-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Użycie elektrody bipolarnej do stworzenia mysiego modelu padaczki skroniowej poprzez elektryczne ...
Użycie elektrody bipolarnej do stworzenia mysiego modelu padaczki skroniowej poprzez elektryczne ...
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Using a Bipolar Electrode to Create a Temporal Lobe Epilepsy Mouse Model by Electrical Kindling of the Amygdala

Użycie elektrody bipolarnej do stworzenia mysiego modelu padaczki skroniowej poprzez elektryczne rozppalenie ciała migdałowatego

Full Text
2,956 Views
09:49 min
June 29, 2022

DOI: 10.3791/64113-v

Yongchang Lu*1,2, Yang Dai*1,2, Siqi Ou1,2, Yujing Miao1, Ying Wang1,2, Quanlei Liu1,2, Yihe Wang1,2, Penghu Wei1,2, Yongzhi Shan1,2, Guoguang Zhao1,2,3

1Department of Neurosurgery,Xuanwu Hospital Capital Medical University, 2China Clinical Research Center for Epilepsy Capital Medical University, 3China Beijing Municipal Geriatric Medical Research Center

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Ciało migdałowate odgrywa kluczową rolę w padaczce skroniowej, która wywodzi się z tej struktury i z niej się rozprzestrzenia. Ten artykuł zawiera szczegółowy opis wytwarzania głębokich elektrod mózgowych z funkcjami zarówno rejestrującymi, jak i stymulującymi. Wprowadza model padaczki przyśrodkowego płata skroniowego wywodzącej się z ciała migdałowatego.

W protokole tym zaproponowano model padaczki, w której pochodzeniu występuje ciało migdałowate. Otwiera to drogę do badania mezjalnych struktur płata skroniowego. Model ten może być interpretowany jako podstawa eksperymentu.

Ponieważ protokół ten jest tanią i wydajną metodą, można go szybko przeprowadzić w większości laboratoriów. Procedurę zademonstruje Yongchang Lu, doktorant w naszym laboratorium. Zacznij od zebrania wstępnie przygotowanych elementów, zaczynając od dwucentymetrowych kawałków drutu wolframowego pokrytego teflonem o średnicy niedźwiedzia 76,2 mikrometra.

Jeden kawałek srebrnego drutu o średnicy niedźwiedzia 127 mikrometrów o tej samej długości i jeden zestaw dwóch na dwa kołki linowe. Użyj zapalniczki, aby spalić jeden koniec każdego drutu wolframowego, aby usunąć pięć milimetrów powłoki izolacyjnej. Obierz odcinek bardzo cienkiego drutu wielożyłowego.

Rozwiń od dołu do górnego końca, gdzie zaczyna się, kontynuując do góry. Połącz ten bardzo cienki drut i drut wolframowy, ściskając jeden koniec i delikatnie skręcając drugi, umożliwiając łatwe splatanie ze sobą dwóch materiałów. Delikatnie pociągnij, aby upewnić się, że druty są szczelnie owinięte i odetnij nadmiar bardzo cienkiego drutu.

Staraj się, aby drut wolframowy był prosty przez cały proces. Przymocuj kołek linowy do zacisku na stole spawalniczym dłuższym bokiem kołków skierowanym na zewnątrz. Użyj igły strzykawki, aby nabrać trochę pasty lutowniczej i nałóż ją na kołki.

Podgrzej palnik spawalniczy do 320 stopni Celsjusza. Rozpuść i posmaruj trochę bezołowiowego drutu cynowego za pomocą końcówki palnika. Załóż górny koniec drutu wolframowego na jedną igłę kołków linowych i użyj lutu na palniku, aby przymocować drut wolframowy do kołka.

Przyspawaj kolejny drut wolframowy i kolejny srebrny drut do kołka linowego w ten sam sposób, tak aby każdy drut odpowiadał igły. Wytnij dwie rurki termokurczliwe nieco dłuższe niż górny koniec drutu wolframowego. Umieść je na złączu lutowanym dwóch drutów wolframowych, upewniając się, że część przewodząca jest całkowicie pokryta rurką, tak aby obwód dwóch drutów wolframowych nie był umieszczony szeregowo.

Wyjmij elektrodę ze stołu spawalniczego clamp i delikatnie przytrzymaj elektrodę dużymi szczypcami, ponieważ elektrody mogą łatwo stracić swój kształt podczas podgrzewania rurki termokurczliwej. Użyj zacisku o dobrej przewodności cieplnej z nieco większą siłą. Włącz kanał powietrzny i podgrzewaj, aż osiągniesz temperaturę 320 stopni Celsjusza.

Przedmuchuj rurkę termokurczliwą przez kilka sekund, aż zostanie dokręcona. Wzmocnij elektrodę klejem topliwym. Przytrzymaj dwa druty wolframowe i skręć je razem, trzymając ich końce osobno.

Przytnij skręcone druty wolframowe do około 10 milimetrów długości, tak aby odstęp na końcach nie przekraczał 0,5 milimetra. Sprawdź elektrody za pomocą multimetru, umieszczając jeden pręt multimetru po niespawanej stronie kołków liny i delikatnie dotykając końcem drutu wolframowego lub drutu srebrnego do drugiego pręta. Sprawdzanie, czy obwód jest płynny.

Upewnij się, że linie nie są umieszczone szeregowo. Oderwij pięć milimetrów powłoki izolacyjnej na każdym końcu, aby odsłonić metalowy drut w środku. Dodaj odcinek rurki termokurczliwej do każdego przewodu rozrusznika.

Zespawaj każdy przewód za pomocą wtyczki złącza urządzenia EEG. Rurkę termokurczliwą obkurczyć gorącym powietrzem. Dodaj odcinek rurki termokurczliwej do każdego drutu wirnika.

Skręć ze sobą przewodzące części czerwonego i pomarańczowego drutu i przyspawaj je do złącza i głowicy, aby pasowały do kołka liny. Przyspawaj pozostałe dwa druty na głowicy do każdego złącza. Zważ mysz.

Gdy mysz jest w pełni znieczulona, ogol włosy od oka do ucha maszynką do golenia. Umieść mysz na ramce stereotaktycznej. Włóż przednie górne zęby do siekacza i włóż oba paski do uszu na równą głębokość do uszu.

Nałóż maść do oczu z erytromycyną na oczy, aby zapobiec suchości i ślepocie spowodowanej jasnym światłem podczas zabiegu. Zdezynfekuj obszar operacyjny co najmniej trzy razy naprzemiennie wacikami z jodoforem i 75% alkoholem. Wykonaj nacięcie podłużne, aby całkowicie odsłonić obszar operacyjny lub wykonaj trójkątne nacięcie, o ile odsłania przednie i tylne ciemiączka oraz miejsca implantacji elektrod.

Zwiń mały kawałek bawełny w kulkę i zwilż go 3% nadtlenkiem wodoru. Usuń tkankę miękką przyczepioną do czaszki, delikatnie pocierając odsłonięty obszar małym wacikiem, aż zobaczysz przednie i tylne ciemiączko. Dostosuj wysokość przednią i tylną tak, aby ciemiączko przednie i tylne było poziome.

Rozważ położenie przedniego ciemiączka jako początek osi. Przymocuj ze stali nierdzewnej do lewej czaszki móżdżku. Ustaw współrzędne rozpałki ciała migdałowatego z bregmy i dostosuj urządzenie stereotaktyczne, aby zlokalizować to miejsce i oznaczyć je.

Wywierć otwór w miejscu marszu wiertłem do czaszki o średnicy 0,5 milimetra. Przymocuj elektrody do pręta ustalającego urządzenia stereotaktycznego. Umieść elektrodę pionowo nad otworem i powoli obniż pozycję do minus 4.9 milimetra.

Owiń srebrny drut wokół trzykrotnie. Uważaj, aby nie potrząsnąć korpusem elektrody podczas pracy. Wymieszaj cement dentystyczny i delikatnie nałóż go na elektrodę i powierzchnię czaszki.

Gdy cement dentystyczny stwardnieje, zmodyfikuj zewnętrzną stronę, aż cement otaczający stałą elektrodę zamieni się w stożek. Następnie zwolnij elektrodę z urządzenia stereotaktycznego. Wyjmij mysz i umieść ją z powrotem w klatce.

Trzymanie go oddzielnie od innych myszy. Umieść mysz w specjalnie zaprojektowanym pudełku z ślizgowymi łączącymi elektrodę na głowie myszy z urządzeniem EEG. Przeprowadź przez otwór w pokrywie pudełka i dostosuj długość pozostawioną w pudełku, aby umożliwić swobodne poruszanie się myszy.

Włącz urządzenie EEG i upewnij się, że działa poprawnie. Ustaw parametry stymulatora tak, aby dostarczały jednomilisekundowe monofazowe impulsy fali prostokątnej o częstotliwości 60 Hz przez jedną sekundę przez 10 cykli stymulacji. Zacznij od natężenia prądu 50 mikroamperów dla pierwszej stymulacji.

Monitoruj EEG po wyładowaniu charakteryzującym się skokami o wysokiej częstotliwości. Jeśli nie zaobserwuje się wyładowania po wyładowaniu, dodaj 25 mikroamperów do następnego bodźca i kontynuuj ten proces co 10 minut, aż do zaobserwowania wyładowania po wyładowaniu i będzie trwało pięć sekund. Stymuluj mysz określonym natężeniem prądu co 15 minut, nie częściej niż 20 razy dziennie.

Monitoruj reakcje behawioralne na bodziec. Operację wszczepienia elektrody przeprowadzono na sześciu zdrowych dorosłych samcach C57 czarnych 6 myszach, a stymulację elektryczną wykonano dwa tygodnie po operacji. Poziom napadów behawioralnych stopniowo wzrastał wraz ze wzrostem liczby bodźców i rejestrowano liczbę bodźców wymaganych do całkowitego rozpalenia.

EEG po wyładowaniach trwało od pięciu do 15 sekund. Następnie nasiliły się samoistne wyładowania wewnątrzczaszkowe i zaczęły się objawy behawioralne. Czas trwania napadu był zwykle krótszy niż jedna minuta, co zmniejsza ryzyko zgonu z powodu ciężkich drgawek prowadzących do bezdechu.

Ekspresję c-Fos w tkance mózgowej wykryto za pomocą immunohistochemii dwie godziny po całkowitym rozpałszczeniu. Wyniki pokazują, że ekspresja c-Fos w ipsilateralnym ciele migdałowatym znacznie wzrosła, weryfikując wykonalność tego modelu. Odstęp między końcami drutu wolframowego nie powinien przekraczać pół milimetra, w przeciwnym razie nie przedostanie się przez otwór mózgowy.

Długość elektrody nie powinna być zbyt długa, w przeciwnym razie wpłynie to na aktywność myszy.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Elektroda bipolarna padaczka skroniowa model myszy rozpałka elektryczna ciało glarne metoda niskokosztowa drut wolframowy procedura klejenie przewodzące rurki termokurczliwe przygotowanie elektrody protokół laboratoryjny yongchang lu

Related Videos

Przygotowanie podciętego modelu padaczkogenezy pourazowej u gryzoni

07:58

Przygotowanie podciętego modelu padaczkogenezy pourazowej u gryzoni

Related Videos

9.6K Views

Leczenie układowe pilokarpiny: mysi model padaczki skroniowej

03:50

Leczenie układowe pilokarpiny: mysi model padaczki skroniowej

Related Videos

3.5K Views

Wszczepienie zespołu elektrod do mózgu myszy w celu zapisu elektrofizjologicznego

05:36

Wszczepienie zespołu elektrod do mózgu myszy w celu zapisu elektrofizjologicznego

Related Videos

1.1K Views

Ustalenie modelu napadów padaczkowych indukowanych pentylenotetrazolem u myszy

02:15

Ustalenie modelu napadów padaczkowych indukowanych pentylenotetrazolem u myszy

Related Videos

675 Views

Wywoływanie ostrego napadu elektrowstrząsowego w modelu szczurzym

02:33

Wywoływanie ostrego napadu elektrowstrząsowego w modelu szczurzym

Related Videos

263 Views

Długotrwałe, ciągłe monitorowanie EEG w modelach chorób człowieka u małych gryzoni przy użyciu systemu nadajników bezprzewodowych Epoch

08:43

Długotrwałe, ciągłe monitorowanie EEG w modelach chorób człowieka u małych gryzoni przy użyciu systemu nadajników bezprzewodowych Epoch

Related Videos

26.1K Views

Model rozpałki indukowany pentylenotetrazolem

07:06

Model rozpałki indukowany pentylenotetrazolem

Related Videos

34.3K Views

Pilokarpinowy model padaczki skroniowej i monitorowanie EEG z wykorzystaniem systemu radiotelemetrycznego u myszy

10:08

Pilokarpinowy model padaczki skroniowej i monitorowanie EEG z wykorzystaniem systemu radiotelemetrycznego u myszy

Related Videos

20.5K Views

Rejestracja i modulacja aktywności padaczkowej w wycinkach mózgu gryzoni sprzężonych z układami mikroelektrod

10:24

Rejestracja i modulacja aktywności padaczkowej w wycinkach mózgu gryzoni sprzężonych z układami mikroelektrod

Related Videos

15.2K Views

Wywoływanie padaczki pourazowej w mysim modelu powtarzalnego rozlanego urazowego uszkodzenia mózgu

07:07

Wywoływanie padaczki pourazowej w mysim modelu powtarzalnego rozlanego urazowego uszkodzenia mózgu

Related Videos

11K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code