Name: Um método para gerar Pulmonar Neutrofilia Usando Aerosolized Lipopolysaccharide (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-12-15T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 33 s
Description: Aprenda a induzir neutrofilia pulmonar em camundongos usando LPS aerossolizado. Este método permite avaliar recrutamento de neutrófilos e inflamação aguda pulmonar com distribuição uniforme e alta reprodutibilidade.

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Gostaríamos de agradecer a Kerstin Thim (AstraZeneca, Lund, Suécia), Benita Dahlberg e Dr. Anders Eklund (Karolinska Institutet, em Estocolmo, Suécia), bem como Dr. Martin Stampfli (Universidade McMaster, Hamilton, ON, Canadá) para obter assistência hábil e conselhos de especialistas.

Os estudos com animais foram aprovados pelo comitê de ética bem-estar animal do Norte Estocolmo. Os procedimentos experimentais foram realizados em conformidade com a lei sueca. 1. Gerando um LPS Aerosol <ol><li> Dissolve-se 0,5 g purificado P. aeruginosa LPS em 50 ml de solução salina estéril com agitação suave e verificar dissolução. Dilui-se 1 ml de LPS dissolvidos em 9 ml de solução salina estéril, a uma concentração final de 1 mg / ml. Proteger da luz com papel alumínio e armazenar a -20 ° C. </li><li> Descongelar LPS solubilizados no escuro à temperatura ambiente e misture bem imediatamente antes da utilização. </li><li> Em um ventilado nível II capô biohazard, inserir uma entrada de vermelho em um nebulizador e ligue o nebulizador ao ar ambiente pressurizado através do tubo fornecido pelo (esquema de avaliação apresentando os dispositivos experimentais na Figura 1) fabricante. CUIDADO: equipamento de protecção individual adequado, incluindo uma meia peça facial Respirat reutilizávelou com filtros de partículas, óculos de proteção, luvas e vestuário de protecção deve ser utilizado durante o curso da exposição. </li></ol><img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/51470/51470fig1highres.jpg" /> Figura 1:. Apresentação esquemática dos dispositivos experimentais utilizados para a geração de um aerossol A entrada do nebulizador é ligado a uma alimentação de ar. A saída do nebulizador é primeiro ligado a um medidor de fluxo através de um tubo de 15,9 milímetros e um filtro de ar, e de fornecimento de ar é ajustado para 5,0 L / m a 2 kbar pressão. A saída está próxima ligado a uma caixa de acrílico equipados com tampas removíveis e 5 furos mm para evitar aumento de pressão. <ol start="4"><li> Ligue a saída do nebulizador a um medidor de fluxo de massa através de um filtro de ar. Ligue o medidor de vazão em massa para uma alimentação eléctrica. </li><li> Ajuste o suprimento de ar para 5 L / min, com a pressão restante em 1,0-2,0 bar. </li><li> Remova o medidor de vazão em massa edesligue o suprimento de ar. </li><li> Ligue a saída do nebulizador para um tubo de 15,9 milímetros, o que se bifurca e conecta-se duas caixas de Plexiglas com as dimensões: 150 x 163 x 205 milímetros, equipados com tampas removíveis. Cada caixa deve ter um buraco de cinco milímetros no lado oposto da entrada, para evitar acúmulo de pressão. </li><li> Coloque até 5 ratos em cada caixa de acrílico e feche as tampas. </li><li> Abra o nebulizador e encher o inserto com pelo menos 4 ml de LPS dissolvidos em soro fisiológico estéril ou apenas veículo (solução salina estéril; o volume não deverá exceder 8 ml). Volte a ligar a entrada para o suprimento de ar. </li><li> Permitir que o aerossol para fluir para dentro das caixas de Plexiglas fechados durante 10 min. Monitorar continuamente os animais. Certifique-se o fornecimento de ar permanece firmemente fixado à entrada do nebulizador. </li><li> Desligue o fornecimento de ar. Com as pálpebras fechadas, deixe os animais permanecem nas caixas de acrílico para 2 min. </li><li> Abrir as tampas e para permitir que o aerossol para dispersar, e devolver os animais atele gaiolas. Se os animais aparecem molhados, coloque as gaiolas em uma almofada de aquecimento definido para fogo baixo, para evitar a hipotermia. </li><li> Monitorizar os animais continuamente durante os primeiros 30 minutos, e posteriormente, a cada 2 horas durante as primeiras 6 horas. Os animais devem apresentar padrão respiratório e da actividade normal durante e após o procedimento de nebulização. </li></ol> 2. Lavagem Broncoalveolar (BAL) <ol><li> No ponto final experimental, profundamente anestesiar os animais com isoflurano a efeito tal como recomendado pela equipe de veterinários da sua instituição. Aperte a pata traseira para verificar se há um reflexo de retirada para assegurar suficiente profundidade da anestesia para realizar cirurgia de grande porte. Spray para baixo a pele dos animais com etanol 70%. </li><li> Abra o abdômen com uma tesoura e cortar a aorta para desangrar o animal. Coloque um pedaço de tecido sobre o abdômen para absorver o sangue. </li><li> Follwing eutanásia, use um único corte ântero-posterior da tesoura paraexpor o tórax. Levante a caixa torácica pela ponta anterior do esterno e use a tesoura para perfurar o diafragma no ponto mais ventral, sem cortar qualquer lobo pulmonar. Abra a caixa torácica, fazendo dois cortes no sentido ântero-posterior (reuniões abaixo da mandíbula). </li><li> Delicadamente, puxe a caixa torácica com a pinça, e cortar a traqueia, abaixo da laringe. </li><li> Levante a traquéia com a pinça e remover os pulmões, cortando os ligamentos que ligam os lobos para a cavidade torácica, e puxando pelo tecido adiposo e cardíaca. </li><li> Insira um tubo de polietileno (diâmetro interno de 0,58 mm; diâmetro externo: 0,965 milímetros) na traquéia e fixar o tubo com uma corda de fio de seda. </li><li> Empate fora do multilobe (os quatro lobos do pulmão direito) com fio de seda. </li><li> Insira uma agulha de calibre 23 para dentro do tubo de polietileno e injetar lentamente 250 mL de gelada PBS estéril para o lobo único com uma seringa de 1 ml. </li><li> Tocar com cuidado os pulmões30 vezes e recolher o líquido através da seringa. Repetir o processo com 200 ul de PBS (aproximadamente 300 ul de PBS deve ser recuperado a partir do lobo único a partir do volume total de 450 ul injectados). </li><li> Mantenha o lavado bronco-alveolar (LBA) em gelo, ou enumerar as células do LBA imediatamente. Contar as células com um heamocytometer, utilizando uma solução de Turk para corar as células 11. Calcula-se o número total de células através da multiplicação do número de células com o factor de diluição da solução de coloração e o volume dentro do campo contado do heamocytometer. </li><li> Prepare a contagem diferencial de células a partir de células citocentrifugada como descrito noutro local 11. </li></ol> 3. Formalin fixação do tecido pulmonar para avaliação histológica <ol><li> Retire o multilobe e snap-freeze em gelo seco. Armazenar a -80 ° C. </li><li> Montar uma seringa de 60 ml com o êmbolo removido em um cavalete de suporte de metal. Encher a seringa com 10% de formalina paraa altura de 20 cm acima da bancada do laboratório, representando 20 cm de pressão constante. </li><li> Ligar-se a agulha de calibre 23, fixada à traqueia para a seringa de 60 ml através de um tubo de plástico com uma válvula para controlar o fluxo de formalina. </li><li> Insuflar o lobo pulmonar com formalina durante 5 min. Desligar a agulha e removê-lo em conjunto com o tubo de polietileno a partir da traqueia, enquanto em puxando o fio de seda para fechar a traqueia e manter a pressão no pulmão. </li><li> Submergir o lóbulo do pulmão em formalina e fixar durante 24 horas a 4 ° C. </li><li> Lavar o tecido fixado três vezes durante pelo menos 20 minutos com etanol a 70%, e desidratar a xileno através do seguinte esquema (1 h cada): <ul><li> 3x etanol a 70% </li><li> 3x etanol a 95% </li><li> 3x etanol a 100% </li><li> 3x xileno </li><li> 1x (líquido) parafina </li></ul></li><li> Incorporar tecido desidratado em parafina, cortadas em 4-5 mm seções, e mancha com HE para permitir a avaliação histológica.</li>
</ol>

<ol><li>King, J. D., Kocincova, D., Westman, E. L., Lam, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Review%3A+Lipopolysaccharide+biosynthesis+in+Pseudomonas+aeruginosa%5BTitle%5D)+AND+%22Innate+Immun%22%5BJournal%5D)">Review: Lipopolysaccharide biosynthesis in Pseudomonas aeruginosa.</a> Innate Immun. 15, 261-312 (2009).</li>
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<li>Mercer, P. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proteinase-Activated+Receptor-1%2C+CCL2+and+CCL7+Regulate+Acute+Neutrophilic+Lung+Inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Respiratory+Cell+and+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Proteinase-Activated Receptor-1, CCL2 and CCL7 Regulate Acute Neutrophilic Lung Inflammation.</a> American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. , (2013).</li>
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<li>Bafadhel, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+Exacerbations+of+COPD%3A+Identification+of+Biological+Clusters+and+Their+Biomarkers%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Respir.+Crit.+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Acute Exacerbations of COPD: Identification of Biological Clusters and Their Biomarkers.</a> Am. J. Respir. Crit. Care Med. , 201104-200597 (2011).</li>
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</ol>

Abraham Roos recebeu uma taxa conferencista da Boehringer Ingelheim, bolsas de viagem de AstraZeneca R &amp; D e uma bolsa de pesquisa da AstraZeneca R &amp; D. Magnus Nord é um funcionário em tempo integral da AstraZeneca R &amp; D e tem recebido bolsas de pesquisa da AstraZeneca R &amp; D. Johan Grunewald e Tove Berg são co-pesquisadores em um projeto de pesquisa relacionado financiado pela AstraZeneca R &amp; D.

Em aerossol de LPS gera uma resposta inflamatória nas vias aéreas, caracterizada por neutrófilos na submucosa epitelial, espaços circundantes as vias aéreas de condução, bem como os espaços alveolares. Isto é, em conjunto com o aumento do conteúdo de proteína total na LBA, indicativo de perda de plasma, representativo da patologia da lesão pulmonar aguda. Como LPS induz uma inflamação estéril, a reacção é independente da resposta imune adaptativa, e existem limitações para a relevância para infecções bacterianas. A técn...

O lipopolissacárido (LPS) é um componente da parede celular de bactérias gram-negativas 1. Desafio ao LPS é um modelo bem documentado da lesão pulmonar aguda, uma síndroma caracterizada por inflamação e edema agudo neutrofílica 2. Além disso, a neutrofilia pulmonar é também uma característica da doença pulmonar obstrutiva crónica (DPOC) 3, e provocação com LPS em seres humanos tem sido utilizado para modelar as exacerbações da DPOC 4. Assim, modelos experimentais de exposição LPS são clinicamente relevantes e ferramentas valiosas para entender a patologia humana. O objetivo da administração pulmonar de LPS aerossol descritas aqui é gerar uma resposta inflamatória neutrofílica na condução e vias respiratórias, sem envolvimento sistêmico. Várias técnicas de provocação com LPS foram descritos anteriormente. Injecção intra-venosa do LPS é a via de administração mais utilizada. Embora esta técnica é facilmente acessível, tele dano primário é para o endotélio, com destruição secundário do epitélio pulmonar após a migração de neutrófilos para o pulmão. A administração intra-venosa também induz inflamação sistémica 2, o que pode complicar o quadro clínico em modelos animais. Inflamação sistémica está em contraste não observados com a administração intra-traqueal. Esta técnica, no entanto, é trabalhoso e requer anestésicos, bem como treinamento considerável 5, 6. Além disso, a deposição pulmonar por esta via de administração é dependente de respiração 7. Assim, a deposição pulmonar é afectada pela profundidade da anestesia necessários para a administração intra traqueal e variável deposição nas vias aéreas pode ser observada. Em contraste, a administração pulmonar com LPS requer o mínimo de formação de aerossol, e pode ser facilmente conseguido com um grande número de animais com pouca ou nenhuma variação entre indivíduos 5, 8.Um estudo recente confirmou que o fornecimento de aerossol é superior a via intra-traqueal em relação à deposição, e que doses mais pertinentes do LPS induzir inflamação neutrofílica com este modelo 8. Estudos anteriores demonstraram que a desafio aerossolizado Psuedomonas aeruginosa LPS gera uma resposta inflamatória significativa no lúmen das vias aéreas e do parênquima pulmonar, incluindo os espaços alveolares 9, 10. A inflamação é caracterizada pela predominância de neutrófilos e presença de edema pulmonar, e pode, assim, ser usado para endereçar patogénese da lesão pulmonar aguda e ganhar conhecimento adicional sobre os mecanismos que contribuem para a patologia da doença.

<table><tbody><tr><td>LPS purificado de &lt;em&gt;Pseudomonas aeruginosa&lt;/em&gt;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td>Nocivo. Purificação recomendada. Pode-se usar LPS purificado de outras bactérias.</td></tr><tr><td>Nebulizador Pari LC sprint star</td><td>PARI Respiratory Equipment Inc.</td><td>023G1250</td><td></td></tr><tr><td>Fluquímetro TSI mass flowmeter 4040</td><td>TSI</td><td>4040</td><td>Pode-se usar produto alternativo do fornecedor.</td></tr><tr><td>Tubo Tygon Saint-Gobain de 15,9 mm</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Z685704</td><td>Marca recomendada.</td></tr><tr><td>Caixas de plexiglass com tampas removíveis</td><td>Construção personalizada</td><td>N/A</td><td>150 x 163 x 205 mm (um orifício de 2 mm no lado).&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Respirador semifacial reutilizável 3M</td><td>3M</td><td>7503</td><td>Marca recomendada.</td></tr><tr><td>Filtros particulados avançados 3M (P100)&amp;nbsp;</td><td>3M</td><td>2291</td><td>Marca recomendada.</td></tr><tr><td>Tesoura</td><td>VWR</td><td>233-1104</td><td>Pode-se usar a tesoura preferida.</td></tr><tr><td>Pinceta</td><td>VWR</td><td>232-1313</td><td>Pode-se usar a pinceta preferida.</td></tr><tr><td>Tubo de polietileno Intramedic PE50</td><td>BD</td><td>427411</td><td>Marca recomendada.</td></tr><tr><td>Fio de seda Ethicon 2-0 Perma-hand</td><td>VWR</td><td>95056-992</td><td>Marca recomendada.</td></tr><tr><td>Agulha de calibre 26 &amp;frac12;</td><td></td><td></td><td>Existem fornecedores alternativos.</td></tr><tr><td>Seringa BD de 1 ml com ponta lisa, não estéril</td><td><a href="http://catalog.bd.com/bdCat/viewProduct.doCustomer?productNumber=301025" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> BD</a></td><td>301205</td><td>Existem fornecedores alternativos.</td></tr><tr><td>Seringa BD Luer-Lok de 60 ml, não estéril, de polipropileno</td><td>BD</td><td>301035</td><td>Existem fornecedores alternativos.</td></tr><tr><td>Hematoxilina-Eosina Fluka</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>3972</td><td>Existem fornecedores alternativos.</td></tr><tr><td>Solução de &amp;uuml;rk</td><td>Merck Millipore</td><td>109277</td><td></td></tr><tr><td>Centrífuga de bancada</td><td></td><td></td><td>Existem fabricantes alternativos.</td></tr><tr><td>Citocentrífuga Cytospin 4</td><td>Thermo Scientific</td><td>A78300003</td><td>Pode-se usar outra centrífuga.</td></tr><tr><td>Kit de coloração HEMA-3 stat pack</td><td>Fisher Scientific</td><td>23-123-869</td><td>Existem kits de coloração alternativos.</td></tr><tr><td>Solução de formalina neutra tamponada, 10%</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>HT501128</td><td>Existem fornecedores alternativos.</td></tr></tbody></table>

um método para gerar pulmonar neutrofilia usando aerosolized lipopolysaccharide

A Method for Generating Pulmonary Neutrophilia Using Aerosolized Lipopolysaccharide

A lesão pulmonar aguda (LPA) é uma doença grave, caracterizada por neutrofilia alveolar, com opções limitadas de tratamento e alta mortalidade. Modelos experimentais de ALI são fundamentais para melhorar a nossa compreensão da patogênese da doença. O lipopolissacárido (LPS) derivadas a partir de bactérias gram positivas induz inflamação neutrofílica nas vias aéreas e do parênquima pulmonar de ratos. Administração pulmonar eficaz de compostos, tais como LPS é, no entanto, difícil de alcançar. Na abordagem aqui descrita, a administração pulmonar em ratinhos é obtido por desafio com aerossol Pseudomonas aeruginosa LPS. LPS foi dissolvido em aerossol através de um nebulizador conectado ao ar comprimido. Os ratinhos foram expostos a um fluxo contínuo de aerossol de LPS numa caixa de plexiglas durante 10 minutos, seguido de 2 minutos após o condicionamento de aerossol foi descontinuado. Entubação traqueal e subsequente lavagem broncoalveolar, seguido por perfusão de formalina foi realizada próximo, o que permite a caracterização do p estérilinflamação ulmonar. Aerosolized LPS gera uma inflamação pulmonar caracterizada por neutrofilia alveolar, detectado no lavado bronco-alveolar e pela avaliação histológica. Esta técnica pode ser configurado com um custo pequeno, com poucos aparelhos, e exige treinamento e experiência mínima. O sistema de exposição pode, portanto, ser realizado rotineiramente em qualquer laboratório, com o potencial de melhorar a nossa compreensão da patologia pulmonar.

Desafio para aerossol P. aeruginosa LPS geralmente produz uma resposta inflamatória marcado no lúmen das vias aéreas e do espaço alveolar, caracterizado por uma predominância de neutrófilos em ambos os pontos de tempo precoces e tardios. Aerosolized LPS induz neutrophilia pulmonar C57BL / 6BY e BALB / c foram expostos a aerossol P. aeruginosa LPS ou veículo sozinho e neutrófilos foram enumerados no LBA. O número total de células no FLBA dos ratinho...

Descreve-se um método para a indução de inflamação pulmonar neutrofílica desafio por aerossol para lipopolissacarídeo por nebulização, para modelar a lesão pulmonar aguda. Além disso, também são descritas as técnicas cirúrgicas básicas para isolamento pulmonar, intubação traqueal e lavado bronco-alveolar.

Um método para gerar Pulmonar Neutrofilia Usando Aerosolized Lipopolysaccharide

Acute lung injury (ALI) is a severe disease characterized by alveolar neutrophilia, with limited treatment options and high mortality. Experimental models ...

O objetivo geral deste procedimento é gerar uma neutrofilia de vias aéreas consistente e reprodutível por meio da exposição a LPS nebulizado. Isso é realizado primeiramente carregando LPS suspenso em solução salina em um nebulizador conectado a uma câmara de exposição. Em seguida, os camundongos são expostos ao LPS nebulizado e, posteriormente, é coletado o lavado broncoalveolar, sendo então contadas as células inflamatórias presentes no lavado.Por fim, o tecido pulmonar é fixado, formalmente, para inclusão, corte e análise imuno-histoquímica. Em última instância, as contagens totais e diferenciais de células no lavado broncoalveolar podem ser utilizadas para avaliar o recrutamento de neutrófilos para os pulmões. As principais vantagens desta técnica em relação a métodos existentes, como a administração intratraqueal de LPS, são a distribuição uniforme do LPS nebulizado por todo o pulmão, a facilidade de execução e o treinamento mínimo necessário para uma aplicação bem-sucedida. Para gerar um aerossol de LPS utilizando EPI adequado e dentro de uma capela de biossegurança nível 2 ventilada, comece inserindo uma entrada vermelha em um nebulizador e, em seguida, conecte o nebulizador

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Imunologia e Infecção

Nós mostramos, como usar dois fótons de microscopia para a observação da dinâmica de granulócitos neutrófilos nos pulmões infectados, enquanto eles fagocitam patógenos ou produzir neutrófilos armadilhas extracelular (NET).

A observação direta de Fagocitose e NET-formação por neutrófilos em pulmões infectados usando dois fótons Microscopia

Source: Yuan, Z., et al. Bronchoalveolar Lavage Exosomes in Lipopolysaccharide-induced Septic Lung Injury. J. Vis. Exp. (2018)This video demonstrates an in vivo mouse model for inducing and analyzing acute lung injury (ALI) using intraperitoneal administration of bacterial lipopolysaccharide. The inflammatory cascade triggered by alveolar macrophages and neutrophils leads to epithelial and endothelial barrier disruption, allowing fluid and immune cells to accumulate in the alveoli. Alveolar...

Lipopolysaccharide-Induced Acute Lung Injury in Mice for Exosome and Immune Analysis

Este vídeo descreve o procedimento para gerar uma bolsa de ar no tecido subcutâneo de camundongos e coletar exsudatos inflamatórios em resposta à administração de lipopolissacarídeos in vivo. Este vídeo também cobre a análise da infiltração de neutrófilos na bolsa de ar.

Um modelo de camundongo com bolsa de ar para coleta de exsudato inflamatório induzido por lipopolissacarídeo

A resposta imune do hospedeiro à infecção do agente patogénico é um processo fortemente regulado. Utilizando um modelo de exposição do pulmão lipopolissacarídeo em ratos, é possível realizar avaliações de alta resolução dos complexos mecanismos associados à patogênese da doença.

A utilização de orofaringe Intratraqueal Administração PAMP e Lavagem Broncoalveolar para avaliar a resposta imune do hospedeiro em camundongos

O presente trabalho ilustra a conveniência do uso da imunoterapia sublingual para aumentar a resposta imune inata nos pulmões e conferir proteção contra pneumonia pneumocócica aguda em camundongos.

Imunoterapia sublingual como uma alternativa para induzir protecção contra Infecções Respiratórias Agudas

Vários métodos foram descritos na literatura para a modelagem de pneumonia bacteriana em murganhos. Aqui, nós descrevemos um método de baixo custo, rápida não-invasiva para induzir pneumonia por aspiração (isto é, por inalação) de um inoculo bacteriano pipetados para a orofaringe. métodos a jusante para avaliação da resposta imune inata pulmonar também são detalhados.

Um método não-invasivo e tecnicamente não-intensivo para indução e fenotipagem of Experimental pneumonia bacteriana em ratos

Os ratos expostos ao LPS intraperitoneal secretam exosomes no líquido de lavagem (BAL) bronco-alveolar que são embalados com miRNAs. Usando um sistema de co-cultura, mostramos que exosomes lançados no fluido BAL perturbará a expressão de proteínas de junção apertada nas células epiteliais brônquicas e aumentar a expressão de citocinas pró-inflamatórias que acentuam a lesão pulmonar.

Exosomes de lavagem broncoalveolar em lesão pulmonar séptico induzidas pelo lipopolissacarídeo

É apresentado aqui um procedimento passo a passo para induzir ferimento de pulmão agudo nos ratos pela instilação intratraqueal direta do lipopolissacarídeo e para executar a análise de FACS de amostras de sangue, de líquido broncoalveolar do lavagem, e de tecido do pulmão. A invasividade mínima, o manuseio simples, a boa reprodutibilidade e a titulação da severidade da doença são vantagens dessa abordagem.

Induzindo lesão pulmonar aguda em camundongos por instilação de lipopolissacárido intratraqueal direto

Ozônio combinado e endotoxina bacteriana exposição de camundongos mostram morte celular generalizada, incluindo a de neutrófilos. Observamos adaptações celulares como interrupção da lamellipodia citoesquelética, aumento da expressão celular da complexa subunidade de synthase V ATP β e angiostatina na lavagem bronco-alveolar, supressão da resposta imune pulmonar e recrutamento retardado de neutrófilos.

Visualizando adaptações celulares pulmonares durante a lesão pulmonar aguda de ozônio e LPS induzidas por LPS

Neste trabalho, propomos um protocolo para a administração intratraqueal de lipopolissacarídeo (LPS) via intubação endotraqueal orofaríngea não invasiva. Este método minimiza o trauma do procedimento cirúrgico para o animal e entrega com precisão LPS para a traqueia e, em seguida, para os pulmões.

Instilação não invasiva de lipopolissacarídeo intratraqueal em camundongos

Neste estudo, uma técnica não invasiva de instilação endotraqueal demonstrou desenvolver ALI em ratos usando um laringoscópio básico para garantir a entrega precisa de LPS aos pulmões. O LPS é injetado por meio de um tubo endotraqueal usando um laringoscópio. A magnitude da lesão pulmonar é avaliada em vários momentos.

Administração endotraqueal não invasiva de lipopolissacarídeo para induzir lesão pulmonar aguda em roedores

Aprenda a induzir neutrofilia pulmonar em camundongos usando LPS aerossolizado. Este método permite avaliar recrutamento de neutrófilos e inflamação aguda pulmonar com distribuição uniforme e alta reprodutibilidade.

Um método para gerar Pulmonar Neutrofilia Usando Aerosolized Lipopolysaccharide

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