywe komórki, dlatego podczas drukowania arkuszy niezwykle ważne jest stosowanie technik sterylnych.

automated-robotic-dispensing-technique-for-surface-guidance

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bioinżynieria

Ta technologia druku mikroprzepływowego 3D drukuje tablice komórek na zanurzonych powierzchniach.  Opisujemy, w jaki sposób układy komórek są dostarczane mikroprzepływowo w komórkach przepływowych 3D na zanurzone powierzchnie.  Drukując na zanurzonych powierzchniach, stworzono mikromacierze komórkowe, które umożliwiają badania przesiewowe leków i ocenę cytotoksyczności w wielu obszarach.

Zanurzone drukowanie komórek na zmodyfikowanej powierzchni za pomocą mikroskopu z ciągłym przepływem

Przedstawiono protokół do zrobotyzowanego drukowania sferoid komórek rakowych na wysokoprzepustowej 96-dołkowej płytce przy użyciu wodnego systemu dwufazowego.

Zrobotyzowana produkcja sferoid komórek rakowych z wodnym dwufazowym systemem do testowania leków

Tutaj prezentujemy protokół wytwarzania swobodnie zawieszonych, mikronowych/submikronowych włókien polimerowych i "pajęczynowych" struktur generowanych przez automatyczną procedurę bezpośredniego zapisu za pomocą 3-osiowego systemu dozowania.

Zalecany bezpośredni zapis 3D zawieszonych struktur włókien w skali mikronowej/submikronowej za pomocą zrobotyzowanego systemu dozowania

A kartezjańska biodrukarka została zaprojektowana i wyprodukowana, aby umożliwić osadzanie wielu materiałów w precyzyjnych, powtarzalnych geometriach, jednocześnie umożliwiając kontrolę czynników środowiskowych. Korzystając z trójwymiarowej biodrukarki, można drukować i łatwo odtwarzać złożone i żywotne konstrukcje.

Żywotność biodrukowanych konstruktów komórkowych przy użyciu drukarki kartezjańskiej z trzema dozownikami

Ten protokół opisuje biodrukowanie 3D tkanki serca bez użycia biomaterials. 3D biodrukowane plastry serca wykazują mechaniczną integrację sferoid składowych i są bardzo obiecujące w regeneracji tkanki serca oraz jako modele 3D chorób serca.

Tworzenie tkanki serca wykazującej mechaniczną integrację sferoid za pomocą biodruku 3D

Dostarczamy uogólniony protokół oparty na strategii mikroprzepływowego biodruku do inżynierii mikrowłóknistego łożyska naczyniowego, gdzie wtórny typ komórek może być dalej umieszczany w przestrzeni śródmiąższowej tej mikrofibrowej struktury w celu wytworzenia unaczynionych tkanek i organoidów.

Bioprinting mikroprzepływowy do inżynierii unaczynionych tkanek i organoidów

Analogi chrząstki i skóry zostały wydrukowane biodrukiem za pomocą biotuszu na bazie nanocelulozy i alginianu. Biotusze zostały poddane celaryzacji przed drukowaniem za pomocą jednostopniowej pasywnej jednostki mieszającej. Wykazano, że konstrukty są jednolicie ukomórkowane, mają wysoką żywotność i wykazują korzystne markery różnicowania.

Bioprinting analogów chrząstki i tkanki skórnej z wykorzystaniem nowatorskiej techniki pasywnego mieszania do precelularyzacji biotuszu

Protokół opisuje wysokoprzepustowe generowanie sferoidów do biodruku przy użyciu wieloparametrycznej analizy ich natlenienia i śmierci komórki pod standardowym mikroskopem fluorescencyjnym. Podejście to można zastosować do kontrolowania żywotności sferoid i przeprowadzania standaryzacji, co jest ważne w modelowaniu tkanki 3D, mikrośrodowiska guza i udanej biofabrykacji (mikro)tkanek.

Przystępna cenowo biofabrykacja sferoid wielokomórkowych wspomagana mikroskopią tlenową

Tutaj opisujemy produkcję na dużą skalę sferoidów zrębu/komórek macierzystych (ASC) pochodzących z tkanki tłuszczowej przy użyciu automatycznego systemu pipetowania do zasiewania zawiesiny komórkowej, zapewniając w ten sposób jednorodność wielkości i kształtu sferoidy. Te sferoidy ASC mogą być używane jako elementy budulcowe dla podejść do biodruku 3D.

Wielkoskalowa, zautomatyzowana produkcja sferoid komórek macierzystych pochodzących z tkanki tłuszczowej do biodruku 3D

Przetwarzanie ścinaniem podczas tworzenia hydrożelu powoduje produkcję zawiesin mikrożelowych, które są cienkie jak ścinanie, ale szybko się restrukturyzują po usunięciu sił ścinających. Materiały te zostały wykorzystane jako matryca nośna do biodruku złożonych, obciążonych komórkami struktur. W tym miejscu opisano metody stosowane do produkcji łoża nośnego oraz kompatybilne biotusze.

Płynne żele agarozowe utworzone przez obróbkę ścinającą podczas żelowania do zawieszonego biodruku 3D

Rozpuszczalne ekstrakty z błony podstawnej są najczęściej stosowanymi matrycami biologicznymi w badaniach nad rakiem, ale ich skomplikowane zachowanie reologiczne utrudnia ich biodrukowanie za pomocą dostępnych na rynku systemów biodruku. W pracy przedstawiono zindywidualizowaną strategię biodruku w celu uzyskania czystych konstruktów matrycowych o dobrej wierności kształtu zarówno w jednej, jak i wielu warstwach.

Projekt i walidacja biodrukarki do wytłaczania wolumetrycznego do biodruku rozpuszczalnego ekstraktu z błony podstawnej do badań translacyjnych

Poznaj zautomatyzowaną technikę dozowania komórek w biodruku z wykorzystaniem topograficznych wskazówek powierzchniowych. Ta metoda umożliwia precyzyjną kontrolę zachowania i rozmieszczenia komórek w inżynierii biomedycznej.

Zautomatyzowana zrobotyzowana technika dozowania do prowadzenia powierzchni i biodruku komórek

Przeglądaj więcej filmów