-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Chirurgia zastawkowa, cewnikowanie prawego serca i morfometria naczyniowa w modelu szczurzym dla ...
Chirurgia zastawkowa, cewnikowanie prawego serca i morfometria naczyniowa w modelu szczurzym dla ...
JoVE Journal
Medicine
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Medicine
Shunt Surgery, Right Heart Catheterization, and Vascular Morphometry in a Rat Model for Flow-induced Pulmonary Arterial Hypertension

Chirurgia zastawkowa, cewnikowanie prawego serca i morfometria naczyniowa w modelu szczurzym dla tętniczego nadciśnienia płucnego wywołanego przepływem

Full Text
17,459 Views
09:23 min
February 11, 2017

DOI: 10.3791/55065-v

Diederik E. van der Feen1, Michel Weij2, Annemieke Smit-van Oosten2, Lysanne M. Jorna1, Quint A.J. Hagdorn1, Beatrijs Bartelds1, Rolf M.F. Berger1

1Center for Congenital Heart Diseases, Department of Pediatric Cardiology, Beatrix Children's Hospital,University Medical Center Groningen, University of Groningen, 2Research and Development Facility,University Medical Center Groningen, University of Groningen

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Ten protokół opisuje procedurę chirurgiczną mającą na celu stworzenie modelu tętniczego nadciśnienia płucnego wywołanego przepływem (PAH) u szczurów oraz procedury analizy głównych hemodynamicznych i histologicznych punktów końcowych w tym modelu.

Ogólnym celem tych procedur jest stworzenie modelu tętniczego nadciśnienia płucnego wywołanego przepływem u szczurów oraz analiza jego głównych hemodynamicznych i histologicznych punktów końcowych za pomocą cewnikowania prawego serca i morfometrii naczyń. Przedstawiamy stworzenie szczurzego modelu nadciśnienia płucnego związanego z przepływem, który charakteryzuje się nową przebudową naczyń typu intymnego, podobną do ludzkiego tętniczego nadciśnienia płucnego, i która jest indukowana przez klinicznie dobrze rozpoznany czynnik wyzwalający, a mianowicie zwiększony przepływ krwi w płucach. Cechy te przyczynią się do lepszego przełożenia wyników uzyskanych w tym modelu na chorobę człowieka.

Przedstawiono również standaryzowane metody oceny hemodynamicznej i charakterystyki histopatologii z wykorzystaniem morfometrii ilościowej. Implikacje tych technik rozciągają się w kierunku odkrycia i oceny nowych strategii leczenia i pozwalają na ocenę specyficznego wpływu na hemodynamikę płuc i morfologię naczyń. Procedury zademonstrują Annemieke Smit-Van Oosten i Michel Weij, mikrochirurdzy z tego laboratorium.

Przed rozpoczęciem zabiegu należy wyszorować skórę znieczulonego szczura sześciobaczkiem chlorkowym w celu dezynfekcji i wstrzyknąć podskórnie buprenorfinę w celu znieczulenia pooperacyjnego. Następnie użyj nożyczek, aby wykonać nacięcie w linii środkowej wzdłuż brzucha, zaczynając jeden centymetr poniżej przepony, rozciągając się tuż nad genitaliami. Przenieś jelita na sterylną gazę zwilżoną 0,9% solą fizjologiczną na lewą stronę zwierzęcia i przykryj narząd bardziej mokrą, sterylną gazą.

Użyj nowych wacików, aby oddzielić błony łączące aortę brzuszną i żyłę główną poniżej otaczających tkanek. Pod mikroskopem preparacyjnym użyj kleszczyków odłamkowych, aby usunąć okołonaczyniowy tłuszcz aortalny tuż nad rozwidleniem po prawej stronie aorty, w którą zostanie wprowadzona igła. Następnie oddziel aortę i żyłę główną od dwóch milimetrów powyżej miejsca, miejsca wprowadzenia igły, aby stworzyć miejsce na zacisk rzutnika.

Teraz umieść luźny szew 5-O wokół aorty i umieść zacisk Kochera na szwie, aby wytworzyć napięcie na ligaturze powyżej nacięcia. Umieść zacisk rzutnika tuż nad szwem i użyj nowej zamiany, aby ścisnąć żyłę główną tak dystalnie, jak to możliwe, aby zablokować przepływ. Następnie zegnij igłę o rozmiarze 18 do kąta 45 stopni ze skosem skierowanym na zewnątrz i trzymając igłę pod kątem 90 stopni względem zwierzęcia, włóż końcówkę igły do aorty tuż nad rozwidleniem ze skosem skierowanym w lewo.

Wypreparuj błony otaczające aortę i żyłę główną na tyle, aby zapewnić dobrą widoczność obszaru wprowadzania zastawki, ponieważ nadmierne rozwarstwienie spowoduje nieszczelność zastawki. Manipuluj końcówką igły w lewo i włóż igłę do żyły głównej, aż będzie można ją zaobserwować w naczyniu. Aby zapobiec zakrzepicy, użyj nowego bawełnianego wacika, aby wypchnąć pozostałą krew z aorty przez miejsce wkłucia i użyj sterylnej gazy, aby wysuszyć obszar wokół zastawki.

Usunąć igłę i natychmiast nałożyć kroplę kleju tkankowego na miejsce nakłucia. Następnie zdejmij zacisk z aorty i ręcznie zwolnij więzadło na aorcie promixal do zastawki. Żyła główna dystalna do zastawki powinna stać się jaskrawoczerwona i powodować turbulencje w miejscu zastawki.

Po zweryfikowaniu zastawki należy przywrócić jelita do jamy brzusznej i użyć wchłanialnych szwów 4-0, aby zamknąć warstwy mięśni i skóry. Następnie przewietrz zwierzę 100% tlenem w celu odzyskania znieczulenia. W celu cewnikowania prawego serca zdezynfekuj szyję sześciordzeniem chlorkowym i użyj ostrza skalpela numer 10, aby wykonać 1,5-centymetrowe nacięcie po prawej brzusznej stronie szyi od prawego obojczyka do kości żuchwy.

Pod mikroskopem preparacyjnym użyj nożyczek, aby rozprowadzić tkankę, a następnie użyj pęsety, aby delikatnie rozsunąć tkankę, aż pojawi się żyła szyjna. Wypreparuj błony wokół żyły szyjnej za pomocą kleszczy odłamkowych. Następnie umieść luźny szew 5-O wokół naczynia i przyklej ligaturę do maski wentylacyjnej, aby zwiększyć napięcie żyły.

Za miejscem wprowadzenia umieść luźną ligaturę wokół naczynia. Następnie za pomocą uchwytów kleszczy lekko zgnij końcówkę igły o rozmiarze 20 ze skosem skierowanym do wewnątrz i wprowadź końcówkę igły do żyły. Szybko umieść kaniulę zawierającą cewnik w naczyniu i wyjmij igłę, zamykając dolną ligaturę wokół kaniuli, aby zabezpieczyć kaniulę na miejscu.

Teraz przeprowadź kaniulę i cewnik do żyły szyjnej, manewrując kaniulą pod obojczykiem, aby wejść do prawego przedsionka. Skieruj końcówkę kaniuli w stronę serca, aby wejść do prawej komory. Na monitorze przyłóżkowym powinna pojawić się krzywa ciśnienia w prawej komorze łóżka.

Gdy krzywa ciśnienia w prawej komorze jest stała, zapisz skurczowe i rozkurczowe ciśnienie w prawej komorze i manipuluj końcówką kaniuli w lewo i do góry. Przesuń cewnik w obrębie kaniuli, a następnie wsuń cewnik do głównej tętnicy płucnej. Gdy krzywa ciśnienia w tętnicy płucnej jest stała, zapisz skurczowe, rozkurczowe i średnie ciśnienie w tętnicy płucnej.

Następnie przesuwaj cewnik w kaniuli, aż kulka na końcu cewnika zaklinuje się w tętnicy płucnej. Spadek krzywej ciśnienia należy obserwować na monitorze przyłóżkowym. Gdy krzywa ciśnienia klina jest stała, zapisz ciśnienie skurczowe, rozkurczowe i średnie ciśnienie klinowe.

Następnie powoli odciągnij cewnik i kierując się krzywymi na monitorze przyłóżkowym, zapisz odpowiednie wartości ciśnienia PA i RV. Gdy cewnik dotrze do prawej komory, lekko pociągnij kaniulę i cewnik do tyłu i zmierz średnie ciśnienie w prawym przedsionku. W tym reprezentatywnym eksperymencie, 28 dni po podaniu MCT i zwiększonym przepływie krwi w płucach, obserwuje się średni wzrost skurczowej prawej komory, skurczowej tętnicy płucnej i średniego ciśnienia w tętnicy płucnej.

Stosunek masy prawej komory do lewej komory i przegrody znacznie wzrasta od 14 dnia po leczeniu do etapu niewydolności prawej komory, co wskazuje na przerost prawej komory. Stosunek mokrej do suchej wątroby jest również znacznie zwiększony na etapie niewydolności prawej komory, co wskazuje na obrzęk wątroby, a także zastoinową niewydolność prawej komory. Umięśnienie naczyń międzygrobikowych zwiększa się stopniowo podczas progresji nadciśnienia tętniczego w tętnicy płucnej, przy czym prawie połowa naczyń wykazuje całkowite media mięśniowe do 14 dnia po leczeniu w prawie wszystkich tętniczkach umięśnionych w końcowej fazie choroby.

Co więcej, zmiany w obrębie błony środkowej są po raz pierwszy obserwowane w 21 dniu, przy czym około 65% wszystkich tętniczek wykazuje warstwę neo-wewnętrzną pod koniec progresji choroby. Powoduje to postępującą niedrożność naczyń krwionośnych, w której w końcowej fazie choroby dochodzi do zamknięcia do 60% światła. Po opanowaniu techniki te można ukończyć w 20 minut na technikę.

Po tej procedurze można wykonać inne metody, takie jak echokardiografia lub pętla objętości ciśnienia, aby odpowiedzieć na dodatkowe pytania dotyczące funkcji prawej komory. Po opracowaniu technika ta toruje drogę naukowcom zajmującym się tętniczym nadciśnieniem płucnym do zbadania wpływu zwiększonego przepływu krwi na układ naczyniowy płuc. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak stworzyć model tętniczego nadciśnienia płucnego wywołanego przepływem u szczurów i jak analizować jego główne hemodynamiczne i histologiczne punkty końcowe

.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Słowa kluczowe: Chirurgia zastawkowa Cewnikowanie prawego serca Morfometria naczyniowa Model szczura Tętnicze nadciśnienie płucne wywołane przepływem Nadciśnienie płucne Wewnętrzna przebudowa naczyń Przepływ krwi w płucach Ocena hemodynamiczna Histopatologia Morfometria ilościowa Strategie leczenia Hemodynamika płuc Morfologia naczyń Mikrochirurgia Znieczulenie Buprenorfina Nacięcie w linii środkowej Aorta brzuszna Żyła główna dolna Okołonaczyniowa tkanka tłuszczowa aorty Klamra rzutnika Zacisk Kochera Igła 18 G

Related Videos

Echokardiograficzna ocena prawego serca u myszy

09:29

Echokardiograficzna ocena prawego serca u myszy

Related Videos

23.9K Views

Charakterystyka hemodynamiczna modeli tętniczego nadciśnienia płucnego u gryzoni

09:40

Charakterystyka hemodynamiczna modeli tętniczego nadciśnienia płucnego u gryzoni

Related Videos

21.7K Views

Zwężenie lewego przedsionka wywołane tętnicą żylną płuc i nadciśnienie płucne grupy 2 u szczura

08:34

Zwężenie lewego przedsionka wywołane tętnicą żylną płuc i nadciśnienie płucne grupy 2 u szczura

Related Videos

7.7K Views

Lewa pneumonektomia w połączeniu z monokrotaliną lub Sugenem jako model nadciśnienia płucnego u szczurów

07:29

Lewa pneumonektomia w połączeniu z monokrotaliną lub Sugenem jako model nadciśnienia płucnego u szczurów

Related Videos

11.3K Views

Indukcja niewydolności prawej komory przez zwężenie tętnicy płucnej i ocena funkcji prawej komory u myszy

09:40

Indukcja niewydolności prawej komory przez zwężenie tętnicy płucnej i ocena funkcji prawej komory u myszy

Related Videos

11.1K Views

Inwazyjna ocena hemodynamiczna układu prawej komory i tętniczego nadciśnienia płucnego wywołanego niedotlenieniem u myszy

04:54

Inwazyjna ocena hemodynamiczna układu prawej komory i tętniczego nadciśnienia płucnego wywołanego niedotlenieniem u myszy

Related Videos

9.9K Views

Model odwróconej przebudowy naczyń krwionośnych w nadciśnieniu płucnym spowodowanym chorobą lewego serca przez odcięcie aorty u szczurów

07:41

Model odwróconej przebudowy naczyń krwionośnych w nadciśnieniu płucnym spowodowanym chorobą lewego serca przez odcięcie aorty u szczurów

Related Videos

3.4K Views

Kompleksowa echokardiograficzna ocena funkcji prawej komory serca w szczurzym modelu tętniczego nadciśnienia płucnego

07:38

Kompleksowa echokardiograficzna ocena funkcji prawej komory serca w szczurzym modelu tętniczego nadciśnienia płucnego

Related Videos

4.7K Views

Szczurzy model prawostronnej przebudowy serca i arytmii z wykorzystaniem pasma tętnicy płucnej

10:39

Szczurzy model prawostronnej przebudowy serca i arytmii z wykorzystaniem pasma tętnicy płucnej

Related Videos

1.4K Views

Ustalenie i walidacja szczurzego modelu tętniczego nadciśnienia płucnego związanego ze zwłóknieniem płuc

07:11

Ustalenie i walidacja szczurzego modelu tętniczego nadciśnienia płucnego związanego ze zwłóknieniem płuc

Related Videos

948 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code