Name: Enzyme-linked immunospot Assay (ELISPOT): Quantificação de Th-1 respostas imunes celulares contra antígenos microbianos (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-11-23T17:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 13 s
Description: Aprenda a realizar o ensaio ELISPOT para detectar respostas de células T contra antígenos microbianos. Este método permite quantificar citocinas e identificar alvos imunológicos em doenças idiopáticas.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Apoiado em parte pela Vanderbilt CTSA conceder um UL1 RR024975 do Centro Nacional de Pesquisa de Recursos, National Institutes of Health. Este trabalho foi financiado pelo NIH R01 HL 83839; R01 AI 65744.

Para o protocolo a seguir, usamos células mononucleares do sangue periférico (PBMC) como as células de interesse. No entanto, este protocolo pode ser usado com outros tipos celulares. Realizar o ensaio em uma capa de cultura de tecido usando a técnica estéril. Dia 1: Elaboração de Placa e Células <ol><li> Tirar uma placa de ELISPOT e abri-lo no bairro. </li><li> Lavar a placa 3 vezes com 150 mL de PBS 1X usando um pipetador multicanal, se disponível, caso contrário, pipetagem único bem é aceitável. </li><li> Retire um pacote de reservatórios e abri-lo no capô. </li><li> Adicione 2 mg / mL do anticorpo de captura, anti-humana Interferon-γ, a 11 mL de PBS 1X. Vortex bem. Transferência mix de anticorpos para um reservatório. </li><li> Lugar de 100 L da solução de revestimento em cada poço usando o multicanal. </li><li> Embrulhe a placa em parafilme. </li><li> Coloque o prato na geladeira durante a noite. As placas são boas para a semana. A regra de ouro é que se houver ainda resta de líquido nos poços, a placa pode ser utilizada. </li></ol> Preparação de células Se o PBMCs são frescos, em seguida, contar as células e incubar durante a 37 ° C com 5% de CO 2. Para PBMC armazenados em nitrogênio líquido, o descongelamento de células é necessário. O protocolo é o seguinte: <ol><li> Descongele a cryovial de células em 37 ° C banho-maria até quase completamente descongelado. </li><li> Imediatamente ressuspender em 5 mL de R10 mídia. </li><li> Rodada por 5 minutos a 225 x g. </li><li> Ressuspender novamente em 5 mL de R10 media e contagem de células viáveis ​​com azul de tripano. </li><li> Traga concentração para 2 x 10 6 células / mL em R10 mídia. </li><li> Descansar durante a noite a 37 ° C com 5% de CO 2. </li></ol> Dia 2: Configurar a placa de <ol><li> Tampa etiqueta da placa com o número de amostras de identificação, condições de bem, e data. </li><li> Lave a placa 6 vezes com 150 mL de PBS estéril 1x usando o dump e método blot. Tenha cuidado para não espirrar a placa enquanto dumping. Isso pode causar as cavidades da placa para girar o roxo. </li><li> Adicionar 100 mL de R20 a cada poço. </li><li> Incubar a placa a 37 ° C por 1 hora. </li><li> Enquanto a placa é a incubação, contar as células que foram descansou durante a noite. </li><li> Gire a suspensão celular a 1500 rpm por 5 minutos. Decantar o sobrenadante e ressuspender o sedimento para que você tenha uma concentração final de 1x10 6 células por 1mL em R10 mídia. </li><li> Após a incubação de 1 hora, retire o R20 com o despejo e método blot. Tenha cuidado para não espirrar a placa enquanto dumping. </li><li> Adicionar 100 mL de solução de célula (10 5 células) em cada poço. Adicionar peptídeos apropriados e / ou antígenos para os poços correspondentes em duplicata. Use uma ponteira de pipeta nova cada vez que você entrar na solução de peptídeo de trabalho. Concentração de peptídeo normal é 10-40 mcg / mL. Desde peptídeos variam, cada investigador deverá titular peptídeos para obter os melhores resultados. </li><li> Nos poços de controlo negativo, apenas adicionar células (sem peptídeos) </li><li> Nos poços de controlo positivo, adicione fitohemaglutinina (PHA, 10 mcg / mL; Sigma). </li><li> Incubar durante a 37 ° C com 5% de CO 2 (~ 18 horas). </li></ol> Dia 3: Desenvolvimento da Prata <ol><li> Lave a placa 6 vezes com 150 mL 1xPBS usando o dump e método blot. </li><li> Adicionar 100 mL PBS a cada poço da placa usando o pipetador multicanal. </li><li> Coloque o prato na geladeira por 15 minutos. </li><li> Pegue a placa fora da geladeira e colocá-lo na capa de cultura de tecidos. </li><li> Prepare a solução de anticorpos biotina <ul><li> Adicionar 0,5 mg / mL de anticorpos biotina (MAB 7-B6-1) para 11mL PBS. </li><li> Vortex da solução para misturar bem. </li><li> Se o planejamento para adicionar a solução com um multicanal, derramá-la em um reservatório. </li></ul></li><li> Descartar a PBS sacudindo-a na lixeira. Tenha cuidado para não espirrar a placa enquanto dumping. </li><li> Lugar de 100 L da solução em cada poço. </li><li> Incubar a placa na capa de cultura de tecido em temperatura ambiente por uma hora. </li><li> Lavar placa 6 vezes com 150μL 1xPBS usando o dump e método blot. Sobre a lavagem 6 º, deixe o PBS sobre a placa até que você tenha preparado o anticorpo Estreptavidina. </li><li> Prepare o anticorpo Estreptavidina. <ul><li> Adicionar 5,5 μ l Estreptavidina anticorpos (estreptavidina-ALP) para 11mL de PBS (diluição 1:2000). </li><li> Vortex da solução para misturar bem. </li><li> Se o planejamento para adicionar a solução com um multicanal, derramá-la em um reservatório. </li></ul></li><li> Descartar as restantes PBS nos poços e inverter a placa. </li><li> Adicionar 100 mL de solução de estreptavidina a cada poço. </li><li> Incubar a placa na capa de cultura de tecido em temperatura ambiente por 1 hora. </li><li> Lavar as placas 6 vezes com PBS usando o dump e método blot. Sobre a lavagem 6 º, deixe o PBS sobre a placa até que você tenha feito a solução de cor. </li><li> Trabalhar no escuro. Preparar a solução de substrato de fosfatase alcalina (Alcalina Fosfatase Substrato Kit IV BCIP / NBT): <ul><li> Adicione 4 gotas de reagente substrato 1-11 mL Tris buffer, vortex bem. Adicione 4 gotas do reagente substrato 2 a Tris buffer, vortex bem. Adicione 4 gotas do reagente substrato 3 a Tris buffer, vortex bem. </li></ul></li><li> Descartar as restantes PBS e inverter a placa. </li><li> Adicionar 100 mL da solução de cor a cada poço da placa usando o multicanal. </li><li> Acender a luz depois de 5 a 10 minutos de cor em desenvolvimento. </li><li> Permitir que os reagentes de cor para permanecer na placa até que as manchas começam a ficar roxo e são bastante escuro. Isso deve levar de 5 a 20 minutos. Tenha cuidado para não deixar a solução de substrato por muito tempo, pois isso poderia causar alto background. </li><li> Lave a placa ELISPOT 3 vezes com água da torneira. </li><li> Deixar secar durante cerca de uma hora ou durante a noite. </li><li> Leia placa manualmente ou com ELISPOT leitor de placas. </li><li> Armazenar a placa em uma caixa longe da exposição de luz. </li></ol> Resultados representativos: ELISPOT foi projetado para quantificar as respostas imunológicas contra antígenos microbianos. Cada ponto indica uma única célula sensível, expressando a citocina de interesse. As manchas podem ser contados manualmente ou utilizando um leitor de placas ELISPOT. Avaliação de que o ELISPOT tem sido realizada corretamente deve começar com a investigação do controle negativo para a produção de fundo da citocina de interesse. Nos poços de controlo negativo seria de esperar para ver nenhum ponto, apesar de um pouco de fundo (cor púrpura) podem estar presentes. Normalmente, não deve ser inferior a uma média de cinco pontos por poço. Os poços de controlo positivo confirmar que a reação tenha sido realizada corretamente, e que as células respondem ao estímulo antigênico. Nos poços de controlo positivo que você esperaria ver um fundo roxo profundo devido a uma confluência de pontos (fig. 1). Deve haver pouca ou nenhuma fundo branco. Se o controle positivo e amostras de controlo negativo são apropriados, pode-se contar os poços contendo o antígeno de interesse. Um resultado "subótima" seria refletida pela alta de fundo (os poços são roxo), sem manchas ou pontos muito poucos, o centro em branco, manchas mal definida ou pontos confluentes. Uma lista de dicas de solução é fornecida (Tabela 1). <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/2221/2221fig1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Um representante da chapa de ELISPOT. Cada chapa deve conter um controle positivo, controle negativo e peptídeos de interesse realizados no mínimo em dois poços. C9, C10, D9 e D10 são os poços de controlo positivo, como você pode ver, há uma cor arroxeada, as células confluentes e dificilmente qualquer fundo branco. Os poços de controlo negativo são G11, G12, H11 e H12. Estes poços não tem fundo roxo e sem manchas como esperado. As manchas G7, G8, H7 e H8, ilustrar respostas celulares a peptídeos microbianos; os pontos roxos representam uma única célula sensível expressando a citocina de interesse. Tabela 1 <table border="1"><tbody><tr><td> Observação </td><td> Problema Possível </td><td> Solução possível </td></tr><tr><td> Elevado ruído de fundo </td><td> 1. Ambos os lados da membrana não lavadas adequadamente 2. Citocina muitas células secretoras 3. Placa não secas adequadamente 4. Sobre a placa desenvolvida </td><td> 1. Lavar ambos os lados da membrana com água destilada antes e após o desenvolvimento da cor. Reagentes podem vazar através da membrana na base da placa, e estes podem causar alto background, se não lavados. 2. Reduzir o número de células por poço, isto exigirá otimização 3. Secar a placa mais antes de ler 4. Reduzir o tempo de desenvolvimento </td></tr><tr><td> Sem manchas / Spots Muito poucos </td><td> 1. Não o suficiente células secretoras de citocinas / proteína de interesse 2. Assegurar que as células são estimuladas corretamente 3. Células não incubadas por long suficiente ou pode levar algum tempo para responder a estimulante 4. Desenvolvimento de cor inadequada 5. Anticorpos não é suficiente primária ou secundária </td><td> 1. Aumentar o número de células. Isso exigirá a otimização 2. Também usar um controle de estimulação positiva - um estimulante que você sabe que vai induzir a expressão do seu citocina / proteína de interesse 3. Aumentar o tempo de incubação da célula ou utilizar o método indirecto (pré-tratamento de células com estimulante) 4. Monitorar o desenvolvimento de cor com um microscópio de sobrecarga e assegurar que os reagentes em desenvolvimento têm sido armazenados corretamente e não perdeu a atividade da 5. Concentração do anticorpo primário e / ou secundário terá de ser aumentado. Isso vai exigir de otimização. </td></tr><tr><td> Áreas em branco </td><td> 1. Membrana não pré-tratados 2. Membrana secou em algum estágio 3. Células distribuídas de forma desigual </td><td> 1. Garantir a membrana é adequadamente pré-tratados com etanol 70% (todas as membranas não precisa deste modo a verificar com o seu fornecedor). Lave bem com PBS 3X depois 2. Garantir a membrana não seca 3. Certifique-se de misturar as células com cuidado para ter uma boa suspensão de células homólogas antes de pipetar para fora dos poços </td></tr><tr><td> Centro em branco </td><td> 1. Danos da lavagem </td><td> 1. Taxa de fluxo na máquina de lavar automática (ou pipetagem) pode ser muito alto. Precisa de um procedimento de lavagem mais suave </td></tr><tr><td> Falsos positivos </td><td> 1. Secundário de agregados de anticorpos 2. Células ainda na membrana 3. Contaminação de cultura de células </td><td> 1. Filtrar o anticorpo secundário 2. Garantir que todas as células são lavadas da membrana com PBS Tween 20 antes da incubação do anticorpo secundário. Células à esquerda na membrana dará irregular manchas em forma 3. Manter reagentes como estéril e limpo possível. Garantir a sua técnica de cultura de células é asséptica. Verifique se há falsos positivos, executando um controle de mídia negativa. Para o movimento das placas, <a href="http://www.abcam.com/index.html?pageconfig=resource&amp;rid=11457#7">ver os pontos mal definidos</a> </td></tr><tr><td> Spots confluentes </td><td> 1. Pobres revestimento, anticorpos muito 2. Cultura de células prolongada 3. Células sobre-estimulados </td><td> 1. Reduzir a concentração de anticorpo primário 2. Quanto mais tempo as células são incubadas, mais de citocinas / proteína eles secretam. Isto irá resultar em manchas maiores, que vai começar a se fundir e tornar-se indistinguíveis. 3. Reduzir o tempo de incubação de cultura de células passo. Sobre-estimulação resultará em uma grande quantidade de citocina / proteína que está sendo secretada pela célula. Isto irá produzir spots que vão começar a se fundem e tornam-se indistinguíveis. Reduzir a quantidade de estimulantes nos meios de cultura ou cultura para um curto período de tempo </td></tr><tr><td> Spots mal definidas </td><td> 1. Membrana não pré-tratados (se sua membrana exige isso, verifique com o fornecedor) 2. Movimento da placa durante a incubação de células </td><td> 1. A membrana deve ser pré-tratados com etanol ou isso pode resultar em fuzzy, spots mal definidos. Vai ser difícil para o leitor a distinguir estes 2. Não permita que a placa se mover durante a incubação de células como as células que se mudaram irá criar mais de um ponto. Se possível, use uma incubadora dedicada que não será aberto durante a incubação. Não toque na placa após a adição de células </td></tr><tr><td> Controle positivo poços é baixa </td><td> 1. Subdesenvolvimento - pode ser resultado do uso de streptavidina-ALP e / ou BCIP / NBT soluções que não foram trazidas à temperatura ambiente </td><td> 1. Trazer os reagentes à temperatura ambiente antes de adicionar aos poços </td></tr><tr><td> Densidade dos pontos faz com que seja difícil quantificá-los </td><td> 1. Células demais foram adicionados aos poços </td><td> 1. Fazer diluições de células (ou seja, 1 x 10 6, 5 x 10 5, 1 x 10 5, 5 x 10 4, 1 x 10 4 células por poço) para determinar o número ideal de células que irá resultar na formação de pontos distintos </td></tr></tbody></table>

<ol><li>Dosanjh, D. P., Hinks, T. S., Innes, J. A., Deeks, J. J., Pasvol, G., Hackforth, S., Varia, H., Millington, K. A., Gunatheesan, R., Guyot-Revol, V., Lalvani, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+diagnostic+evaluation+of+suspected+tuberculosis%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Intern+Med%22%5BJournal%5D)">Improved diagnostic evaluation of suspected tuberculosis.</a> Ann Intern Med. 148, 325-336 (2008).</li>
<li>Sung, H. K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diagnosis+of+abdominal+tuberculosis+by+T-cell+based+assays+on+peripheral+blood+and+peritoneal+fluid+mononuclear+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Infection%22%5BJournal%5D)">Diagnosis of abdominal tuberculosis by T-cell based assays on peripheral blood and peritoneal fluid mononuclear cells.</a> Journal of Infection. 59, 409-415 (2009).</li>
<li>Kim, S. -H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diagnosis+of+Central+Nervous+System+Tuberculosis+by+T-Cell-Based+Assays+on+Peripheral+Blood+and+Cerebrospinal+Fluid+Mononuclear+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+and+Vaccine+Immunology%22%5BJournal%5D)">Diagnosis of Central Nervous System Tuberculosis by T-Cell-Based Assays on Peripheral Blood and Cerebrospinal Fluid Mononuclear Cells.</a> Clinical and Vaccine Immunology. , 1356-1362 (2008).</li>
<li>Drake, W. P., Dhason, M. S., Nadaf, M., Shepherd, B. E., Vadivelu, S., Hajizadeh, R., Newman, L. S., Kalams, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+recognition+of+Mycobacterium+tuberculosis+ESAT-6+and+KatG+peptides+in+systemic+sarcoidosis%5BTitle%5D)+AND+%22Infect+Immun%22%5BJournal%5D)">Cellular recognition of Mycobacterium tuberculosis ESAT-6 and KatG peptides in systemic sarcoidosis.</a> Infect Immun. 75, 527-530 (2007).</li>
<li>Allen, S. S., Evans, W., Carlisle, J., Hajizadeh, R., Nadaf, M., Shepherd, B. E., Pride, D. T., Johnson, J. E., Drake, W. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Superoxide+dismutase+A+antigens+derived+from+molecular+analysis+of+sarcoidosis+granulomas+elicit+systemic+Th-1+immune+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Respir+Res%22%5BJournal%5D)">Superoxide dismutase A antigens derived from molecular analysis of sarcoidosis granulomas elicit systemic Th-1 immune responses.</a> Respir Res. 25, 36-36 (2008).</li>
<li>Mutsvangwa, J., Millington, K. A., Chaka, K., Mavhudzi, T., Cheung, Y. B., Mason, P. R., Butterworth, A. E., Corbett, E. L., Lalvani, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identifying+recent+Mycobacterium+tuberculosis+transmission+in+the+setting+of+high+HIV+and+TB+burden%5BTitle%5D)+AND+%22Thorax%22%5BJournal%5D)">Identifying recent Mycobacterium tuberculosis transmission in the setting of high HIV and TB burden.</a> Thorax. 65, 315-320 (2010).</li>
<li>Streeck, H., Frahm, N., Walker, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+IFN-gamma+Elispot+assay+in+HIV+vaccine+research%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">The role of IFN-gamma Elispot assay in HIV vaccine research.</a> Nat Protoc. 4, 461-469 (2009).</li>
<li>Chaudhary, N., Staab, J. F., Marr, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Healthy+human+T-Cell+Responses+to+Aspergillus+fumigatus+antigens%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Healthy human T-Cell Responses to Aspergillus fumigatus antigens.</a> PLoS One. 5, e9036-e9036 (2010).</li>
<li>Manigold, T., Mori, A., Graumann, R., Llop, E., Simon, V., Ferr, S. M., Valdivieso, F., Castillo, C., Hjelle, B., Vial, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Highly+differentiated%2C+resting+gn-specific+memory+CD8%2B+T+cells+persist+years+after+infection+by+andes+hantavirus%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathog%22%5BJournal%5D)">Highly differentiated, resting gn-specific memory CD8+ T cells persist years after infection by andes hantavirus.</a> PLoS Pathog. 6, e1000779-e1000779 (2010).</li>
<li>Ndongala, M. L., Kamya, P., Boulet, S., Peretz, Y., Rouleau, D., Tremblay, C., Leblanc, R., Côté, P., Baril, J. G., Thomas, R., Vézina, S., Boulassel, M. R., Routy, J. P., Sékaly, R. P., Bernard, N. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Changes+in+function+of+HIV-specific+T-cell+responses+with+increasing+time+from+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Viral+Immunol%22%5BJournal%5D)">Changes in function of HIV-specific T-cell responses with increasing time from infection.</a> Viral Immunol. 2, 159-168 (2010).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

O ensaio de ELISPOT tem emergido como um dos ensaios mais importantes e amplamente utilizados para monitorar as respostas imunes em humanos e uma variedade de outras espécies. Com o ensaio ELISPOT, as freqüências de células imunes podem ser medidos no nível da célula única, sem expansão ou a manipulação de populações de células. ELISPOT tem sido amplamente aplicado para investigar antígeno específico respostas imunes em várias doenças, incluindo infecções, câncer, alergias e doenças auto-imunes. A aplicação deste ensaio...

A. Preparação de Mídia <img src="/files/ftp_upload/2221/2221materialsA.jpg" alt="Materiais A"> B. Elaboração de Tris tampão <ol><li> Adicione 800 ml de DDH 2 O a 1 copo L. </li><li> Medida 12 gramas de Tris e adicione ao copo. </li><li> Adicionar 0,12 gramas de cloreto de magnésio hexa-hidratado (MgCl 2: 6H 2 O) no copo. </li><li> Mexa com vara de agitação magnética na placa de agitação automática. </li><li> Uma vez dissolvido, pH da solução para 9,5. </li><li> Adicionar 200 mL de DDH 2 O para o copo, levando-o até 1000ml. </li><li> Filtrar a solução com um filtro de 0,22 mM. </li></ol> C. Materiais necessários para as análises ELISPOT: <img src="/files/ftp_upload/2221/2221materialsb.jpg" alt="Materiais B">

enzyme-linked immunospot assay (elispot): quantificação de th-1 respostas imunes celulares contra antígenos microbianos

Enzyme-linked Immunospot Assay (ELISPOT):  Quantification of Th-1 Cellular Immune Responses Against Microbial Antigens

Imunidade adaptativa é um componente importante para eliminação de patógenos intracelulares. A capacidade de detectar e quantificar essas respostas em seres humanos é uma importante ferramenta de diagnóstico. O ensaio de enzyme-linked immunospot (ELISPOT) está ganhando popularidade por sua capacidade de identificar respostas imunes celulares contra antígenos microbianos, incluindo populações imunossuprimidos, como aqueles com infecção pelo HIV, transplante e uso de esteróides. Este ensaio tem a capacidade de quantificar as respostas imunes contra antígenos microbianos específicos, bem como distinguir se estas respostas são Th1 ou Th2 em caráter. ELISPOT não se limita ao local da inflamação. É versátil na sua capacidade para avaliar a resposta imune no sangue periférico, bem como sites de envolvimento ativo, como lavado broncoalveolar, líquor cerebral, e ascite. Detecção de resposta imunológica contra um antígeno único ou múltiplo é possível, bem como epitopos específicos dentro de proteínas microbianas. Este ensaio facilita a detecção das respostas imunes ao longo do tempo, assim como distinções na antígenos reconhecidos pelas células T host. Ensaios de ELISPOT dupla de cores estão disponíveis para a detecção de expressão simultânea de duas citocinas. Aplicações recentes para esta técnica incluem o diagnóstico de tuberculose extrapulmonar, bem como a investigação da contribuição de antígenos infecciosos de doenças auto-imunes.

Identificação de alvos microbiana da imunidade adaptativa em doenças idiopática pode ser realizado através da utilização do ensaio immunospot enzyme-linked.

Enzyme-linked immunospot Assay (ELISPOT): Quantificação de Th-1 respostas imunes celulares contra antígenos microbianos

A imunidade adaptativa é um componente importante para a eliminação de patógenos intracelulares. A capacidade de detectar e quantificar essas respostas em humanos é um...

O objetivo geral deste procedimento é detectar respostas de linfócitos T a antígenos de interesse. Isso é realizado primeiramente por meio da codificação com anticorpos de captura. O segundo passo do procedimento consiste em adicionar células e os antígenos de interesse e, em seguida, incubar durante a noite.O terceiro passo do procedimento é adicionar os anticorpos de detecção. O passo final do procedimento é desenvolver a placa com reagentes de substrato e analisar as manchas. Em última análise, podem ser obtidos resultados que identificam citocinas de interesse por meio da análise de unidades formadoras de manchas.Olá, meu nome é Dra. Ki Richter e sou instrutora de pesquisa no laboratório da Dra. Wonder Drake na Universidade Vanderbilt, na divisão de Doenças Infecciosas. Hoje vamos demonstrar a técnica Ellie Spot, também conhecida como ensaio imunoenzimático em placa com detecção de pontos. As Doutoras Isfahan Chambers e Tiffany Cone irão demonstrar a técnica para vocês hoje.Para manter os padrões de cultura celular, realize manipulações em condições estéreis na câmara de fluxo laminar, abra uma placa com poços circulares e lave três vezes com PBS. Prepare uma solução de revestimento do anticorpo de captura em PBS. Misture bem por vortexagem para facilitar.Transfira a solução de anticorpo para um reservatório da pipeta multicanal e distribua alíquotas de 100 microlitros da solução de revestimento em cada poço. Selle bem a placa com perfil e coloque na geladeira durante a noite. Essas placas revestidas com anticorpo são estáveis por semanas.A regra geral determina que uma placa pode ser utilizada se ainda houver líquido nos poços. Para preparar as células para este ensaio, marque os linfócitos mononucleares do sangue periférico recém-isolados com trien azul para avaliar a viabilidade e conte-os. Plaque os PBMC a 2 milhões de células por mililitro no meio 10 e incube durante a noite a 37 graus Celsius com 5% de dióxido de carbono. Para acompanhar o experimento, rotule a tampa da placa Ali spot com o número de identificação da amostra, as condições dos poços e a data.Lave a placa seis vezes com PBS estéril utilizando o método de descarte e absorção. Tenha cuidado para não derramar a placa ao descartar, pois isso pode fazer com que os poços da placa fiquem roxos. Adicione nosso meio 20 a cada poço e incube a placa a 37 graus Celsius por uma hora.Enquanto a placa está em incubação, conte as células que foram mantidas em repouso durante a noite. Recolha os pbmc por centrifugação. Decante o sobrenadante e ressuspenda o pellet em nosso meio 10 na concentração de 1 milhão de células por mililitro.Após a incubação de uma hora da placa de cultura em gota, remova o meio R 20 utilizando o método de descarte e secagem. Tenha cuidado para não provocar respingos na placa durante o descarte. Adicione 100 microlitros de suspensão celular a cada uma.Seguiremos o delineamento experimental com a adição de peptídeos e antígenos aos poços de teste correspondentes. Inclua sempre um controle negativo de células sem peptídeos e também poços controle positivo com fitohemaglutinina adicionada. Incube a placa durante a noite a 37 graus Celsius com 5% de dióxido de carbono.Lave a placa seis vezes com 150 microlitros de um XPBS utilizando o método de descarte e absorção. Adicione 100 microlitros de PBS a cada poço da placa e coloque a placa na geladeira ou à temperatura ambiente por 15 minutos. Enquanto isso, prepare a solução de anticorpo biotinilado em PBS.Retire a placa de poços ALI da geladeira e descarte o PBS descartando-o na cesta de resíduos. Tenha cuidado para não salpicar a placa ao adicionar uma alíquota da solução de anticorpo biotinilado em cada poço e incube a placa na câmara de cultura tecidual à temperatura ambiente por uma hora. Lave a placa seis vezes com PBS utilizando o método de descarte e absorção, aplicando esse método também na última lavagem.Deixe o PBS na placa agora. Prepare a solução de anticorpo STREPTAVIDINA em PBS, certificando-se de fazer vórtex na solução para misturar. Descarte a última lavagem de PBS dos poços e monte a placa de pontos ALI.Adicione a solução de anticorpo estreptavidina a cada poço e incube a placa na capela de cultura de tecidos à temperatura ambiente por uma hora. Para remover o anticorpo trevain em excesso, lave a placa seis vezes com PBS, utilizando o método de descarte e absorção no último ciclo de lavagem, deixando o PBS sobre a placa. Considere a sensibilidade à luz da solução de substrato de fosfatase alcalina B-C-I-P-M-B-T.Trabalhe no escuro ao preparar a solução de substrato conforme descrito pelos fabricantes nas instruções do kit de substrato de fosfatase alcalina; descarte o PBS remanescente dos poços e seque delicadamente a placa com manchas. Adicione a solução de substrato a cada poço e acenda a luz. Após cinco a 10 minutos de desenvolvimento da coloração, deixe os reagentes na placa até que as manchas comecem a ficar roxas e estejam bem escuras.Isso leva até 20 minutos. Lave a placa de poços Ali três vezes com água da torneira e deixe secar ao ar. Cada placa contém um controle positivo, um controle negativo e o peptídeo de interesse, realizados no mínimo em duplicata.Os poços do controle positivo apresentam uma coloração roxa intensa, refletindo uma camada confluente de células e praticamente nenhum fundo branco. Os poços do controle negativo não apresentam fundo roxo nem manchas, conforme esperado. Os poços das amostras-teste ilustram as respostas celulares a peptídeos microbianos aqui.As manchas roxas representam uma única célula responsiva que expressa a citocina de interesse ao realizar a técnica LA spot. Tenha cuidado para não perfurar a membrana com as ponteiras da pipeta nem permitir que sua placa seque, pois isso resultará em um fundo elevado.

enzyme-linked-immunospot-assay-elispot-quantification-th-1-cellular

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Imunologia e Infecção

A caracterização de epítopos de células T de patógenos que causam infecções localizadas, como o papilomavírus humano, é um desafio devido ao número limitado de células T em circulação. É descrito um método no qual células T raras foram isoladas e caracterizadas a partir de um número muito pequeno de células.

O uso de interferão-γ Enzyme-linked Assay immunospot Caracterizar Novel epitopos de células T de papilomavírus humano

Este vídeo demonstra o uso do ensaio ELISpot para avaliar a função das células B secretoras de anticorpos, ASCs. Os anticorpos secretados pelas ASCs interagem com os fragmentos de anticorpos policlonais ligados à membrana, que são detectados pelos anticorpos IgG ou IgM conjugados com enzimas. A mancha colorida produzida em cada poço indica a presença do isotipo do anticorpo específico, que se correlaciona com a atividade secretora das células B.

Avaliação funcional de células B secretoras de anticorpos usando o ensaio ELISpot

Novel gerações de ensaios funcionais, tais como o interferão gama (IFN-γ) ELISpot, que detectam a produção de citoquinas ao nível de células individuais e fornecer tanto a caracterização quantitativa e qualitativa das respostas das células T pode ser utilizado para avaliar as respostas imunes mediadas por células contra a varicela zoster vírus (VZV).

Desenvolvimento de uma varicela-zoster imunidade mediada por células específicas do vírus ELISpot Ensaio para Avaliar-γ IFN Após Cordão Umbilical Transplante de Sangue

Ensaio enzyme-linked immunospot cultivadas interferão-γ longo termo é usado como uma medida das respostas de memória central e correlaciona-se com a resposta à vacina anti-micobacterianos de protecção. Com este ensaio, as células mononucleares de sangue periférico são estimuladas com antigénios micobacterianos e interleucina-2 durante 14 dias, permitindo a diferenciação e a expansão das células T de memória central.

Aplicação de longo prazo cultivadas Interferon-γ Enzyme-linked Immunospot Ensaio para a Avaliação e efetoras de memória T respostas de células em gado

O sangue periférico humano é comumente usado para a avaliação da resposta imune humoral. Aqui, são descritos os métodos para isolar células B humanas do sangue periférico, diferenciar células B humanas em células B secretoras de anticorpos (Ab) (ASCs) em cultura e enumerar o total de IgM- e IgG-ASCs por meio de um ensaio ELISpot.

O isolamento, a diferenciação e a quantificação de anticorpo humano secretoras de células B de sangue: ELISpot como uma leitura funcional de Imunidade Humoral

QA-1 (HLA-E em humanos) pertence a um grupo de moléculas de 1b complexo principal de histocompatibilidade não-clássica. Imunização com resumos de Qa-1-ligação foi mostrada para aumentar o tecido-específica Regulamento imune e amenizar várias doenças auto-imunes. Neste documento descrevemos uma estratégia de biblioteca de peptídeo sobreposição para a identificação de epitopos de Qa-1 em uma proteína.

Biblioteca de peptídeo sobreposição para mapear os resumos de Qa-1 em uma proteína

Neste trabalho, descrevemos um protocolo para caracterizar T-dependentes e T-independentes respostas do isotipo de imunoglobulina (Ig) em camundongos usando ELISA. Este método usado sozinho ou em combinação com fluxo cytometry permitirá que os investigadores a identificar diferenças nas respostas de isotipo Ig mediada por células B em camundongos após imunização de antígenos T-dependentes e T-independentes.

Caracterização das respostas de isotipo de imunoglobulina Timo-dependentes e Timo-independente nos ratos usando ensaio enzima-lig da imunoabsorção

O desenvolvimento do ensaio ELISpot para cobaia PBMCs interferão-gama permite a caracterização das respostas de células T neste modelo altamente relevantes para o estudo de doenças infecciosas. Temos aplicado o ensaio para medir respostas de células T associadas a intradérmica entrega de vacinas de DNA.

Ensaio de ELISpot otimizado de Interferon-gama às respostas de célula T medida no modelo de porquinho da Índia após a vacinação

Aqui, apresentamos um protocolo para o ex vivo deteção qualitativa do antígeno-específicos CD8+ T células. Análise é possível com suspensões celulares único de órgãos ou de pequenas quantidades de sangue. Uma ampla gama de estudos requer a análise das respostas de célula de T citotóxicas (vacinação e estudos de imunoterapia do câncer).

Quantificação simultânea de vetor anti e Antiespecíficas do transgene CD8+ T células Via MHC tetrâmero coloração após a vacinação com um vetor Viral

O protocolo apresenta métodos detalhados para avaliar se o adjuvante da nanoemulsão ofiopogonina D promove respostas imunes celulares eficazes.

In vitro Avaliação da Atividade Celular da Vacina de Nanoemulsão Adjuvante Ofiopogonina D

Aprenda a realizar o ensaio ELISPOT para detectar respostas de células T contra antígenos microbianos. Este método permite quantificar citocinas e identificar alvos imunológicos em doenças idiopáticas.

Enzyme-linked immunospot Assay (ELISPOT): Quantificação de Th-1 respostas imunes celulares contra antígenos microbianos

Explorar mais vídeos