JoVE Encyclopedia of Experiments
Neurociência
0 vistas • 3:46 min • July 8th, 2025
Pegue uma matriz de microeletrodos, ou MEA, bem, contendo aCSF. Posicione uma fatia da medula espinhal do rato no poço e prenda-a com uma rede pesada.
Coloque o poço MEA em um sistema de registro. Sob um microscópio, garanta o contato máximo entre os eletrodos MEA e o corno dorsal superficial ou SDH, uma região rica em interneurônios.
Mantenha um fluxo contínuo de aCSF para equilibrar o tecido.
Os neurônios se comunicam por meio de potenciais de ação. O influxo de íons de sódio despolariza a membrana, seguido pelo fluxo de íons de potássio que causa a repolarização. A membrana hiperpolariza brevemente, impedindo um novo potencial de ação até que o potencial de repouso seja restaurado.
Registre a atividade neuronal espontânea dos eletrodos MEA. Os sinais que ocorrem em vários eletrodos indicam uma rede de neurônios ligados sinapticamente.
Introduza um inibidor do canal de potássio para prolongar a despolarização que leva ao aumento da frequência do potencial de ação e da atividade rítmica síncrona em toda a rede.
Mais eletrodos mostrando sinais coincidentes indicam a atividade síncrona mediada por inibidor.
Para começar a registrar a atividade do corno dorsal, transfira a fatia da incubadora para o poço MEA usando uma pipeta Pasteur de ponta grande cheia de LCR artificial e adicione LCR artificial adicional.
Use um pincel fino de pêlo curto para posicionar a fatia sobre a matriz de gravação de 60 eletrodos. Em seguida, coloque uma rede pesada sobre o tecido para mantê-lo no lugar e promover um bom contato com os eletrodos MEA.
Coloque o MEA no estágio da cabeça de gravação. Verifique a posição do tecido sobre os eletrodos usando um microscópio invertido para confirmar se o maior número possível de eletrodos está sob a DH superficial. Certifique-se de que pelo menos dois a seis eletrodos não entrem em contato com a fatia.
Depois de conectar a câmera ao dispositivo, tire uma imagem de referência da fatia em relação ao MEA para uso durante a análise. Em seguida, pressione Iniciar DAQ no software de gravação e confirme se todos os eletrodos recebem um sinal claro.
Em seguida, conecte as linhas de entrada e saída de perfusão ao MEA bem preenchido com LCR artificial e ligue o sistema de perfusão. Verifique a vazão e certifique-se de que a vazão seja suficiente para evitar o transbordamento do superfusato. Depois de equilibrar o tecido por cinco minutos, registre os dados brutos da linha de base por cinco minutos.
Mova a linha de entrada de perfusão do LCR artificial para uma solução de 4-aminopiridina e aguarde 12 minutos para que a atividade rítmica induzida por 4-aminopiridina atinja o estado estacionário. Em seguida, registre cinco minutos de atividade induzida pela 4-aminopiridina e esteja preparado para as gravações subsequentes para testar as drogas ou verificar a estabilidade da 4-aminopiridina.
Este estudo demonstra um método para registrar a atividade neuronal espontânea de fatias de medula espinhal de camundongo utilizando uma matriz de microeletrodos (MEA). A abordagem permite a observação de interações sinápticas e os efeitos de agentes farmacológicos sobre a atividade neuronal.
Essa abordagem com matriz de microeletrodos (MEA) permite a investigação direta da dinâmica de redes neurais em circuitos nociceptivos da medula espinhal, apoiando a validação de alvos na pesquisa da dor. Ao capturar padrões de atividade sincrônica e modulação farmacológica, fornece confiança preditiva para a redução de riscos mecanicistas de compostos ativos no SNC. O método conecta a eletrofisiologia de descoberta com a prontidão do ensaio para a identificação de fármacos analgésicos promissores.
O método se insere na fase inicial da descoberta, apoiando a verificação de hipóteses na validação de alvos e permitindo o desenvolvimento de ensaios para cascatas de triagem focadas em canais iônicos.
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Última atualização: 29 agosto 2026