April 28th, 2023
Opisujemy metodę skutecznego zbierania mierzalnych hemolimfów od małych stawonogów do późniejszej analizy.
Nasze badania koncentrują się na arbowirusach, owadach i interakcjach roślin. Pobieranie próbek hemolimfy od małych stawonogów stanowi wyzwanie techniczne dla badań nad chorobami przenoszonymi przez owady. Niniejszy protokół pokazuje naszą precyzyjną i wymierną technikę przeciwdziałania temu problemowi.
Ostatnie osiągnięcia badawcze w zakresie przenoszenia arbowirusów wykazały, że wirusy mogą manipulować kilkoma ważnymi czynnikami wektorowymi, aby przebić się przez barierę gospodarza. Protokół ten jest prostą, opłacalną i cenną techniką, która pozwala na precyzyjne określenie ilościowe hemolimfy. Metoda ta oferuje również cenną technologię do badania interakcji między wirusami a wektorami.
Nasze nadchodzące badania będą koncentrować się na zrozumieniu mechanizmów molekularnych różnych transmisji przez owady wektorowe. Badamy i ulepszamy nowe techniki operacyjne. Do tego badania użyj małych brązowych skoczków roślinnych lub SBPH, hodowanych w sadzonkach ryżu.
Gdy kultury będą gotowe, umieść wyhodowane SBPH w probówce wirówkowej i umieść je w łaźni lodowej na 10 do 30 minut. Następnie umieść zamrożony SBPH na szklanym szkiełku pod mikroskopem stereoskopowym z brzuchem skierowanym do góry i dostosuj ostrość na jego sześciu nogach. Przygotuj dwie precyzyjne pęsety z bardzo cienkimi końcówkami.
Za pomocą jednej pęsety dociśnij ciało owada, aby utrzymać je na miejscu, i ostrożnie ściągnij jedną nogę drugą pęsetą. Następnie delikatnie przyciśnij klatkę piersiową owada, pozwalając hemolimfie przepłynąć przez ranę. Aby pobrać hemolimfę, przygotuj mikropipetę, umieszczając jednomikrolitrową rurkę kapilarną w bańce pipety.
Umieść rurkę kapilarną blisko rany owada, trzymając za gruszkę pipety do mikropipet. Przyłóż końcówkę kapilary do wydzielającej się hemolimfy i zbierz ją. Gdy rurka kapilarna osiągnie żądaną linię skali, lekko zablokuj palcem mały otwór w bańce pipety, aby zatrzymać proces wchłaniania.
Następnie zebraną hemolimfę rozładować do 100 mikrolitrów buforu PBS. Dokładność pobierania hemolimfy została potwierdzona za pomocą SDS-PAGE, która wykazała podobną zawartość białka we wszystkich trzech próbkach hemolimfy pobranych osobno. W przypadku larw całkowite stężenie białka wynosiło około 3,7 miligrama na mililitr.
U dorosłych samic i mężczyzn SBPH stężenia białka wynosiły odpowiednio około 3,5 i 3,6 miligrama na mililitr, nie wykazując istotnej różnicy między trzema próbkami. Larwa hemolimfy wykazywała hemocyty o wielkości od 2 do 20 nanometrów. Ponadto stężenie komórek było porównywalne w trzech pobranych próbkach hemolimfy.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Niniejsze badanie dotyczy technicznego wyzwania związanego z pobieraniem ilościowo zmierzytelnej hemolimfy od małych stawonogów, zwłaszcza od małych brązowych świetołkowatych (SBPH), w celu zwiększenia badań nad wirusami przenoszonymi przez owady. Ustanowiony protokół oferuje prostą i opłacalną metodę dokładnego pobierania hemolimfy, otwierając drogę dla dalszych badań nad interakcjami wirus-wektor.
Quantitative hemolymph collection from small arthropods addresses a critical bottleneck in vector-borne disease research, enabling precise study of virus-vector interactions. This capability enhances predictive confidence in early discovery and target validation for arbovirus transmission mechanisms. Reliable sample acquisition supports translational continuity from basic research to preclinical model development in vector biology.
This hemolymph collection method integrates into the discovery-to-preclinical continuum for vector-borne disease research, supporting both mechanistic studies and assay development.