Name: Viabilidade de Bioprinted celulares Construções Usando uma impressora cartesiano Dispenser Três (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-09-22T16:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 5 s
Description: Aprenda a criar construtos viáveis com células humanas de tecido adiposo usando bioprinting 3D com bio tinta de alginato. Este método permite posicionamento preciso de células para engenharia de tecidos.

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Este trabalho foi apoiado pelo Suporte Governo sob Grant No. EPS-0903795 concedidas pela Fundação Nacional de Ciência, NIH NIDCR R01-DE019355 (MJY PI), e Grant 8P20 GM103444 (YM PI).

1. Preparação de gelatina substrato contendo for Three-Dimensional bioprinting de hidrogéis de alginato <ol><li> Prepara-se o substrato de cálcio / gelatina seguindo o método do substrato de cálcio / gelatina descrita por Pataky et al 11 para evitar a viabilidade reduzida associada com alto teor. O método de substrato de cálcio / gelatina é listado abaixo. <ol><li> Combinar cloreto de cálcio di-hidratado (1,5% em peso), de cloreto de sódio (0,9% em peso), e gelatina porcina (2% em peso) em água destilada e ferver durante 2 minutos para criar uma solução de gelatina a 100 mM. </li></ol></li><li> Pour 5 ml da solução de gelatina / cálcio em 100 mm placas de petri padrão, agite a solução volta para ter um revestimento uniforme sobre a superfície, e o lugar sobre uma superfície plana no frigorífico de gel de O / N (permitir a gel, pelo menos, 8 hr antes de usar). </li><li> Para aumentar a opacidade da superfície do substrato, adicionar dióxido de titânio (0,3% em peso) para o / CaCl2 solução de gelatina. Agita-se durante 10 min. Autoclave a solução de gelatina / TiO 2 no ciclo de líquidos durante 30 min para esterilizá-lo. <ol><li> Adicionar 3 ml de o / TiO2 solução de gelatina para a superfície das placas de gelatina preparados anteriormente. Agite a mistura para garantir que ele é espalhado uniformemente por toda a superfície. Deixa-se em gel a 4 ° C frigorífico S / N (permitir a gel, pelo menos, 8 horas antes da utilização). Os substratos deve ser utilizado no prazo de 3 dias. </li></ol></li></ol> 2. O alginato Oxidação <ol><li> Oxidar o bioink alginato de sódio seguindo o método de alginato parcialmente oxidado por Bouhadir et al 30 descrito abaixo. <ol><li> Para fazer uma solução de alginato oxidado 5%, dissolve-se 1 g de alginato de sódio em 100 ml de água destilada. Adicionar uma solução aquosa de periodato de sódio (0,25 M, 0,25 mmol), o agente de oxidação, para produzir uma solução 5% de oxidação. Agita-se durante 19 horas à temperatura ambiente. Adicionar 40 ml de etileno-glicol à solução depois de 24 horas para acabar o Reaction. </li><li> Dissolve-se 2,5 g de cloreto de sódio na solução. Adicionar uma quantidade em excesso de álcool etílico (2: 1) para precipitar os alginatos oxidados. Centrifugar a solução a 1.000 x g para recolher os precipitados e re-dissolve-los em água destilada. Repita a lavagem de etanol. </li><li> Liofilizar as pelotas de alginato oxidados e armazenar a -20 ° C até estar pronto para utilização. </li></ol></li><li> Determinar o grau de oxidação através da medição da percentagem de periodato de sódio, antes de ser consumido terminada pela etileno glicol. <ol><li> Prepara-se uma solução de iodeto de potássio (20% w / v, tampão de fosfato pH 7,0 de sódio) e uma solução thyodene (10% w / v, tampão de fosfato de sódio pH 7,0). Misturar as duas soluções com o alginato oxidado à TA. </li><li> Cair gradualmente a solução de periodato de alginato de sódio e reagiu na mistura de soluções de iodeto de potássio e theodyne. Medir a absorvância da mistura a 426 nm espectrofotometricamente. Quando se atingiu ummáxima, registrar o volume utilizado de solução de periodato de alginato de sódio e como V 1. </li><li> A reacção é <img alt="Equação 1" fo:content-width="0.8in" src="/files/ftp_upload/53156/53156eq1.jpg" width="120" /> . A quantidade de periodato de sódio que não reagiu é <img alt="Equação 1.5" fo:content-width="1.2in" src="/files/ftp_upload/53156/53156eq1.5.jpg" width="150" /></li><li> Subtrair a quantidade de periodato de sódio que não reagiu a partir da concentração inicial para determinar a quantidade de periodato de sódio consumido. Usando a fórmula anterior, determinar o grau de oxidação final do alginato. </li></ol></li></ol> 3. O alginato Peptide Conjugação <ol><li> Ligandos conjugados com uma sequência de arginina-glicina-aspartato exposta (péptido) para dentro do alginato oxidado previamente preparado seguindo o método de conjugação de RGD por Alginato Rowley et al 31 descrito abaixo para promover a adesão e espalhamento. </li><li> Use carbod aquosaquímica iimide com G 4 RGDSPto conjugado 31. </li><li> Dissolve-se 1 g de 5% de alginato oxidado em um 0,1 M de 2- (N-morfolino) etanossulfónico (MES), pH = 4. Adicionar 1-etil- (dimetilaminopropil) carbodiimida (EDC, 0,54 mmol) e N-hidroxissuccinimida ( NHS, 0,27 mmol) a 2: 1 para formar a amida intermediária. </li><li> Adicionar 0,28 mmol de péptido, para acoplamento a espinha dorsal do polímero através de alginato a amina terminal. Agita-se à temperatura ambiente O / N. </li><li> Parar a reacção de acoplamento por adição de cloreto de sódio a 2,5 g para a solução. Adicionar uma quantidade em excesso de álcool etílico (2: 1) para precipitar os alginatos oxidados. Centrifugar a mistura a 4000 xg durante 5 min para recolher os precipitados. Aspirar a mídia na capa de cultura de células e re-dissolver os precipitados em água destilada. Repita a lavagem de etanol. </li><li> Liofilizar os precipitados até que se torne completamente secas (aparecerá como uma substância em pó branca) e armazenar na temperatura de -20 ° C frigorífico para mais tardeusar. </li></ol> 4. adiposo humano estromais Tissue células de cultura celular (de hADSC) <ol><li> Culturas adiposo humano de células estromais de tecido (de hADSC) em 75 cm tratados frascos de cultura de células (frascos T75), coberto com 15 ml de baixo DMEM de glucose com 10% de soro fetal bovino e 1% de penicilina-estreptomicina, 1% de glutamina, e 1% antimicina. Alterar a mídia, na capa de cultura de células, a cada dois dias até que tenham atingido a confluência (80-90%). </li><li> Uma vez confluentes, as transferir para frascos T75 a capa de cultura de células e suspender o hADSC utilizando o método de digestão com enzimas de tripsina. <ol><li> Na capa, aspirar todo o meio de cultura de células fora das células. Lavar com 5 ml de fosfato de Dulbecco com Solução Salina Tamponada com cálcio e magnésio (DPBS ++). Aspirar o DPBS ++ fora das células. </li><li> Enquanto no capô, fazer uma solução de tripsina e DPBS ++ pela mistura de 1 ml de tripsina e 4 ml DPBS ++. Cada frasco de 5 ml de requer a solutde iões, assim que o volume apropriado para o número de frascos confluentes. Adicionar 5 ml de tripsina / ++ DPBS a cada frasco e colocá-los na incubadora durante 2 min. </li><li> Após 2 min, retire os frascos e bata levemente os lados deles para soltar as células a partir do fundo. Veja cada frasco sob um microscópio para garantir que as células são suspensas. Colocar os frascos de volta no capuz de cultura de células e adicionar 3 ml de meio de cultura celular adequado a cada frasco. Isto termina a reacção de tripsina. </li><li> Transfira a mídia celular carregado de cada frasco e colocar em um cônico de 50 ml. Centrifugar a 1.000 xg los durante 5 min. As células devem aparecer como um pequeno sedimento branco no fundo do cone. Transferência de volta para a capa de cultura de células e aspirar a mídia. Ressuspender as células em 2 ml de meio de cultura celular. </li><li> Contar as células utilizando um hemocitómetro sob o microscópio. Uma vez que as células foram contadas, na capa de cultura, a quantidade aliquota de meio contendo ~ 1,3 million células e transferência para um cônico de 15 ml. Centrifugar a cónico de 15 ml contendo as células mais uma vez durante 5 min a 1000 x g. </li><li> Na capa de cultura, propagar novamente as células restantes em vários frascos T-75, a adição de uma concentração de ~ 350.000 células de cada frasco. Adicionar 15 ml de meio DMEM e retornar à incubadora até confluente novamente. </li><li> Uma vez que o ciclo de centrifugação é completa, o regresso cónico de 15 ml para a cultura de células. Aspirar a mídia do pellet celular e resuspender as células em solução aquosa de alginato a uma concentração de 1,3 milhões de células por mililitro de bioink, terteriating a solução muitas vezes para que haja uma distribuição homogênea de células de todo o bioink. Coloque a solução de células-laden em um estéril seringa de 3 ml e impressora compatível com o parafuso na estéril 22 G ponta de plástico. </li></ol></li></ol> 5. Configuração bioprinter <ol><li> Ligue o bioprinter, cada um dos computadores de dispensador, e o recirculating banho de água. <ol><li> Definir manualmente a temperatura do banho de recirculação de água para para o mecanismo de gelificação. </li><li> Manualmente definir parâmetros de impressão para cada distribuidor no computador correlacionando distribuidor. Definir o volume de distribuição a 230 nl, número de backsteps a 0, e a taxa de distribuição de 10 ul -sec. </li></ol></li><li> Abra o software de projeto e do programa para a visualização de visor da câmera USB no computador. <ol><li> Usando o software, insira manualmente as coordenadas para uma matriz de 5 x 5 dot com 2,4 mm de espaçamento entre as quedas. </li><li> Defina os parâmetros de impressão a ser: distância entre a extremidade da ponta e da superfície do substrato = 0,1 mm; altura seringa é levantada entre as deposições = 20 mm; a quantidade de tempo por deposição = 1 seg. </li><li> Salve o programa e enviá-lo para o robô. </li></ol></li><li> Colocar a cápsula de gelatina / TiO2 molecular contendo Petri na etapa 4 ° C impressora. Feche e tranque a porta da câmara. </li><li> Use o PLC para initialize as fontes de luz ultravioleta, e esterilizar a câmara durante 90 seg. </li><li> Uma vez que a esterilização é completa, abrir a câmara e carregar a seringa contendo de hADSC suspenso em alginato em Gun 1. Feche e tranque a porta da câmara. </li><li> Use o PLC para ligar o sistema de ventilação, espere 30 segundos para a pressão interna equilíbrio. </li><li> No computador, execute o programa que contém os parâmetros de impressão via e geométricas. </li><li> Durante todo o processo de impressão, visualizar o visor da câmera USB no computador para confirmar a impressão precisa e uniforme. </li><li> Uma vez que a impressão terminar, deixe as construções de gel durante 40 min. </li></ol> Avaliação de Viabilidade 6. celular <ol><li> Cubra as construções que não estão indo a ser trabalhada imediatamente pós-impressão em DMEM e guarde na incubadora até à hora de imagem. </li><li> Para quantificar a viabilidade das construções, mancha-los utilizando um ensaio de viabilidade / citotoxicidade fluorescente à base, umaimagem nd usando microscopia confocal. <ol><li> Seguindo as instruções do kit, preparar uma solução de coloração contendo calceina AM e homodimero de etidio-1. Para fazer 10 ml de solução de coloração, adicionar 20 ul da etídio homodímero-1 e 5 ul de calceína am a 10 ml de solução estéril, tamponada com fosfato salino de cultura de tecidos de grau de Dulbecco (+ magnésio, + cálcio; DPBS ++). </li><li> Mergulhar os construtos bioprinted na solução de coloração, durante 15 minutos no escuro. </li><li> Imagem as construções coradas utilizando um sistema de microscópio confocal nos dias 0 e 8. Tire várias fotos de cada construção bioprinted, usando parâmetros Z-stack de 30 fatias ópticos sobre uma profundidade de 300 mm, e contar manualmente as células. Se as células aparecem amarelo ou contá-los como verde vivo, e se vermelho, contá-los como mortos. </li></ol></li><li> Calcula-se a percentagem de viabilidade celular, como o número de células vivas a dividir pelo número total de células na construção; Viabilidade celular = número decélulas vivas (verde + amarelo) / número de células totais (verde + amarelo + vermelho) x 100%. </li><li> Calcula-se a quantidade de proliferação de células para cada amostra como o número de células do dia 8, dividido pelo número de células no dia 0; Proliferação celular = contagem de células vivas no dia 8 / células vivas contar no dia 0 x 100%. </li></ol> 7. RGD Peptide Análise Conjugação <ol><li> Para analisar o sucesso de RGD peptídeo conjugação com o alginato, compare alginato RGD-conjugado e alginato não conjugado. Para fazer isso, as construções de imagem impressos utilizando (4 &#39;, 6-diamidino-2-fenilindole, dicloridrato) (DAPI) e faloidina manchas. <ol><li> Adicione os phalloidins solução de trabalho por diluição de 5 ul da solução-mãe metanólica com 200 mL de DPBS ++. Armazenar a -20 ° C até o uso. </li><li> Adicione uma solução de 300 uM de estoque a mancha DAPI seguinte equação: (0,10509 g / L) / (350,3 g / mol) = 3 × 10 -4 M = 0,0003 M = 0,300 mm = 300 uM. Faça the DAPI solução de trabalho por diluição da solução-mãe de 1: 100 em DPBS ++ para se obter 3 uM solução. Armazenar a -20 ° C até o uso. </li></ol></li><li> Completamente imersa a amostra em paraformaldeído a 4%. Incubar durante 1 h à TA. Lavar três vezes com DPBS ++, permitindo que a solução em repouso durante 5 min cada lavagem. Transfira a amostra em gel a partir do bem para uma lâmina de vidro, que lança sobre o gel no processo. Mergulha-se o gel em 0,1% de Triton X-100 (0,1 g / 100 ml) em DPBS ++ durante 10 min. Lavar três vezes com DPBS ++, permitindo 5 minutos para cada lavagem. </li><li> Corar as construções impressas com faloidina por imersão na solução de trabalho. Cubra com papel alumínio e incubar durante 4 horas. Remover a mancha faloidina e lavar três vezes com DPBS ++. A primeira lavagem deve ser rápido, o último lavagens deve sentar-se durante 5 minutos cada. </li><li> Corar as construções impressas com DAPI por imersão na solução de trabalho DAPI. Cubra com folha e incubar à TA durante 30 min. lavagemtrês vezes com DPBS ++, permitindo que cada lavagem para se sentar por 5 min. Observe e imagem das amostras em um sistema de microscópio confocal. </li></ol>

<ol><li>Langer, R., Vacanti, J. P. Tissue Engineering. Science. 260 (5110), 920-926 (1993).</li>
<li>Derby, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Review%3A+Printing+and+Prototyping+of+Tissues+and+Scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Review: Printing and Prototyping of Tissues and Scaffolds.</a> Science. 338 (6109), 921-926 (2012).</li>
<li>Kachurin, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct-Write+Construction+of+Tissue-Engineered+Scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22Mat.+Res.+Soc.+Symp.+Proc%22%5BJournal%5D)">Direct-Write Construction of Tissue-Engineered Scaffolds.</a> Mat. Res. Soc. Symp. Proc. 698, 10-1557 (2002).</li>
<li>Sachlos, E., Czernuszka, J. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Making+Tissue+Engineering+Scaffolds+Work.+Review+on+the+Application+of+Solid+Freeform+Fabrication+Technology+to+the+Production+of+Tissue+Engineering+Scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22European+Cells+and+Materials%22%5BJournal%5D)">Making Tissue Engineering Scaffolds Work. Review on the Application of Solid Freeform Fabrication Technology to the Production of Tissue Engineering Scaffolds.</a> European Cells and Materials. 5, 29-40 (2003).</li>
<li>Yeong, W. Y., Chua, C. K., Leong, K. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+Prototyping+in+Tissue+Engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Challenges+and+Potential.+Trends+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Rapid Prototyping in Tissue Engineering.</a> Challenges and Potential. Trends Biotechnol. 22 (12), 643-652 (2004).</li>
<li>Landers, R., Pfister, A., Hubner, U., John, H., Schmelzeisen, R., Mulhaupt, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+of+Soft+Tissue+Engineering+Scaffolds+by+means+of+Rapid+Prototyping+Techniques%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Materials+Science%22%5BJournal%5D)">Fabrication of Soft Tissue Engineering Scaffolds by means of Rapid Prototyping Techniques.</a> Journal of Materials Science. 37 (15), 3107-3116 (2002).</li>
<li>Murphy, S. V., Skardal, A., Atala, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+Hydrogels+for+Bio%E2%80%93Printing+Applications%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Materials+Research+Part+A%22%5BJournal%5D)">Evaluation of Hydrogels for Bio–Printing Applications.</a> Journal of Biomedical Materials Research Part A. 101A (1), 272-284 (2013).</li>
<li>Burg, K. J. L., Boland, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Minimally+Invasive+Tissue+Engineering+Composites+and+Cell+Printing%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Eng+Med+Biol+Mag%22%5BJournal%5D)">Minimally Invasive Tissue Engineering Composites and Cell Printing.</a> IEEE Eng Med Biol Mag. 22 (5), 84-91 (2003).</li>
<li>Billiet, T., Vandenhaute, M., Schelfhout, J., Van Vlierberghe, S., Dubruel, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Review+of+Trends+and+Limitations+in+Hydrogel-Rapid+Prototyping+for+Tissue+Engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">A Review of Trends and Limitations in Hydrogel-Rapid Prototyping for Tissue Engineering.</a> Biomaterials. 33 (26), 6020-6041 (2012).</li>
<li>Khalil, S., Nam, J., Sun, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multi%E2%80%93Nozzle+Deposition+for+Construction+of+3D%5BTitle%5D)+AND+%22Biopolymer+Tissue+Scaffolds.+Rapid+Prototyping+Journal%22%5BJournal%5D)">Multi–Nozzle Deposition for Construction of 3D.</a> Biopolymer Tissue Scaffolds. Rapid Prototyping Journal. 11 (1), 9-17 (2005).</li>
<li>Pataky, K., Braschler, T., Negro, A., Renaud, P., Lutolf, M. P., Brugger, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microdrop+Printing+of+Hydrogel+Bioinks+into+Three%E2%80%93Dimensional+Tissue%E2%80%93Like+Geometries%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Mater%22%5BJournal%5D)">Microdrop Printing of Hydrogel Bioinks into Three–Dimensional Tissue–Like Geometries.</a> Adv Mater. 24 (3), 391-396 (2011).</li>
<li>Pati, F., Shim, J. H., Lee, J. S., Cho, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-Dimensional+Printing+of+Cell%E2%80%93Laden+Constructs+for+Heterogeneous+Tissue+Regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Manufacturing+Letters%22%5BJournal%5D)">Three-Dimensional Printing of Cell–Laden Constructs for Heterogeneous Tissue Regeneration.</a> Manufacturing Letters. 1 (1), 49-53 (2013).</li>
<li>Gruene, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+Printing+of+Three%E2%80%93Dimensional+Multicellular+Arrays+for+Studies+of+Cell%E2%80%93Cell+and+Cell%E2%80%93Environment+Interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng%22%5BJournal%5D)">Laser Printing of Three–Dimensional Multicellular Arrays for Studies of Cell–Cell and Cell–Environment Interactions.</a> Tissue Eng. 17 (10), 973-982 (2011).</li>
<li>Khalil, S., Sun, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioprinting+Endothelial+Cells+With+Alginate+for+3D+Tissue+Constructs%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">Bioprinting Endothelial Cells With Alginate for 3D Tissue Constructs.</a> J Biomed Eng. 131 (11), 1-8 (2009).</li>
<li>Xu, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hybrid+Printing+of+Mechanically+and+Biologically+Improved+Constructs+for+Cartilage+Tissue+Engineering+Applications%5BTitle%5D)+AND+%22Biofabrication%22%5BJournal%5D)">Hybrid Printing of Mechanically and Biologically Improved Constructs for Cartilage Tissue Engineering Applications.</a> Biofabrication. 5 (1), 1-10 (2012).</li>
<li>Zhang, T., Yan, K. C., Ouyang, L., Sun, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+Characterization+of+Bioprinted+in+vitro+Soft+Tissue+Models%5BTitle%5D)+AND+%22Biofabrication%22%5BJournal%5D)">Mechanical Characterization of Bioprinted in vitro Soft Tissue Models.</a> Biofabrication. 5 (4), 1-10 (2013).</li>
<li>Chung, J. H. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bio%E2%80%93ink+Properties+and+Printability+for+Extrusion+Printing+Living+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomater.+Sci.%2C+Polym.+Ed%22%5BJournal%5D)">Bio–ink Properties and Printability for Extrusion Printing Living Cells.</a> J. Biomater. Sci., Polym. Ed. 1 (7), 763-773 (2013).</li>
<li>Yang, S., Leong, K. F., Du, Z., Chua, C. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Design+of+Scaffolds+for+Use+in+Tissue+Engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Part+II.+Rapid+Prototyping+Techniques.+Tissue+Engineering%22%5BJournal%5D)">The Design of Scaffolds for Use in Tissue Engineering.</a> Part II. Rapid Prototyping Techniques. Tissue Engineering. 8 (1), 1-11 (2002).</li>
<li>Ferris, C. J., Gilmore, K. G., Wallace, G. G., Panhuis, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biofabrication%3A+An+Overview+of+the+Approaches+Used+for+Printing+of+Living+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Microbiol.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Biofabrication: An Overview of the Approaches Used for Printing of Living Cells.</a> Appl. Microbiol. Biotechnol. 97 (10), 4243-4258 (2013).</li>
<li>Lu, L., Mikos, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Importance+of+New+Processing+Techniques+in+Tissue+Engineering%5BTitle%5D)+AND+%22MRS+Bull%22%5BJournal%5D)">The Importance of New Processing Techniques in Tissue Engineering.</a> MRS Bull. 21 (11), 28-32 (1996).</li>
<li>Wake, M. C., Gupta, P. K., Mikos, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+of+pliable+biodegradable+polymer+foams+to+engineer+soft+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Transplant%22%5BJournal%5D)">Fabrication of pliable biodegradable polymer foams to engineer soft tissues.</a> Cell Transplant. 5, 465-473 (1996).</li>
<li>Mironov, V., Visconti, R. P., Kasyanov, V., Forgacs, G., Drake, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organ+Printing%3A+Tissue+Spheroids+as+Building+Blocks%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Organ Printing: Tissue Spheroids as Building Blocks.</a> Biomaterials. 30 (12), 2164-2174 (2009).</li>
<li>Norotte, C., Marga, F. S., Niklason, L. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scaffold%E2%80%93free+Vascular+Tissue+Engineering+Using+Bioprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Scaffold–free Vascular Tissue Engineering Using Bioprinting.</a> Biomaterials. 30 (30), 5910-5917 (2009).</li>
<li>Devillard, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+Patterning+by+Laser%E2%80%93Assisted+Bioprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Cell Patterning by Laser–Assisted Bioprinting.</a> Methods Cell Biol. 119, 159-174 (2014).</li>
<li>Binder, K. W., Allen, A. J., Yoo, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drop%E2%80%93on%E2%80%93Demand+Inkjet+Bioprinting%3A+a+Primer%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Ther+Reg%22%5BJournal%5D)">Drop–on–Demand Inkjet Bioprinting: a Primer.</a> Gene Ther Reg. 6 (1), 33(2011).</li>
<li>Xu, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Viability+and+Electrophysiology+of+Neural+Cell+Structures+Generated+by+the+Inkjet+Printing+Method%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Viability and Electrophysiology of Neural Cell Structures Generated by the Inkjet Printing Method.</a> Biomaterials. 27 (19), 3580-3588 (2006).</li>
<li>Calvert, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inkjet+Printing+for+Materials+and+Devices%5BTitle%5D)+AND+%22Chem+Mater%22%5BJournal%5D)">Inkjet Printing for Materials and Devices.</a> Chem Mater. 13 (10), 3299-3305 (2001).</li>
<li>Chang, C. C., Boland, E. D., Williams, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct%E2%80%93Write+Bioprinting+Three%E2%80%93Dimensional+Biohybrid+Systems+for+Future+Regenerative+Therapies%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Mater+Res+B+Appl+Biomater%22%5BJournal%5D)">Direct–Write Bioprinting Three–Dimensional Biohybrid Systems for Future Regenerative Therapies.</a> J Biomed Mater Res B Appl Biomater. 98 (1), 160-170 (2011).</li>
<li>Li, M. G., Tian, X. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Brief+Review+of+Dispensing%E2%80%93Based+Rapid+Prototyping+Techniques+in+Tissue+Scaffold+Fabrication%3A+Role+of+Modeling+on+Scaffold+Properties+Prediction%5BTitle%5D)+AND+%22Biofabrication%22%5BJournal%5D)">A Brief Review of Dispensing–Based Rapid Prototyping Techniques in Tissue Scaffold Fabrication: Role of Modeling on Scaffold Properties Prediction.</a> Biofabrication. 1 (3), 1-10 (2009).</li>
<li>Bouhadir, K. H., Lee, K. Y., Alsberg, E., Damm, K. L., Anderson, K. W., Mooney, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Degradation+of+Partially+Oxidized+Alginate+and+its+Potential+Application+for+Tissue+Engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol+Prog%22%5BJournal%5D)">Degradation of Partially Oxidized Alginate and its Potential Application for Tissue Engineering.</a> Biotechnol Prog. 17 (5), 945-950 (2001).</li>
<li>Rowley, J. A., Madlambaya, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alginate+Hydrogels+as+Synthetic+Extracellular+Matrix+Materials%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Alginate Hydrogels as Synthetic Extracellular Matrix Materials.</a> Biomaterials. 20 (1), 45-53 (1999).</li>
<li>Smith, C. M., Christian, J. J., Warren, W. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterizing+Environmental+Factors+that+Impact+Viability+of+Tissue%E2%80%93Engineered+Constructs+Fabricated+by+a+Direct%E2%80%93Write+Bioassembly+Tool%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering%22%5BJournal%5D)">Characterizing Environmental Factors that Impact Viability of Tissue–Engineered Constructs Fabricated by a Direct–Write Bioassembly Tool.</a> Tissue Engineering. 13 (2), 373-383 (2007).</li>
<li>Ozbolat, I., Yu, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioprinting+Towards+Organ+Fabrication%3A+Challenges+and+Future+Trends%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Trans+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">Bioprinting Towards Organ Fabrication: Challenges and Future Trends.</a> IEEE Trans Biomed Eng. 60 (3), 691-699 (2012).</li>
<li>Peltola, S. M., Melchels, F. P., Grijpma, D. W., Kellomaki, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Review+of+Rapid+Prototyping+Techniques+for+Tissue+Engineering+Purposes%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">A Review of Rapid Prototyping Techniques for Tissue Engineering Purposes.</a> Annals of Medicine. 40 (4), 268-280 (2008).</li>
<li>Malda, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((25th+Anniversary+Article%3A+Engineering+Hydrogels+for+Biofabrication%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Mat%22%5BJournal%5D)">25th Anniversary Article: Engineering Hydrogels for Biofabrication.</a> Adv Mat. 25 (36), 5011-5028 (2013).</li>
<li>Murphy, S. V., Atala, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+Bioprinting+of+Tissues+and+Organs%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotech%22%5BJournal%5D)">3D Bioprinting of Tissues and Organs.</a> Nat Biotech. 32 (8), 773-785 (2014).</li>
<li>Jia, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+Alginate+as+Bioink+for+Bioprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterialia%22%5BJournal%5D)">Engineering Alginate as Bioink for Bioprinting.</a> Acta Biomaterialia. 10 (10), 4323-4331 (2014).</li>
<li>Forty, R. A., Steinberg, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Differential+Adhesion+Hypothesis%3A+a+Direct+Evaluation%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">The Differential Adhesion Hypothesis: a Direct Evaluation.</a> Developmental Biology. 278 (1), 255-263 (2005).</li>
<li>Wang, L., Shansky, J., Borselli, C., Mooney, D., Vandenburgh, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Design+and+Fabrication+of+a+Biodegradable%2C+Covalently+Crosslinked+Shape%E2%80%93Memory+Alginate+Scaffold+for+Cell+and+Growth+Factor+Delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Tis+Eng+Part+A%22%5BJournal%5D)">Design and Fabrication of a Biodegradable, Covalently Crosslinked Shape–Memory Alginate Scaffold for Cell and Growth Factor Delivery.</a> Tis Eng Part A. 18 (19-20), 2000-2007 (2012).</li>
<li>El–Sherbiny, I. M., Yacoub, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hydrogel+Scaffolds+for+Tissue+Engineering%3A+Progress+and+Challenges%5BTitle%5D)+AND+%22Global+Cardiology+Science%2C+%26+Practice%22%5BJournal%5D)">Hydrogel Scaffolds for Tissue Engineering: Progress and Challenges.</a> Global Cardiology Science, & Practice. 3 (38), 316-342 (2013).</li>
<li>Smith, C. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three%E2%80%93Dimensional+BioAssembly+Tool+for+Generating+Viable+Tissue-Engineered+Constructs%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering%22%5BJournal%5D)">Three–Dimensional BioAssembly Tool for Generating Viable Tissue-Engineered Constructs.</a> Tissue Engineering. 10 (9–10), 1566-1576 (2004).</li>
<li>Ozbolat, I. T., Chen, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+%E2%80%98Multi-arm+Bioprinter%E2%80%99+for+Hybrid+Fabrication+of+Tissue+Engineering+Constructs%5BTitle%5D)+AND+%22Robotics+and+Computer%E2%80%93Integrated+Manufacturing%22%5BJournal%5D)">Development of a ‘Multi-arm Bioprinter’ for Hybrid Fabrication of Tissue Engineering Constructs.</a> Robotics and Computer–Integrated Manufacturing. 30 (3), 295-304 (2014).</li>
<li>Kolesky, D. B., Truby, R. L., Gladman, A. S., Busbee, T. A., Homan, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-Dimensional+Bioprinting+of+Vascularized%2C+Heterogeneous+Cell%E2%80%93Laden+Tissue+Constructs.+Adv+Mater.+X%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Mater%22%5BJournal%5D)">Three-Dimensional Bioprinting of Vascularized, Heterogeneous Cell–Laden Tissue Constructs. Adv Mater. X.</a> Adv Mater. X, x-y (2014).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a divulgar.

O foco principal da engenharia de tecidos é fazer a ponte entre a escassez de órgãos e necessidades de transplante através do desenvolvimento de substitutos biológicos capazes de restaurar, manter ou melhorar a functio tecido nativo. Isto levou à fabricação directa de andaimes com um complexo, geometria externa anatomicamente correcto, e o controlo preciso sobre a geometr interna. Bioprinting tridimensional é um método utilizado para gerar as construções tridimensionais de vários tamanhos e formas a partir de um modelo ...

A engenharia de tecidos utiliza os princípios da biologia e da engenharia, no desenvolvimento de substitutos funcionais para manter, restaurar ou melhorar tecido nativo e. A capacidade de gerar construtos biomiméticos tridimensionais na demanda facilitaria avanços científicos e tecnológicos na engenharia de tecidos, bem como em sensores baseados em celulares, drogas / triagem toxicidade, modelos de tecido ou tumor, e outros. A organização tridimensional das construções da engenharia de tecidos é um componente fundamental do método de fabrico, porque ele deve imitar de perto a interacção altamente organizado de células e matriz extracelular no tecido nativo. Andaimes tridimensionais biodegradável e formando-forma são factores críticos para a geração de novas construções de tecido porque as células migram para formar uma camada bidimensional de células, mas não têm a capacidade para crescer em favorecida tridimensional. O andaime serve como base temporária para celularadesão e proliferação, por isso deve ser construído a partir de materiais com porosidade controlada e biodegradabilidade, e integrit mecânica suficiente. Os materiais de andaime não deve ser citotóxico ou criar uma resposta adversa do anfitrião. Os hidrogeles têm sido vulgarmente utilizados nas técnicas de engenharia de tecidos, e devido à sua hidrofilicidade, os hidrogéis de permitir o intercâmbio de fluido e gás em toda a estruturação. Ao combinar diferentes hidrogéis, as propriedades do hidrogel sintetizado são modificáveis ​​para cumprir a exigência de aplicação distinta. A abordagem de engenharia de tecidos convencional envolve a criação de andaimes de sacrifício porosas acelular que são semeadas com células pós-fabricatio. Têm sido empregues várias técnicas, tais como colagem de fibras, moldagem com solvente, e derreter moldagem, mas provou ser bem sucedida minimamente para aplicações de engenharia de tecidos. Métodos de fibra de ligação permitem que as fibras sejam alinhadas em formatos específicos, mas eles só são capazes de pródução muito fina andaime. Métodos de evaporação de solvente produziu construções altamente porosos, no entanto, a maior membrana produzida foi de apenas 3 mm thic. Por conseguinte, a criação de estruturas tridimensionais não é possível utilizar estas técnicas. Técnicas de moldagem Melt foi bem sucedida na produção de suportes tridimensionais, mas tais temperaturas elevadas que são necessários materiais biológicos não pode ser incorporado durante o proces produção. Andaimes semeado pós-fabricação são limitados em sua capacidade de atender aos requisitos de engenharia de tecidos para produzir scaffolds tridimensionais com microestruturas pré-definidos ou controláveis ​​e. Outro grande problema com tecnologias andaime de semeadura sólidos é a deficiência de vascularização e pobres mecânica. Bioprinting foi estendida para três dimensões através da utilização de não-tóxicos e biodegradáveis, geles termo-reversíveis de superar as desvantagens do convencional. Alguns do sólido freeform fabricação techniques atualmente sendo empregadas são bioprinting e jato de tinta de impressão laser-assistida. Técnicas bioprinting assistida por laser pulsado utilizar uma fonte de laser, uma placa de destino, e um substrato de recepção para gerar tridimensional. No entanto, esta técnica é limitada devido à baixa taxa de transferência, a viabilidade celular baixa, e só pode produzir arranjos limitadas de estruturas fabricadas, porque apenas pré-polímeros foto-reticulável pode ser utilizado para formar um hidrogel reticulado. Impressão de jacto de tinta foi desenvolvido como um método não-contacto, que reproduz os dados de imagem digitais sobre um substrato por deposição de tinta picolitros. No entanto, a impressão a jacto de tinta não produzir uma construção de alta resolução, constrói experiência rápida desnaturação da proteína, e muitas das células são lisadas durante a deposição. Atualmente, têm sido desenvolvidos novos métodos de fabricação aditiva bioprinting. Nestes sistemas de células, proteínas, factores de crescimento, e os hidrogéis são tipicamente integrados biomiméticos para mater matrizIALS durante o processo de fabricação e simultaneamente depositados utilizando atuadores controlados por computador para gerar estruturas celulares carregados tridimensionais à base de andaime que imitam de perto a microarquitetura de natal. Os hidrogéis de células carregados de constituir o bioink, que pode ser heterogéneo, que consiste em vários tipos de células, ou homogénea. Aditivo sistemas de manufatura depósito bioink gota-a-gota ou camada por camada através de seringas descartáveis ​​e dicas para um palco controlado por computador capaz de se mover nas direções x, ye z. Através de um software de computador, a arquitectura de andaimes impressos pode ser facilmente manipulado, dependendo dos requisitos da aplicação. Ao contrário das técnicas convencionais, tecnologias médicas tridimensionais (ressonância magnética, tomografia computadorizada) podem ser incorporados aos desenhos, gerando construção específica para cada paciente. Estes métodos permitem também a possibilidade de produzir substituições vascularizados porque construções são produzidos com um elevado ldensidade celular ocal, permitindo interacções célula-célula e melhorar a probabilidade de pós-implantação surviva. A impressora Palmetto é um sistema multi-dispenser tridimensional personalizado construído que usa métodos de fabricação programáveis ​​robóticos para gerar construções de tecido heterogêneos tridimensionais (Figura 1). Ele permite a utilização de uma pluralidade de materiais em combinações únicas para produzir estruturas heterogéneas. A inicialização do bioprinter é um dos passos mais importantes na bioprinting porque permite que você para definir uma variedade de parâmetros para otimizar a capacidade de impressão das construções bioprinted. O bioprinter compreende um processo tipo de lote com sequências de arranque, operação e encerramento controlado por um controlador lógico programável (PLC), que o usuário opera por meio de um painel de controle de tela interativa sensível ao toque (Figura 1, A). Para evitar a contaminação dos biomateriais lógicos a bioprinter é encerrado em um poli-pressionados positivamente (metacrilato de metilo) (PMMA) com uma câmara de partículas arrestance de elevada eficiência (HEPA) filtrado por sistema de circulação de ar (Figura 1, B, C). O interior da impressora pode ser esterilizada utilizando as fontes de luz ultravioleta embutidos (Figura 1, D). O componente central do bioprinter é um posicionamento robô programável que pode totalmente reprodutível colocar uma ponta conta-gotas com uma precisão de 10 micrometros (Figura 1, E). Existem três distribuidores, os quais são capazes de depositar volumes tão pequenos como 230 nl, utilizando um parafuso rotativo (Figura 1, F). Eles são independentemente programável usando computadores diferentes que regem os parâmetros de impressão para cada distribuidor (figura 1, G). Rotativa de parafuso de distribuição utiliza a rotação de um parafuso motorizado para mover para baixo bioink uma seringa e para fora da ponta da seringa. Estes distribuidores são montados em um pneumáticoNest Ferramenta LY controlada (Figura 2A, B), permitindo que o robô para alternar distribuidor montada sobre o braço robótico do eixo Z sob controlo programado (Figura 1, H). O robô XYZ recebe instruções de impressão a partir de um computador que executa o software de desenho (Figura 1, I). Cada programa contém os locais de distribuição, rotinas e protocolos de calibração, dispensador de mudança. O desenho das construções gerados essencialmente consiste na coordenadas XYZ, onde cada dispensador vai depositar material. O bioprinter compreende dois sensores de luz ópticos (Figura 2C) que determinam a coordenadas XYZ da extremidade da ponta da seringa. Estes sensores enviam informações para coordenar o robô, que os utiliza para calcular as posições das extremidades ponta distribuidor. Há um laser de deslocamento adicional (Figura 2D) que projeta um diodo 633 nm feixe de laser vermelho de tamanho de ponto 30 x 100 micrômetros para medir a distância com um accuracy de 0,1 micrómetros. Quando o feixe está altamente focada o robô determina a distância Z da superfície de impressão. Esta medida, ea medida sensores de luz óptica da extremidade da ponta em Z, permite o cálculo de Z coordenadas precisas usada para colocar a ponta do aplicador em relação à superfície de impressão. As pontas do distribuidor mover-se lateralmente e verticalmente através do sensor de luz óptica X-eixo orientado para localizar os centros de Y e Z, e lateralmente por meio de um sensor do eixo Y para encontrar o centro do eixo-X. A superfície de impressão é mapeado utilizando a fórmula para uma superfície plana no espaço XYZ: ax + by + cz = d para determinar onde a superfície é em relação à posição da extremidade da ponta de distribuição. A fase de impressão (Figura 1, J) contém uma amostra de uma placa de Petri até 80 mm de diâmetro e utiliza um banho de água com recirculação para manter a temperatura definida (Figura 1, K). Temperatura estágio pode ser ajustado dentro de uma gama de -20 e permanece estável dentro. Há uma câmera USB montadopara o Z-braço robô para proporcionar uma vista ampliada da ponta de aplicação durante o processo de impressão (figura 1, G). Há uma segunda câmara montada na direcção do topo do interior da câmara, que fornece uma visão completa do bioprinter durante o processo de impressão (figura 1, G). Um software de desenho auxiliado por computador determina o padrão de deposição e permite ao usuário gerar gotículas espaçadas de forma incremental e estruturas complexas (Figura 3). Vias tridimensionais pode ser codificado manualmente no software de desenho de impressora compatível ou importados de um software separado auxiliado por computador desenho (Figura 4, Tabela 1). O software da impressora compatível permite variações de parâmetros de impressão, tais como o método de deposição (deposição ou deposição de gotícula única passagem contínua), a geometria tridimensional das vias, a taxa de deposição, distância entre a extremidade da ponta da seringa e substtaxa de superfície de impressão, a quantidade de tempo para depositar uma gota indivíduo, e a altura e acelerar a seringa é levantada entre a deposição das gotas. Cada programa contém XYZ locais de distribuição, rotinas de calibração ponta e protocolos de dispensador de mudança para proporcionar um ambiente estéril, sem intervenção do operador, durante a impressão. O controlador lógico programável (PLC) do robô recebe instruções do computador que executa o software de desenho e controla o tempo dos eventos dos controladores externos (por exemplo, os distribuidores). Para fazer isso, o PLC utiliza um mecanismo de loop para controlar os dispensadores , dispositivo de posicionamento robótico, e fatores ambientais. Tridimensional bioprinting e gravação directa utilizando um parafuso rotativo, sistema de distribuição de líquido permite que o processo de depósito de células para ser mais eficiente, precisa e mais fácil do que métodos anteriores. Este estudo mostra a bioprinter personalizado construído é capaz de gerar ceconstruções de hidrogel ll-carregado com alta viabilidade celular.

<table><tbody><tr><td>Robô de Posicionamento (JR2000 XYZ)</td><td>Janome&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dispensadores: SDAV Linear Drive SmartDispensers</td><td>Fishman Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sensores de Luz Óptica:&nbsp;</td><td>Laser de Deslocamento Keyensce</td><td></td><td></td></tr><tr><td>: OD Mini</td><td>SICK</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Recirculação de Banho-maria: Polystat</td><td>Cole-Parmer</td><td>EW-12122-02</td><td></td></tr><tr><td>Câmeras USB: Dino-Lite Premier 5MP</td><td>AnMo Electrionics/YSC Technologies</td><td>AD7013MT</td><td></td></tr><tr><td>Software de Design de Computador Compatível com Impressora: JR-C Points</td><td>Janome</td><td></td><td>Vem com a compra do Robô Janome</td></tr><tr><td>Software de Desenho Assistido por Computador: Visual PathBuilder</td><td>RatioServ</td><td></td><td>Pode ser baixado em: www.ratioserv.com/index.php/downloads</td></tr><tr><td>Impressora Seringas de 3 cc:&nbsp;</td><td>Fishman Corporation</td><td>122051</td><td></td></tr><tr><td>Pontas de Dispensador de 22 G</td><td>Fishman Corporation</td><td>Z520122&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Cloreto de cálcio di-hidratado</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>10035-04-8</td><td></td></tr><tr><td>Cloreto de sódio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7647-14-5</td><td></td></tr><tr><td>Gelatina suína</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>9000-70-8</td><td></td></tr><tr><td>Dióxido de titânio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>13462-67-7</td><td></td></tr><tr><td>Protanal LF 20/40 Alginato (alginato de sódio)</td> <td>FMC BioPolymer</td><td>9005-38-3</td><td></td></tr><tr><td>Ácido clorídrico</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7647-01-0</td><td></td></tr><tr><td>Etilenoglicol</td><td>Mallinckrodt Baker, Inc</td><td>9300-01</td><td></td></tr><tr><td>Periodato de sódio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7790-28-5</td><td></td></tr><tr><td>hADSC</td><td>Lonza</td><td>PT-5006</td><td>Armazene em frascos em nitrogênio líquido até o uso.</td></tr><tr><td>Dulbecco's Modified Eagle's Medium</td><td>Gibco Life Technologies</td><td>11965-092</td><td>Quente em 37 &deg; C água antes de usar.</td></tr><tr><td>Tripsina / EDTA</td><td>Lonza</td><td>CC-5012</td><td>Quente em 37 &deg; C água antes de usar.</td></tr><tr><td>Calcein AM</td><td>Gibco Life Technologies</td><td>C3100MP</td><td>Loja no escuro a -80 &deg; C até o uso.</td></tr><tr><td>Kit de Ensaio de Viabilidade de Mamíferos Vivos/Mortos</td><td>Invitrogen Life Technologies</td><td>L-3224</td><td>Armazene no escuro a -80 &deg; C até o uso.</td></tr><tr><td>MES Hydrate</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M2933</td><td></td></tr><tr><td>N-Hydroxysuccinimide</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>130672</td><td></td></tr><tr><td>1-etil-(dimetilaminopropil) carbodiimida (EDC)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E1769&nbsp;</td><td>10 g</td></tr><tr><td>A solução salina tamponada com fosfato da Dulbecco, +Cálcio, +Magnésio</td><td>Life Technologies</td><td>14040133</td><td>Quente em 37 &deg; C água antes de usar.</td></tr><tr><td>A solução salina tamponada com fosfato da Dulbecco, -Cálcio, -Magnésio</td><td>Life Technologies</td><td>14190144</td><td>quente em 37 &deg; C água antes de usar.</td></tr><tr><td>RGD Peptídeos</td><td>Peptídeos</td><td></td><td></td>Internacionais</tr><tr><td>Alexa Fluor 546 Mancha de Faloidina</td><td>Invitrogen Life Technologies</td><td>A22283</td><td>Loja a -20 &deg; C até o uso</td></tr><tr><td>(4', 6-Diamidino-2-Fenilindo, Dicloridrato) (DAPI) Stain</td><td>Life Technologies</td><td>R37606</td><td>Armazene a -20 &graus; C até o uso</td></tr></tbody></table>

viabilidade de bioprinted celulares construções usando uma impressora cartesiano dispenser três

Viability of Bioprinted Cellular Constructs Using a Three Dispenser Cartesian Printer

A engenharia de tecidos centralizou seu foco na construção de substitutos para tecidos não funcionais ou danificados. A utilização da bioimpressão tridimensional na engenharia de tecidos tem gerado novos métodos para a impressão de células e matrizes para a fabricação de construções biomiméticas de tecidos. O método de fabricação sólida de forma livre (SFF) desenvolvido para bioimpressão tridimensional usa uma abordagem de manufatura aditiva depositando gotículas de células e hidrogéis camada por camada. A fabricação da bioimpressão depende da colocação específica de materiais biológicos em arquiteturas tridimensionais, e as construções impressas devem imitar de perto a complexa organização de células e matrizes extracelulares no tecido nativo. Este artigo destaca o uso da Palmetto Printer, uma bioimpressora cartesiana, bem como o processo de produção de construções viáveis e espacialmente organizadas, ao mesmo tempo em que permite o controle de fatores ambientais. Essa metodologia utiliza design auxiliado por computador e manufatura assistida por computador para produzir essas geometrias específicas e complexas. Finalmente, essa abordagem permite a produção reprodutível de construções fabricadas otimizadas por parâmetros de impressão controláveis.

Os resultados demonstram a bioprinter é capaz de depositar hidrogéis de células carregadas em localizações tridimensionais específicas com precisão e de forma consistente utilizando software auxiliado por computador. Estes softwares determinar a colocação de cada gotícula e controlar muitos dos parâmetros para a distribuição (Figura 3,4). A repetibilidade do bioprinter para depositar apropriadamente biomateriais é fundamental para o seu sucesso em aplicações de engenharia de tecidos. <p class="jove_...

Uma bioimpressora cartesiana foi projetada e fabricada para permitir a deposição de vários materiais em geometrias precisas e reprodutíveis, ao mesmo tempo em que permite o controle de fatores ambientais. Utilizando a bioimpressora tridimensional, construções complexas e viáveis podem ser impressas e facilmente reproduzidas.

Viabilidade de Bioprinted celulares Construções Usando uma impressora cartesiano Dispenser Três

Tissue engineering has centralized its focus on the construction of replacements for non-functional or damaged tissue. The utilization of ...

O objetivo geral deste procedimento é gerar construtos viáveis contendo células com uma geometria complexa, utilizando uma bioimpressora 3D. Isso é realizado primeiramente isolando células estromais de tecido adiposo humano a partir de cultura. Em seguida, as células são misturadas com bio-tinta de alginato oxidado conjugado com RGD, recém-preparada.No passo final, a célula LA no biomaterial é extrudida por meio da bioimpressão. Por fim, a microscopia confocal é utilizada para analisar a viabilidade, proliferação e migração das células bioimpressas. A principal vantagem deste procedimento em relação aos procedimentos existentes, como a formação de scaffolds e o semeadura celular, é que com o nosso método, é possível posicionar diretamente as células e agregados celulares exatamente onde precisam estar para formar o tecido.Quem demonstrará o procedimento hoje será Sarah Grace Dennis, uma estudante de pós-graduação do meu laboratório. Comece semeando 350.000 células estromais de tecido adiposo humano em um frasco T75 tratado com 15 mililitros de TMEM de baixa glicose para expansão em uma incubadora de cultura celular. Quando a cultura atingir 80% de confluência, remova o meio e lave as células com cinco mililitros de DPBS sem cálcio e magnésio.Em seguida, incubar as células em cinco mililitros de tripsina e DPBS por dois minutos a 37 graus Celsius; quando as células se desprendem, interromper a reação enzimática com três mililitros de meio de cultura celular e transferir as células para um tubo cônico de 50 mililitros. A seguir, centrifugar as células e ressuspender o pellet em dois mililitros de meio de cultura celular. Depois, contar as células, transferir uma alíquota de 1,3 vezes 10 elevado a 6 células para um tubo cônico de 15 mililitros e centrifugar as células novamente.Suspenda o pellet em um mililitro de bio-tinta recém-preparada, tomando cuidado para distribuir homogeneamente as células por toda a solução aquosa de alginato. Em seguida, carregue as células em uma seringa estéril compatível com impressora de três mililitros e parafuse uma ponteira plástica estéril de 22 gauge. Agora ligue a bioimpressora, cada um dos computadores do dispensador e o banho de água recirculante.Defina manualmente a temperatura do banho em quatro graus Celsius para o mecanismo de ação e os parâmetros de impressão para cada dispensador no computador correspondente ao dispensador. Defina o volume de dispensação em 230 nanolitros, o número de passos para trás em zero e a taxa de dispensação em 10 microlitros por segundo. Em seguida, abra o software de design e o programa para visualizar a exibição da câmera USB no computador.Em seguida, insira manualmente as coordenadas para uma matriz de pontos de cinco por cinco com 2,4 milímetros de espaço entre as gotas. Salve o programa e envie-o para o robô. Em seguida, coloque uma placa de Petri contendo gelatina com dióxido de titânio na plataforma da impressora a quatro graus Celsius e feche e trave a porta da câmara.Usando o controlador lógico programável, inicialize as fontes de luz ultravioleta para esterilizar a câmara. Após 90 segundos, abra a câmara e carregue a seringa contendo a suspensão de células estromais do tecido adiposo humano na pistola um, feche e trave a porta da câmara e use o controlador lógico programável para ligar o sistema de ventilação. Aguarde 30 segundos para que a pressão interna se equilibre e, em seguida, execute o programa contendo o trajeto geométrico e os parâmetros de impressão durante todo o processo de impressão.Observe a exibição da câmera USB no computador para confirmar uma impressão precisa e uniforme. Para quantificar a viabilidade das estruturas bioprintadas, mergulhe-as em solução de corante recém-preparada. Em seguida, coloque as estruturas na geladeira por 15 minutos no escuro para permitir que o corante fixe.Em seguida, utilizando uma imagem de microscópio confocal, os constructos corados: se as células aparecerem amarelas ou verdes, classifique-as como vivas; se vermelhas, as células estão mortas. Como esses resultados demonstram, a bioimpressão facilita a deposição de auxílio celular e hidrogéis em locais tridimensionais específicos de forma precisa e consistente, utilizando software computadorizado. O software determina o posicionamento de cada gota e controla muitos dos parâmetros para a dispensação.Um dos requisitos de uma técnica de bioimpressão bem-sucedida é que as células permaneçam viáveis aqui. Células impressas em tinta bio baseada em alginato, conforme acabou de ser demonstrado, foram analisadas uma hora e oito dias após a impressão, com 98% das células apresentando coloração verde e viabilidade no dia zero e 95% no oitavo dia. Como a coloração vermelha indica, poucas células mortas foram observadas em qualquer dos pontos temporais, confirmando a adequação da tinta alternativa para bioimpressão.Além disso, a tinta de alginato conjugada com RGD melhora a adesão das células aos constructos impressos, levando a uma maior expansão e proliferação celular, conforme quantificado em três áreas separadas do hidrogel no dia zero e no dia oito. Aqui, foi feita uma comparação da qualidade da conjugação do peptídeo RGD na tinta bioativa ginnet com o uso da tinta bioativa ginnet isolada no oitavo dia. A expansão celular observada na amostra corada com ginnet conjugado com RGD indicou a incorporação bem-sucedida do peptídeo ao ginnet, um fenômeno claramente ausente nas amostras de biotinta não conjugada após seu desenvolvimento.Essa técnica abriu caminho para pesquisadores na área de engenharia de tecidos explorarem a fabricação aditiva como um meio de montar construtos vivos e projetados.

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Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bioengenharia

Os métodos descritos neste trabalho mostram como converter uma impressora jato de tinta comercial em um bioprinter com polimerização UV simultânea. A impressora é capaz de construir a estrutura do tecido 3D com células e biomateriais. O estudo demonstrou aqui construiu uma neocartilage 3D.

Cartilagem Human Tissue Fabricação Usando tridimensional Inkjet Tecnologia de Impressão

Nós descrevemos um conjunto de protocolos que, juntos, oferecem uma bioink hidrogel que imita o tecido com o qual construções de tecido 3-D funcionais e viáveis ​​podem ser bioprinted para uso em aplicações in vitro de rastreio.

Bioprinting celularizado Constrói Usando um específico do tecido Hidrogel Bioink

Este protocolo descreve uma metodologia de bioimpressão usando um sistema de depósito robótico automatizado que incorpora pistas de orientação topográfica gravadas com a deposição precisa de uma biotinta de hidrogel contendo células. As células impressas são entregues diretamente aos recursos gravados e são capazes de sentir e orientar com eles.

Técnica Automated Robotic dispensação de Orientação da superfície e bioprinting de Células

Este protocolo descreve a bioprinção 3D do tecido cardíaco sem o uso de biomateriais. Os remendos cardíacos bioprinted 3D apresentam integração mecânica de esferóides componentes e são altamente promissores na regeneração do tecido cardíaco e como modelos 3D de doenças cardíacas.

Criação de tecido cardíaco exibindo integração mecânica de esferóides usando 3D Bioprinting

Nós fornecemos um protocolo generalizado, baseado em uma estratégia de bioprinting microfluidic para engenharia uma cama vascular microfibrous, onde um tipo da pilha secundária poderia ser mais propagado para o espaço intersticial dessa estrutura microfibrous para gerar organoids e tecidos vascularizados.

Vascularizado de microfluidic Bioprinting para a engenharia de tecidos e Organoids

Análogos de cartilagem e pele foram bioprinted usando um bioink de nanocellulose-alginato com base. Os bioinks era compartimentados antes da impressão através de uma unidade de mistura passiva de passo único. As construções foram demonstradas para ser uniformemente compartimentado, têm alta viabilidade e exibem favoráveis marcadores de diferenciação.

Bioprinting da cartilagem e Analogs de tecido de pele utilizando um romance passiva unidade técnica de mistura para Bioink Precellularization

Desenvolvemos um modelo de câncer de mama heterogênea consistindo de células de tumor e fibroblasto imortalizadas incorporadas em um bioink de alginato/gelatina de bioprintable. O modelo recapitula o microambiente do tumor na vivo e facilita a formação de esferoides tumor multicelulares, produzindo insights sobre os mecanismos de condução tumorigênese.

Hidrogel Bioprintable alginato/gelatina 3D em Vitro sistemas modelo induzem a formação de esferoide de célula

Retalhos projetados requerem uma rede vascular funcional incorporada. Neste protocolo, apresentamos um método de fabricação de um retalho de tecido impresso em 3D contendo uma rede vascular hierárquica e suas anastomosas microcirúrgicas diretas para a artéria femoral de rato.

Fabricação de retalhos vasculares projetados usando tecnologias de impressão 3D

O processamento de cisalhamento durante a formação de hidrogel resulta na produção de suspensões de microgel que se reestruturam rapidamente, mas rapidamente após a remoção das forças de cisalhamento. Tais materiais têm sido utilizados como matriz de suporte para bioimpressão de estruturas complexas carregadas de células. Aqui, são descritos os métodos utilizados para a fabricação do leito de suporte e das biotintas compatíveis.

Géis fluidos de agarose formados por processamento de cisalhamento durante gelificação para bioimpressão 3D em suspensão

Este estudo apresenta um novo banho de suspensão de submicrogel de κ-carragenina, exibindo notáveis propriedades reversíveis de transição de interferência-desobstrução. Esses atributos contribuem para a construção de tecidos e órgãos biomiméticos em bioimpressão 3D embarcada. A impressão bem-sucedida de tecidos semelhantes ao coração/esôfago com alta resolução e crescimento celular demonstra aplicações de bioimpressão e engenharia de tecidos de alta qualidade.

Bioimpressão Incorporada de Estruturas Semelhantes a Tecidos Usando Meio Submicrogel κ-Carragenana

Os extratos de membrana basal solúvel são as matrizes biológicas mais amplamente utilizadas na pesquisa do câncer, mas seu comportamento reológico complexo dificulta sua bioimpressão com sistemas de bioimpressão disponíveis comercialmente. Este trabalho apresenta uma estratégia de bioimpressão customizada para produzir construções matriciais puras com boa fidelidade de forma em camadas únicas e múltiplas.

Projeto e validação de uma bioimpressora de extrusão volumétrica para bioimpressão de extrato de membrana basal solúvel para pesquisa translacional

Aprenda a criar construtos viáveis com células humanas de tecido adiposo usando bioprinting 3D com bio tinta de alginato. Este método permite posicionamento preciso de células para engenharia de tecidos.

Viabilidade de Bioprinted celulares Construções Usando uma impressora cartesiano Dispenser Três

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