-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Engineering
Eksperymentalne metody wychwytywania jonów za pomocą mikrofabrykowanych powierzchniowych pułapek ...
Eksperymentalne metody wychwytywania jonów za pomocą mikrofabrykowanych powierzchniowych pułapek ...
JoVE Journal
Engineering
This content is Free Access.
JoVE Journal Engineering
Experimental Methods for Trapping Ions Using Microfabricated Surface Ion Traps

Eksperymentalne metody wychwytywania jonów za pomocą mikrofabrykowanych powierzchniowych pułapek jonowych

Full Text
15,365 Views
11:45 min
August 17, 2017

DOI: 10.3791/56060-v

Seokjun Hong1, Minjae Lee1, Yeong-Dae Kwon2, Dong-il "Dan" Cho1, Taehyun Kim2

1ISRC/ASRI, Department of Electrical and Computer Engineering,Seoul National University, 2Quantum Tech. Lab,SK Telecom

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Ten artykuł przedstawia metodologię mikrofabrykacji dla powierzchniowych pułapek jonowych, jak również szczegółową eksperymentalną procedurę wychwytywania jonów iterbu w środowisku o temperaturze pokojowej.

Ogólnym celem tej procedury jest przygotowanie i zademonstrowanie eksperymentalnego zestawu do wychwytywania jonów iterbu, który zawiera mikrowytwarzany chip. Technologia pułapek jonowych jest uważana za jednego z wiodących kandydatów do fizycznej implementacji kwantowego przetwarzania informacji. Procedura ta zapewnia szczegółowe protokoły mikrowytwarzania uwięzionego chipa, a także, w celu skonstruowania zestawu eksperymentalnego, wychwytywania jonów przy użyciu mikrofabrykowanego chipa pułapki.

Systemy pułapek jonowych opracowane w technologii mikrofabrykacji zapewniają ogromny potencjał w zakresie kwantowego przetwarzania informacji i obliczeń kwantowych. Przedstawione tutaj protokoły poprowadzą nas przez proces produkcji i przeprowadzania eksperymentów z pułapkami jonowymi. Wizualna demonstracja tej metody ma kluczowe znaczenie, ponieważ wymaga orkiestracji różnych komponentów, takich jak lasery, systemy obrazowania, komora próżniowa, elektronika i mikrofabrykacja.

Aby przeprowadzić eksperyment, należy najpierw wytworzyć chip uwięziony w jonach powierzchniowych. Jest to przykład chipa zamontowanego w nośniku, który jest używany w tej demonstracji. Cechy układu są przedstawione na tym schemacie, jest szczelina ładowania, przez którą wprowadzane są neutralne atomy.

Po obu stronach szczeliny ładunkowej znajdują się elektrody o częstotliwości radiowej, które zatrzymują jony w kierunkach prostopadłych do szczeliny. Napięcia stałe na elektrodach zewnętrznych zamknęły jony wzdłuż tej szczeliny. Napięcia stałe na elektrodach wewnętrznych pomagają przechylić główną oś całkowitego potencjału.

Na potrzeby eksperymentu zamontuj zapakowany chip w komorze ultra wysokiej próżni. W tym przypadku chip znajduje się w środku sferycznej komory ośmiokątnej. Elementy systemu ultra wysokiej próżni są przedstawione w tym schemacie.

Pompa jonowa i nieparujący getter mogą osiągać ciśnienia poniżej 3 x 10 do 11. Torr. W sferycznym ośmiokącie znajduje się piec wypełniony atomami iterbu. Sferyczny ośmiokąt jest przedstawiony w środku tego schematu końcowego układu optycznego.

Mikro-wyprodukowany chip znajduje się w środku ośmiokąta. Przepusty umożliwiają połączenia elektryczne z elektrodami wiórowymi w piecu oktagonalnym. Elementy optyczne są rozmieszczone w taki sposób, że trzy lasery diodowe wytwarzają wiązki, które nakładają się na siebie w pozycji pułapki.

Wgłębiony otwór obserwacyjny w sferycznym ośmiokącie pozwala na zbliżenie soczewki obrazowej do powierzchni chipa. Wyobraź sobie powierzchnię chipa za pomocą kamery CCD zwielokrotniającej elektrony. Podłącz wielokanałowe do konwertera cyfrowo-analogowego.

Podłącz drugi koniec wielokanałowych do przepustów sferycznego ośmiokąta. Ponadto należy wykonać odpowiednie połączenia zasilające z rezonatorem śrubowym. Następnie pracuj z rezonatorem, analizatorem widma i sprzęgaczem kierunkowym.

Podłącz wyjście generatora RF do wyjścia sprzęgacza kierunkowego. Następnie połącz wejście rezonatora z portem wejściowym sprzęgacza kierunkowego. Podłącz sprzężony port przekierowania do wejścia RF analizatora widma.

Zakończ port sprzężony wstecznie rezystorem 50 omów. Teraz przygotuj się do regulacji spiralnej nasadki rezonatora. Ustaw położenie nasadki rezonatora spiralnego, a następnie zeskanuj częstotliwości generatora, aby określić częstotliwość, przy której odbicie jest minimalne.

Kontynuuj strojenie rezonatora, regulując pozycję nasadki. W międzyczasie monitoruj skanowanie częstotliwości, aby znaleźć częstotliwość globalnego minimum mocy odbitej. Po znalezieniu globalnego minimum zablokuj położenie nasadki rezonatora.

Wyłącz generator RF przed kontynuowaniem. Aby kontynuować, umieść wszystkie lasery na miejscu, ustabilizowaj je i zablokuj dla bezpieczeństwa. Odblokuj laser o długości fali 369,5 nanometra i skolimuj wiązkę.

Belka powinna rozchodzić się w kierunku uwięzionego chipa. Ustaw belkę równolegle do wióra i prawie dotykając jego powierzchni. Użyj karty belki, naprzeciwko punktu wejścia belki, aby przetestować wyrównanie, wokół punktu, wskazuje, że belka nie odbija się od żadnej powierzchni.

Następnie zamontuj soczewkę skupiającą na stoliku translacyjnym. Umieść soczewkę tak, aby skupić wiązkę w pobliżu potencjału pułapkowania, nadal równolegle do powierzchni wióra. Przejdź do pracy z optyką obrazową.

Wybierz obiektyw do obrazowania o dużej aperturze numerycznej zamontowany na stoliku translacyjnym. Umieść go przed wpuszczanym oknem komór ultra wysokiej próżni. Jest to schematyczny widok konfiguracji z założoną soczewką obrazowania.

Następnie wyrównaj wiązkę laserową, aby nastąpiło pewne rozproszenie z powierzchni wióra. Użyj karty belki, jak poprzednio, aby sprawdzić, czy belka jest częściowo zablokowana. Przejdź dalej, aby umieścić kartę wiązki w pobliżu płaszczyzny obrazu soczewki obrazowej.

Dostosuj położenie soczewki obrazowej za pomocą etapu translacji. Nowa pozycja powinna pozwolić rozproszonemu światłu na wytworzenie ostrego obrazu na karcie wiązki. Teraz umieść CCD mnożący elektrony na stoliku translacyjnym w płaszczyźnie obrazowania soczewki.

Przed matrycą CCD umieść filtr pasmowoprzepustowy, aby zablokować światło tła. Elektrody powinny być widoczne, przy użyciu CCD i zestawu soczewek. Następnie ustaw wiązkę pionowo tak, aby przeszła przez potencjał pułapkowania.

Następnie monitoruj wiązkę i przesuń ją w kierunku powierzchni pułapki. Załóżmy, że maksymalne rozproszenie wiązki oznacza, że środek wiązki znajduje się na powierzchni wióra. Teraz użyj etapu translacji soczewki, aby przesunąć wiązkę na oczekiwaną wysokość potencjału pułapkowania.

Po tej regulacji przesuń etapy translacji soczewki obrazowej i CCD z powrotem o tę samą odległość i zanotuj pozycję. To jest schematyczny widok systemu w tym momencie. Belka przechodzi przez oczekiwane położenie pułapki.

Kontynuuj po odblokowaniu pozostałych dwóch laserów i rozpocznij ich wyrównywanie. Wymień filtr pasmowoprzepustowy przed przetwornikiem CCD na filtr pasmowo-przepustowy 399 nanometrów. Następnie dostosuj pozycję soczewki obrazowej i CCD, aby ustawić ostrość elektrod na CCD.

Ustaw skolimowaną wiązkę o długości 399 nanometrów, aby weszła do komory próżniowej, rozchodząc się w kierunku przeciwnym do wiązki 369,5 nanometra i zachodząc na nią. Wprowadź lustro i lustro dichroiczne, aby połączyć dwie wiązki, aby współrozprzestrzeniały się w komorze. W celu przeprowadzenia testów należy tymczasowo dodać lustro do ścieżki wiązki przed komorą i sprawdzić, czy belka nakłada się na siebie za pomocą profilera belki.

Wprowadzić soczewkę skupiającą na etapie translacji na ścieżce wiązki między zwierciadłami dichroicznymi i tymczasowymi. Użyj profilera wiązki, aby sprawdzić ostrość dwóch wiązek. W takim przypadku oba lasery nie są skupione w tym samym punkcie, w którym powinny.

Na koniec ustaw laser o długości 935 nm, aby lasery znalazły się w zbieżności. Po wykonaniu tej czynności usuń tymczasowe lustro i upewnij się, że wiązka o długości 399 nanometrów może być obserwowana w CCD. Wyrównaj belkę w pionie z oczekiwaną pozycją pułapki, a następnie przesuń belkę w kierunku wióra.

Monitoruj obraz CCD i skojarz maksymalne natężenie rozproszonego światła z wiązką wyśrodkowaną na powierzchni chipa. Następnie przesuń belkę z powierzchni do oczekiwanego położenia pułapki. Następnie przesuń soczewkę obrazowania i matrycę CCD do tyłu na tę samą odległość.

Następnie ustaw laser o długości fali 399 nm w pobliżu odpowiedniego przejścia iterbu 174. Monitoruj obraz CCD, gdy piekarnik z iterbem jest włączony, a prąd wzrasta. Zrób to, przetaczając laser przez rezonans iterbu, aby zidentyfikować początek parowania, obserwując fluorescencję.

Zanotuj aktualną wartość tuż przed fluorescencją i wyłącz piekarnik. Przygotuj się na ostateczne przygotowanie do zatrzymywania jonów. Wróć do filtra pasmowoprzepustowego na CCD i zastąp go filtrem pasmowo-przepustowym 369,5 nanometra.

Ponadto dostosuj pozycje matrycy CCD i soczewki obrazowej do ustawiania ostrości 368,5 nanometra. Ustaw napięcia dla przetwornika cyfrowo-analogowego sterującego elektrodami. Następnie przejdź do generatora RF podłączonego do rezonatora śrubowego.

Włącz generator na bardzo niskim ustawieniu mocy i stopniowo zwiększaj moc wyjściową. W komputerze sterującym laserem ustaw częstotliwości lasera i źródło prądu pieca na odpowiednie wartości. Po kilku minutach na krótko zablokuj laser 935 nm na jedną do dwóch sekund, aby rozpocząć test pułapki.

Wyświetl pułapkę za pomocą CCD. Jeśli jony zostaną uwięzione, szybkość rozpraszania znacznie spada, a obraz jest zauważalnie dotknięty. Zablokuj laser kilka razy, aby sprawdzić, czy blokowanie koreluje ze zmianami obrazu.

Gdy jony zostaną uwięzione, wyłącz piekarnik. Ta kompozycja obrazów CCD mnożących elektrony sugeruje lokalizację pięciu jonów iterbu 174 1+ uwięzionych w mikro-sfabrykowanym chipie pułapki jonowej. Liczbę uwięzionych jonów można zmieniać, zmieniając przyłożone napięcia DC.

Na tym filmie z uwięzionymi jonami, jony są manipulowane poprzez zmianę napięcia DC pułapki. Protokoły wytwarzania powierzchniowych pułapek jonowych i wychwytywania jonów izotopu iterbu 174 zostały przedstawione w tym filmie. Procedurę tę można łatwo rozszerzyć w celu wychwytywania jonów iterbu izotopu 171 i manipulowania sceną sześcienną, ostatecznie przechodząc w kierunku kwantowego przetwarzania informacji i obliczeń kwantowych.

Explore More Videos

Słowa kluczowe: Pułapkowanie jonów mikrofabrykowane powierzchniowe pułapki jonowe kwantowe przetwarzanie informacji obliczenia kwantowe komora próżniowa jony iterbu elektrody o częstotliwości radiowej napięcia DC system ultrawysokiej próżni piekarnik lasery diodowe system obrazowania

Related Videos

Mikroprzepływowa pułapka hydrodynamiczna dla pojedynczych cząstek

10:13

Mikroprzepływowa pułapka hydrodynamiczna dla pojedynczych cząstek

Related Videos

17.3K Views

Wbudowana izotacofoforeza do rozdzielania jonów i oczyszczania kwasów nukleinowych

10:32

Wbudowana izotacofoforeza do rozdzielania jonów i oczyszczania kwasów nukleinowych

Related Videos

25.2K Views

Optyczne wychwytywanie nanocząstek

13:39

Optyczne wychwytywanie nanocząstek

Related Videos

23K Views

In Situ Spektroskopia SIMS i IR dobrze zdefiniowanych powierzchni przygotowanych przez miękkie lądowanie jonów o wybranej masie

10:22

In Situ Spektroskopia SIMS i IR dobrze zdefiniowanych powierzchni przygotowanych przez miękkie lądowanie jonów o wybranej masie

Related Videos

19K Views

Pomiar zewnątrzkomórkowych strumieni jonów za pomocą techniki jonoselektywnych mikroelektrod samoreferencyjnych

09:18

Pomiar zewnątrzkomórkowych strumieni jonów za pomocą techniki jonoselektywnych mikroelektrod samoreferencyjnych

Related Videos

14.5K Views

Mikroprzepływowe klatki pneumatyczne: nowatorskie podejście do wychwytywania kryształów w chipach, manipulacji i kontrolowanej obróbki chemicznej

09:34

Mikroprzepływowe klatki pneumatyczne: nowatorskie podejście do wychwytywania kryształów w chipach, manipulacji i kontrolowanej obróbki chemicznej

Related Videos

10K Views

Pułapka optyczna obciążenia mikrocząstek dielektrycznych w powietrzu

08:57

Pułapka optyczna obciążenia mikrocząstek dielektrycznych w powietrzu

Related Videos

9.5K Views

Pułapkowanie plazmoniczne i uwalnianie nanocząstek w środowisku monitorowania

09:13

Pułapkowanie plazmoniczne i uwalnianie nanocząstek w środowisku monitorowania

Related Videos

8K Views

Łączenie polaryzacji stężenia jonów między zestawionymi membranami jonowymiennymi w celu zablokowania propagacji strefy polaryzacji

08:06

Łączenie polaryzacji stężenia jonów między zestawionymi membranami jonowymiennymi w celu zablokowania propagacji strefy polaryzacji

Related Videos

9K Views

Jonoforeza w czasie rzeczywistym z tetrametyloamonem w celu ilościowego określenia frakcji objętościowej i krętości przestrzeni zewnątrzkomórkowej mózgu

10:45

Jonoforeza w czasie rzeczywistym z tetrametyloamonem w celu ilościowego określenia frakcji objętościowej i krętości przestrzeni zewnątrzkomórkowej mózgu

Related Videos

12.8K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code