Name: Combinando Duplo Fluorescência In Situ A hibridação com imunomarcação para a detecção da expressão de três genes em secções do cérebro do rato (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-03-26T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 23 s
Description: Aprenda a detectar três genes simultaneamente em secções cerebrais de rato combinando hibridização in situ por dupla fluorescência com imunomarcação. Este método permite localizar a expressão génica em tipos celulares específicos sem necessidade de anticorpos para todos os alvos.

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O trabalho nos laboratórios dos autores foi apoiado pelo Conselho de Pesquisa em Biotecnologia e Ciências Biológicas do Reino Unido (BB/J006602/1 e BB/L003236/1), pelo Wellcome Trust (WT100269MA) e pelo Conselho Europeu de Pesquisa (ERC, Programa "Ideias" 293544). SJ foi apoiado por uma bolsa de longo prazo da EMBO. Os autores agradecem a Stephen Grant por sua assistência técnica.

Declaração de ética: Rato criação e manipulação estão em conformidade com os regulamentos UK Home Office e as orientações do comitê de ética UCL, cumprindo com os Animais (procedimentos científicos) Act de 1986 do Reino Unido e dos seus regulamentos de alteração 2012. Nota: Todas as soluções devem ser feitos com pirocarbonato de dietilo (DEPC) - água tratada para destruir qualquer RNase residual. Para o tratamento DEPC, adicione DEPC (1 ml por litro), agitar vigorosamente até que todos os glóbulos DEPC desapareceram depois autoclave para degradar o DEPC. 1. RNA Probe Synthesis <ol><li> CUIDADO: Ao manusear formamida, usar Equipamentos de Proteção Individual (EPI) e usar uma cabine de segurança. Preparar tampão de hibridação: água desionizada com 50% (v / v) de formamida desionizada, NaCl 200 mM, EDTA 5 mM, Tris-HCl 10 mM pH 7,5, tratada com DEPC 5 mM de NaH 2 PO 4, 5 mM de Na 2 HPO 4, 0,01 mg / ml de ARNt de levedura, 1 × soluti de Denhardtno, e 10% w / v de sulfato de dextrano. </li><li> Escolher um clone de ADN que contém a sequência de cDNA do gene de interesse num plasmídeo com promotores de ARN-polimerase. Para este exemplo, utilizar um clone de ADN pCMV-SPORT6, IRAVp968C0654D (Genbank accessionBC024934), com T7 e promotores da polimerase de ARN de Sp6 para Aspa (Recurso Figura 1). </li><li> Preparar DNA de plasmídeo linearizado como molde. <ol><li> Cresça o clone de ADN, extrair o plasmídeo com um kit de purificação de plasmídeo em pequena escala de acordo com o protocolo do fabricante e a sequência com a T7 e os iniciadores universais SP6. </li><li> Digerir o ADN do plasmídeo 1020 ug com uma enzima de restrição que corta na extremidade 5 &#39;da cadeia com sentido do cDNA. Para este exemplo, usamos 100 unidade Sal I para digerir o plasmídeo pCMV-SPORT6- Aspa. Incubar durante 1,5 horas a 37 o C. </li><li> Executar uma pequena alíquota num gel de agarose para verificar que o plasmídeo é linearizado totalmente. </li></ol></li><li> Purifica-se oplasmídeo linearizado utilizando fenol-clorofórmio. <ol><li> Adicionar 1/10 volume de 3 M de acetato de sódio, um volume de Tris 10 mM HCI (pH 8,0) - fenol equilibrado e um volume de clorofórmio / álcool isoamílico (IAA) (24: 1). </li><li> Centrifugar a 16000 xg durante 1 min à temperatura ambiente (20 - 25 ° C, TA) e extrai-se fase aquosa superior. </li><li> Adicionar um volume de clorofórmio / IAA, centrifugar a 16000 xg durante 1 min e extrair fase aquosa superior. </li><li> Repita o passo 1.4.3. </li><li> Adicionar 2 volumes de etanol e deixou-se a -20 ° C durante 1 h ou O / N. </li><li> Centrifuga-se a 16000 xg, a 4 ° C durante 10 min. Descartar o sobrenadante. </li><li> Lava-se a pastilha com etanol frio a 70% e ressuspender em approximatively um ADNc ug por 2,5 ul em TE (10 mM Tris-HCl, EDTA 1 mM, pH 7,5). </li></ol></li><li> Sintetizar as duas sondas, uma marcada com digoxigenina (DIG) e a outra com isotiocianato de fluoresceína (FITC). <ol><li> Seleccione a RNA polimerase adequada para fazer o anti-sesonda NSE (complementar para o ARNm alvo). Para este exemplo, utilizar ARN-polimerase T7 para fazer sonda Aspa. </li><li> Prepare a reacção de transcrição in vitro: adicionar 1 ug do ADN linearizado, 4,0 ul 5 tampão de transcrição X, 6,0 ul de DTT 100 mM, 2,0 ul de 10x DIG ou FITC ARN rotulagem mistura contendo dNTP, 1 ul de inibidor de RNase, e 20 - 40 unidades de polimerase de ARN; tornar o volume final até 20 ul com água tratada com DEPC. </li><li> Incubar a 37 ° C durante 1,5 horas. </li></ol></li><li> RUN1 ul da reacção de transcrição num gel de agarose a 1,0% para verificar que a reacção funcionou. O gel deve mostrar o modelo linear e uma banda brilhante da sonda. </li><li> Completar o volume até 100 ul com tampão de hibridação e armazenar alíquotas de 10 uL a -80 ° C. </li></ol> 2. Perfusão, Fixação e Recolha de Tecidos <ol><li> CUIDADO: Ao manusear paraformaldeído (PFA), ambos sólida eaquosa, utilizar EPI e usar uma cabine de segurança. Preparar a solução de formaldeído por dissolução de 4% (w / v) de PFA em 1x tampão fosfato salino (PBS) utilizando calor (55 ° C). Filtra-se a solução de formaldeído com papel de filtro. </li><li> Preparar a solução de sacarose através da dissolução de 20% (w / v) de sacarose em água destilada e adiciona-se 0,1% (v / v) de DEPC. Deixe O / N à temperatura ambiente com uma tampa solta e, em seguida, autoclave. </li><li> Terminalmente anestesiar um ratinho por injecção intra-peritoneal de pentobarbital (50 mg / kg). Avaliar a profundidade da anestesia por pitada dedo do pé e ausência de reflexo de retirada indica anestesia profunda. </li><li> Uma vez que o mouse está sob anestesia profunda, fazer uma incisão abaixo da caixa torácica e cortar através da caixa torácica em ambos os lados, levante-a para expor o coração. </li><li> Inserir uma agulha de 25 G para o ventrículo esquerdo do coração. Fazer uma pequena incisão no átrio direito do coração. </li><li> Perfundir o animal com 20 ml de PBS e, em seguida, 40 ml de solução de formaldeído. Para P30 e mais velhosratinhos, utilizar uma taxa de perfusão de 12 ml / min, mas para os animais mais jovens usar uma taxa mais baixa (7-10 ml / min). </li><li> Dissecar o cérebro. <ol><li> Cortar a cabeça do rato com uma tesoura cirúrgica, fazendo uma posterior corte das orelhas. Fazer uma incisão na linha média na pele caudal e rostral trabalhar para remover a pele do crânio. </li><li> A partir da parte caudal, corte através da parte superior do crânio, ao longo da linha média e entre os olhos com uma tesoura íris. Remova o parietal e placas ósseas frontais inclinando um lado de uma placa de osso de cada vez e colocando-a fora com pinças. </li><li> Incline ligeiramente o cérebro para cima a partir da parte anterior com uma pinça e cortar os nervos ópticos e outros nervos cranianos. Levante cuidadosamente o cérebro fora do crânio. </li></ol></li><li> Coloque o cérebro em uma matriz cérebro coronal mouse. Cortar o cérebro em 3 de aproximadamente 4 pedaços mm com uma lâmina de barbear pena. </li><li> Transferir as fatias em solução PFA a 4% e incubar O / N a 4 ° C. </li><li> cérebro transferênciafatias para tratada com DEPC 20% de solução de sacarose e incubar O / N a 4 ° C </li><li> Coloque cada fatia do cérebro em um cryomould seca, cercar com a temperatura ideal de corte médio (OCT) e congelar em gelo seco. Armazenar a -80 ° C. </li></ol> 3. cryosectioning <ol><li> Corte de 15 um secções de tecido congelado em um criostato e recolher as secções em lâminas de microscópio. Se necessário, molhar as seções com PBS tratado com DEPC e alise-os com um pincel fino. </li><li> Deixar as lâminas secar durante aproximadamente 1 h para assegurar que o tecido adere à lâmina. </li></ol> 4. Hibridização <ol><li> Preparar o tampão de lavagem de 65 ° C: 150 mM de NaCl, 15 mM de Na 3 C 3 H 5 O (COO) 3 (1x ​​= citrato de sódio salino), 50% (v / v) de formamida e 0,1% (v / v) de Tween- 20. </li><li> Preparar tampão MABT: ácido maleico 100 mM, NaCl 150 mM, 0,1% (v / v) de Tween-20, pH 7,5. </li><li> Diluir as duas sondas (DIG-rotulados e FITC-Labelled) 1 / 1.000 em tampão de hibridação pré-aquecida a 65 ° C e misture bem. </li><li> Aplicar cerca de 300 ul de mistura de hibridação sobre cada lâmina, coverslipwith (C 200 o) lamelas de forno e incubar O / N a 65 ° C numa câmara humidificada. </li><li> Transferir as lâminas em um frasco Coplin contendo tampão de lavagem pré-aquecido. Lavam-se as lâminas durante 30 min, duas vezes a 65 ° C com tampão de lavagem. </li><li> Lavam-se as lâminas durante 10 minutos três vezes com MABT à TA. </li></ol> 5. Visualização do Probe FITC <ol><li> Preparar tampão de bloqueio ISH: MABT com reagente de bloqueio a 2% e 10% de soro de ovelha inactivado pelo calor. </li><li> Opcional: utilizar uma caneta hidrofóbico para desenhar círculos em torno das secções de tecido na lâmina para reduzir o volume das soluções de anticorpo necessários. </li><li> Incubar as lâminas durante 1 h à temperatura ambiente com tampão de bloqueio ISH numa câmara humidificada. </li><li> Incubar as lâminas O / N a 4 ° C com uma peroxidase de rábano (POD) - conjugadoanticorpo anti-FITC d diluído 1/500 (v / v) de tampão de bloqueio ISH. </li><li> Colocar as lâminas em um frasco Coplin contendo PBS com 0,1% (v / v) de Tween-20 (PBST). Lavar 3 vezes durante 10 min em PBST e substituir com PBST fresco de cada vez. </li><li> Imediatamente antes da utilização, prepare o tiramida fluorescente diluindo 100 vezes no diluente amplificação. Para este exemplo, utilizar FITC-tiramida. </li><li> Adicione isto a os slides e deixe por 10 minutos em temperatura ambiente. </li><li> Colocar as lâminas em um frasco Coplin e lavar 3 vezes em PBST durante 10 min. </li></ol> 6. Visualization da Sonda DIG <ol><li> Prepare 0,1 M Tris-HCl pH 8,2. </li><li> Incubar as lâminas com tampão ISH bloqueio durante 1 h à TA. </li><li> Incubar as lâminas O / N a 4 ° C com uma fosfatase alcalina (AP) -conjugated anticorpo anti-DIG diluído a 1 / 1.500 (v / v) de tampão de bloqueio ISH. </li><li> Lavar com MABT durante 10 minutos, três vezes. </li><li> Lavar duas vezes com 0,1 M de Tris-HCl pH 8,2, durante 5 min à TA. </li><li>Imediatamente antes da utilização, preparar solução Fast Red por dissolução dos comprimidos em 0,1 M de Tris pH 8,2. Filtrar a solução através de um filtro de 0,22 um. </li><li> Incubar as lâminas a 37 ° C com uma solução de Fast Red numa câmara humidificada. À medida que o tempo para o desenvolvimento óptimo varia, verificar regularmente as lâminas com um microscópio de fluorescência para monitorizar a formação de precipitado. Para este exemplo, parar a reacção após 2-3 h. </li><li> Lavar com PBST, durante 10 minutos, três vezes. </li></ol> 7. Imuno-histoquímica <ol><li> Prepare tampão de bloqueio IHC: 10% (v / v) de soro (de uma espécie diferente de acolhimento anticorpo primário) em PBST. </li><li> Incubar as lâminas com IHC tampão de bloqueio durante 1 h à temperatura ambiente numa câmara humidificada. </li><li> Prepare anticorpo primário: diluir o anticorpo primário a uma diluição adequada em PBST com% de soro 5 (de uma espécie diferente de acolhimento anticorpo primário). Para este exemplo, utilizar um anticorpo de coelho anti-Olig2 a 1/400 (v / v) de diluição. </li><li>Incubar na solução de anticorpo primário a 4 ° CO / N. </li><li> Lavar com PBST, durante 10 minutos, três vezes. </li><li> Prepare o anticorpo secundário: diluir um anticorpo secundário conjugado com fluoróforo em uma diluição apropriada em PBST com 5% (v / v) de soro (de uma espécie diferente de anticorpo primário hospedeiro) e 0,1% (v / v) a Hoechst 33258. Para este exemplo , usar um burro anti-coelho Alexa647 anticorpo secundário a 1 / 1.000 (v / v) de diluição. </li><li> Incubar na solução de anticorpo secundário à TA durante 1 h. </li><li> Lavar com PBST, durante 10 minutos, três vezes. </li></ol> 8. montagem <ol><li> Parcialmente secar as lâminas a RT, e montar com um meio de montagem de fluorescência. Deixe os slides para secar e depois imagem em um microscópio confocal sob 10X, 20X e 63X objetivos utilizando 4 canais diferentes com os seguintes comprimentos de onda de excitação: 570 nm para o Red rápido, 488 nm para FITC, 647 nm para Olig2 imunomarcação e 350 nm para a Hoechst . </li></ol>

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</ol>

Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.

Este protocolo fornece um procedimento passo-a-passo para um ARN de dupla hibridização in situ seguindo-se a imunocoloração. Temos utilizado este protocolo para confirmar que Aspa é expresso em oligodendrócitos maduros em várias áreas do cérebro. Este processo multi-passo tem muitas armadilhas potenciais que podem afectar a sensibilidade e deve ser evitado. Em primeiro lugar, todas as soluções e tampões de armazenamento para a reacção de transcrição precisa de ser isenta de...

As células da glia, que são as células mais abundantes no sistema nervoso central (SNC), compreendem oligodendrócitos (células mielinizantes do sistema nervoso central), oligodendrócitos precursores (PO, também conhecidos como &quot;células&quot;) NG2, astrócitos e microglia. Há um interesse crescente nas funções de células gliais e de seus papéis potenciais em doenças neurológicas 1. Por exemplo, a doença de Canavan (CD) é uma doença neurodegenerativa hereditária começando no início da infância com leucodistrofia espongiforme e uma perda progressiva de neurónios, que conduz a morte geralmente antes dos 10 anos de idade 2,3. As mutações no gene Aspartoacyclase (ASPA) que levam à redução da actividade drasticamente ASPA 4 em CD foram identificados. ASPA é uma enzima que catalisa a desacetilação de N-acetilaspartato (NAA), uma molécula altamente concentrada no cérebro, acetato de gerar e aspartato 5-7. Muitos pacientes com DC apresentam níveis mais elevados de NAA devido à falta de ASPA actividade. Alguns estudos especular que o acetato de NAA-derivado pode ser uma importante fonte de ácidos gordos / lípidos no cérebro durante o desenvolvimento e CD podem resultar da diminuição da síntese de mielina durante o desenvolvimento causado pela falha de NAA para ser discriminado 3,5,6. ASPA é predominantemente encontrado no rim, no fígado e da matéria branca do cérebro, e dado o papel importante da ASPA em CD, a expressão celular desta enzima no cérebro tem sido estudado por vários laboratórios. Ao olhar para a actividade enzimática ASPA no cérebro, estudos anteriores descobriu que o aumento da actividade durante o desenvolvimento cerebral ASPA paralelo ao curso de tempo de 8-10 mielinização. Ao nível celular, ensaios para a actividade enzimática, bem como hibridação in situ (ISH) e imuno-histoquímica (IHC) ASPA análises sugerem que é expresso principalmente em oligodendrócitos no cérebro, mas não em neurónios ou de astrócitos 11-16. Alguns estudos descobriram que ASPA pode tambémser expresso em microglia no sistema nervoso central 12,14. dados até agora sobre a expressão ASPA em PO são limitadas. De acordo com um estudo recente em que transcriptomes de diferentes tipos de células no córtex cerebral do rato, incluindo neurónios, astrócitos, PO, oligodendrócitos recém-formados, oligodendrócitos myelinating, microglia, células endoteliais e pericitos foram analisados ​​por ARN de sequenciação 17, ASPA é expresso exclusivamente em oligodendrócitos , em particular em myelinating oligodendrócitos (http://web.stanford.edu/group/barres_lab/brain_rnaseq.html). Apesar desses estudos sobre padrão de expressão ASPA no cérebro, uma série de incertezas permanecem. técnicas diferentes podem ser usadas para estudar os padrões de expressão de genes. IHC é um método vulgarmente utilizado para detectar o produto funcional (ou seja, proteína) de um gene de expressão em secções de tecido. Apesar de sua grande utilidade, esta técnica tem limitações como a sua aplicação e especificidade estão sujeitas tO a disponibilidade e a especificidade do anticorpo necessário. Por comparação, a ISH tem a vantagem de ser capaz de revelar a expressão de qualquer gene ao nível do ARNm. No entanto, pode ser tecnicamente difícil de usar várias sondas ao mesmo tempo, a fim de localizar um gene de expressão para tipos de células específicos. Neste artigo, descreve-se um protocolo que combina ARN de dupla fluorescência de hibridação in situ com fluorescência de uma imunomarcação de proteínas. Temos utilizado este conjunto de técnicas para analisar o padrão de expressão da Aspa no cérebro do rato. Este método permite o estudo preciso da expressão génica utilizando microscopia confocal.

<table><tbody><tr><td>QIAprep Miniprep</td><td>Qiagen</td><td>27104</td><td></td></tr><tr><td>Formamida deionizada</td><td>Sigma</td><td>F9037</td><td>para tampão de bloqueio ISH</td></tr><tr><td>Cloreto de sódio</td><td>Sigma</td><td>S3014</td><td></td></tr><tr><td>Base Trizma Sigma</td><td></td><td>T1503</td><td></td></tr><tr><td>Ácido clorídrico</td><td>VWR International</td><td>20252.290</td><td></td></tr><tr><td>Fosfato de sódio monobásico anidro</td><td>Sigma</td><td>S8282</td><td></td></tr><tr><td>Fosfato de sódio dibásico di-hidratado</td><td>Sigma</td><td>30435</td><td></td></tr><tr><td>TRNA de levedura</td><td>Roche</td><td>10109495001</td><td></td></tr><tr><td>Solução de 50x Denhardt</td> Life <td>Technologies</td><td>750018</td><td></td></tr><tr><td>Sulfato de dextrano</td><td>Sigma</td><td>D8906</td><td></td></tr><tr><td>Aspa cDNA clone</td><td>Fonte Bioscience</td><td>IRAVp968C0654D</td><td></td></tr><tr><td>SalI</td><td>New England Biolabs</td><td>R0138</td><td></td></tr><tr><td>Acetato de sódio</td><td>Sigma</td><td>S2889</td><td></td></tr><tr><td>Fenol equilibrado</td><td>Sigma</td><td>P4557</td><td></td></tr><tr><td>Clorofórmio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C2432</td><td></td></tr><tr><td>Álcool isoamílico</td><td>Aldrich</td><td>496200</td><td></td></tr><tr><td>Etanol</td><td>VWR International</td><td>20821.321</td><td></td></tr><tr><td>T7 RNA polimerase</td><td>Promega</td><td>P4074</td><td></td></tr><tr><td>Tampão de transcrição</td><td>Promega</td><td>P118B</td><td></td></tr><tr><td>100 mM DTT</td><td>Promega</td><td>P117B</td><td></td></tr><tr><td>UTP-DIG NTP mix</td><td>Roche</td><td>11277073910</td><td></td></tr><tr><td>Rnasin</td><td>Promega</td><td>N251B</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldeído</td><td>Sigma</td><td>P6148</td><td></td></tr><tr><td>Papel de filtro</td><td>Fisher científico</td><td>005479470</td><td></td></tr><tr><td>Sacarose</td><td>Sigma</td><td>59378</td><td></td></tr><tr><td>Dietil pirocarbonato</td><td>Sigma</td><td>D5758</td><td></td></tr><tr><td>Pentobarbitone</td><td>Animalcare Ltd</td><td>BN43054</td><td></td></tr><tr><td>Tesoura de dissecação</td><td>World Precision Instruments</td><td>15922</td><td></td></tr><tr><td>Agulha de calibre 25</td><td>Terumo</td><td>300600</td><td></td></tr><tr><td>Bomba peristáltica</td><td>Cole-Parmer Instrument Co. Ltd</td><td>WZ-07522-30</td><td></td></tr><tr><td>Tesoura de íris</td><td>Weiss</td><td>103227</td><td></td></tr><tr><td>pinça No.2 Instrumentos</td> de <td>Precisão Mundial</td><td>500230</td><td></td></tr><tr><td>Matriz Cerebral Coronal</td><td>World Precision Instruments</td><td>RBMS-200C</td><td></td></tr><tr><td>Lâmina de barbear</td><td>Personna Medical</td><td>PERS60-0138</td><td></td></tr><tr><td>OCT medium</td><td>Tissue tek</td><td>4583</td><td></td></tr><tr><td>Criostato/micrótomo</td><td>Bright</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Superfrost mais slides</td><td>Thermo Scientific</td><td>J1800AMNZ</td><td></td></tr><tr><td>Citrato de sódio</td><td>Sigma</td><td>S4641</td><td>para 65 &graus; C tampão</td></tr><tr><td>de lavagem Formamida</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F7503</td><td></td></tr><tr><td>Tween-20</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P1379</td><td></td></tr><tr><td>Lamínulas</td><td>VWR International</td><td>631-0146</td><td></td></tr><tr><td>Coplin Jar</td><td>Smith Scientific Ltd</td><td>2959</td><td></td></tr><tr><td>Reagente de bloqueio</td><td>Roche</td><td>11096176001</td><td></td></tr><tr><td>Soro de ovelha inativado por calor</td><td>Sigma</td><td>S2263</td><td></td></tr><tr><td>Caneta hidrofóbica</td><td>Cosmo Bio</td><td>DAI-PAP-S</td><td>1:500</td></tr><tr><td>&alpha;-FITC anticorpo conjugado com POD</td><td>Roche</td><td>11426346910</td><td></td></tr><tr><td>TSA&trade; Mais o sistema de fluoresceína</td><td>Perkin Elmer</td><td>NEL741001KT</td><td>1:1.500</td></tr><tr><td>&alpha;-DIG AP-conjugado</td><td>Roche</td><td>11093274910</td><td></td></tr><tr><td>Fast red tablets Roche</td><td></td><td>11496549001.22</td><td></td></tr> <tr><td>&micro; Filtro M</td><td>Millex</td><td>SLGP033RS</td><td></td></tr><tr><td>&alpha;-Olig2 Rabbit antbody</td><td>Millipore</td><td>AB9610</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor&reg; 647-conjugado &alpha;-rabbit anticorpo Life</td><td>technologies</td><td>A-31573</td><td>1:1,000</td></tr><tr><td>bisBenzimida H 33258</td><td>sigma</td><td>B2883</td><td></td></tr><tr><td>Meio de montagem</td><td>Dako</td><td>S3023</td><td></td></tr><tr><td>Leica SP2 confocal microscópio</td><td>Leica</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

combinando duplo fluorescência<em&gt; in situ</em&gt; a hibridação com imunomarcação para a detecção da expressão de três genes em secções do cérebro do rato

Combining Double Fluorescence In Situ Hybridization with Immunolabelling for Detection of the Expression of Three Genes in Mouse Brain Sections

Detecção de expressão de genes em diferentes tipos de células do cérebro, por exemplo, neurónios, astrócitos, oligodendrócitos, microglia e oligodendrócitos precursores, pode ser dificultada pela falta de anticorpos primários ou secundários específicos para a imunocoloração. Descrevemos aqui um protocolo para detectar a expressão de três genes diferentes na mesma secção utilizando cérebro de fluorescência dupla de hibridação in situ com duas sondas específicas para o gene seguido de imunocoloração com um anticorpo de alta especificidade dirigida contra a proteína codificada por um terceiro gene. O gene Aspartoacyclase (ASPA), de mutações que podem conduzir a uma doença da matéria branca humana rara - doença de Canavan - é pensado para ser expresso em oligodendrócitos e a microglia, mas não em neurónios e astrócitos. No entanto, o padrão de expressão precisa de ASPA no cérebro tem ainda de ser estabelecidos. Este protocolo nos permitiu determinar que ASPA é expressa em um subconjunto de oligodendrócitos maduros umND pode ser geralmente aplicado a uma ampla gama de estudos padrão de expressão do gene.

Este artigo descreve um método para a ISH dupla fluorescência seguido por imunomarcação em seções do cérebro do rato. Uma breve descrição deste protocolo é demonstrado na Figura 1. O primeiro passo foi sintetizar sondas específicas para Aspa e MBP (proteína básica da mielina). Para verificar que as sondas foram sintetizadas, uma pequena aliquota de cada reacção foi efectuada num gel de agarose. O modelo linear fraco e uma grande quantidade de ARN a sond...

Localizar a expressão gênica em tipos específicos de células pode ser um desafio devido à falta de anticorpos específicos. Aqui descrevemos um protocolo para detecção tripla simultânea de expressão gênica combinando hibridização in situ de RNA de fluorescência dupla com imunocoloração.

Combinando Duplo Fluorescência<em&gt; In Situ</em&gt; A hibridação com imunomarcação para a detecção da expressão de três genes em secções do cérebro do rato

Detection of gene expression in different types of brain cells e.g., neurons, astrocytes, oligodendrocytes, oligodendrocyte precursors and microglia, can ...

O objetivo geral deste experimento é detectar simultaneamente a expressão de três genes diferentes em seções de cérebro, utilizando hibridização in situ por dupla fluorescência seguida de imunomarcação. Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais na área de neurociência, como, por exemplo, qual tipo celular expressa o meu gene de interesse? A principal vantagem desta técnica é que não é necessário ter um bom anticorpo para o gene de interesse a fim de localizar sua expressão em um tipo celular específico.Para resumir este procedimento, no primeiro dia, cortes de tecido fixado são preparados e hibridizados com duas sondas de RNA marcadas diferentemente durante a noite. No segundo dia, os cortes são incubados durante a noite com um anticorpo direcionado à sonda marcada com FITC. Este anticorpo está conjugado com peroxidase do rabo-de-cavalo, que catalisa a adição de uma tiramida fluorescente no terceiro dia.Em seguida, utiliza-se um anticorpo conjugado à fosfatase alcalina para reconhecer a sonda marcada com DIG. No quarto dia, esta enzima catalisa a formação do precipitado fluorescente quando incubada com a solução Fast Red. Então, os cortes são incubados durante a noite com um anticorpo primário que reconhece uma proteína de interesse.Por fim, no quinto dia, esta proteína é visualizada com um anticorpo secundário conjugado a um fluoróforo. Para iniciar este procedimento, escolha um clone de DNA que contenha a sequência de cDNA do gene de interesse em um plasmídeo com promotores de RNA polimerase. Em seguida, cultive o clone de DNA, extraia o plasmídeo com um kit de purificação de plasmídeos em pequena escala e sequencie-o utilizando os iniciadores universais T7 e SP6.Digira de 10 a 20 microgramas de DNA plasmidial com uma enzima de restrição que corta na extremidade cinco prima da fita codificante do cDNA. Incube por 1,5 hora a 37 graus Celsius. Em seguida, corra uma pequena alíquota em um gel de agarose para verificar se o plasmídio foi completamente linearizado.Para purificar o plasmídeo linearizado, adicione 1/10 do volume de acetato de sódio 3 molar, um volume de fenol equilibrado com 10 milimolar de Tris-HCl e um volume de clorofórmio-álcool isoamílico. Centrifugue a 16.000 Gs por um minuto à temperatura ambiente e extraia a fase aquosa superior. Em seguida, adicione um volume de clorofórmio IAA.Centrifugue a 16.000 Gs por um minuto e extraia a fase aquosa superior. Repita este passo mais uma vez. Em seguida, adicione dois volumes de etanol e mantenha a -20 graus Celsius por uma hora ou durante a noite.Em seguida, centrifugue a 16.000 Gs a quatro graus Celsius por 10 minutos. Descarte o sobrenadante e lave o pellet com etanol frio a 70%. Em seguida, re-suspenda-o em TE numa concentração de um micrograma de cDNA por 2,5 microlitros.Para sintetizar as duas sondas, primeiro selecione a polimerase de RNA apropriada. Em seguida, prepare a reação de transcrição in vitro e complete o volume final até 20 microlitros com água tratada com DEPC. Incube a 37 graus Celsius por 1,5 hora.Posteriormente, aplique um microlitro da reação de transcrição em um gel de agarose a 1% para verificar se a reação foi bem-sucedida. O gel deve mostrar o molde linear e uma faixa intensa da sonda. Neste procedimento, corte seções de tecido congelado com espessura de 15 micrômetros em um criostato.Coletar os cortes sobre as lâminas de microscópio e deixar as lâminas secarem por uma hora para garantir que os tecidos adiram às lâminas. O fator mais importante para que este procedimento funcione bem é a qualidade dos cortes. Isso depende parcialmente de um tecido bem perfundido e fixado, e parcialmente da técnica de corte para obter seções planas livres de contaminação por RNase.Em seguida, dilua as duas sondas em tampão de hibridização pré-aquecido a 65 graus Celsius e misture bem. Aplique 300 microlitros da mistura de hibridização sobre cada lâmina e cubra com uma lamínula pré-aquecida em estufa. Posteriormente, incube as lâminas durante a noite a 65 graus Celsius em uma câmara umidificada.No dia seguinte, transfira as lâminas para um frasco Coplin contendo tampão de lavagem pré-aquecido e lave as lâminas por 30 minutos, duas vezes, a 65 graus Celsius. Em seguida, lave as lâminas por 10 minutos, três vezes, com solução de lavagem MABT à temperatura ambiente. Nesta etapa, use uma caneta hidrofóbica para desenhar círculos ao redor das seções de tecido.Em seguida, incubar as lâminas por uma hora à temperatura ambiente com o tampão bloqueador de IHQ em uma câmara umidificada. Depois, incubar as lâminas durante a noite a 4 graus Celsius com um anticorpo anti-FITC conjugado à peroxidase de rábano-forrageiro. Em seguida, colocar as lâminas em um frasco Coplin contendo PBST.Lave-os em PBST três vezes, durante 10 minutos cada vez, substituindo por PBST fresco a cada vez. Posteriormente, adicione tiromida fluorescente aos lâminas e deixe por 10 minutos à temperatura ambiente. Coloque os lâminas em um frasco de Coplin e lave em PBST por 10 minutos, três vezes.Posteriormente, incubar as lâminas com o tampão bloqueador de IHQ durante uma hora à temperatura ambiente. Em seguida, incubar as lâminas durante a noite a quatro graus Celsius com um anticorpo anti-dig conjugado à fosfatase alcalina. Depois disso, lavá-las com MABT três vezes, por 10 minutos cada vez.Em seguida, lave as lâminas duas vezes com tris HCL 0,1 molar em pH 8,2 durante cinco minutos à temperatura ambiente. Filtre a solução de vermelho rápido e incube as lâminas a 37 graus Celsius com a solução de vermelho rápido em uma câmara umidificada. Como o tempo para desenvolvimento ideal varia, verifique as lâminas regularmente com um microscópio de fluorescência para monitorar a formação do precipitado.Em seguida, lave-os três vezes com PBST durante 10 minutos cada vez. Para realizar a imunohistoquímica, incube as lâminas com o tampão bloqueador para IHC durante uma hora à temperatura ambiente em uma câmara umidificada. A seguir, incube as lâminas na solução de anticorpo primário a quatro graus Celsius durante a noite.No dia seguinte, lave as lâminas com PBST durante 10 minutos, três vezes. Incube-as na solução de anticorpo secundário à temperatura ambiente por uma hora. Em seguida, lave-as com PBST três vezes, por 10 minutos cada vez.Posteriormente, seque parcialmente as lâminas à temperatura ambiente e monte-as com um meio de montagem para fluorescência. Deixe as lâminas secarem antes de imagiá-las em um microscópio confocal. São mostradas aqui imagens representativas de HIS para Aspa e Mbp, seguidas por imunomarcação para OLIG2 combinada com marcação por hibridação com oligonucleotídeos marcados.Aspa foi expresso em algumas células positivas para MBP e positivas para OLIG2 no córtex e no corpo caloso. Algumas células positivas para Mbp e positivas para OLIG2 não expressam Aspa. Durante a realização deste procedimento, é importante lembrar-se de manter as fatias e todas as soluções livres de contaminação por RNase.Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como estudar padrões de expressão gênica por meio da inibição com N-citrina e imunohistoquímica. Esta técnica pode ser adaptada para uma variedade de tecidos de diferentes origens e estágios de desenvolvimento.

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Neuroscience

Neurociência

Fluorescência dupla In situ Hibridação nas Seções cérebro fresco

A combinação de diferentes técnicas para maximizar a coleta de dados a partir de tecido do mouse é apresentado.

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 Realizando hibridização in situ de fluorescência dupla para detectar a expressão gênica em seções cerebrais de camundongos

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Imunocoloração de neurônios em fatias de cérebro de camundongo após hibridização in situ fluorescente

Este protocolo de nível introdutório descreve os reagentes, equipamentos e técnicas necessárias para completar a coloração imuno-histoquímica de cérebros de roedores, usando marcadores para microglia e elementos neuronais como exemplo.

Primer para imunohistoquímica em tecido criosseccionada cérebro de um rato: Exemplo de coloração para Microglia e Neurônios

Nós descrevemos um monte de todo o processo de hibridação in situ multi-alvo cromogénico (MC-DESEJO) em embriões de Drosophila intactas permitindo a detecção simultânea e específica de três padrões de distribuição mRNA diferentes, contrastando precipitados de cor.

Multi-alvo Chromogenic Whole-mount<em&gt; In Situ</em&gt; Hibridização para Comparando Expressão Gênica em Domínios<em&gt; Drosophila</em&gt; Os embriões

Este protocolo descreve um fluxo de trabalho passo a passo para a costainização imunofluorescente de IBA1 e TMEM119, além da análise da densidade microglial, distribuição e morfologia, bem como infiltração periférica de células mieloides no tecido cerebral do rato.

Imunofluorescência Manchausando IBA1 e TMEM119 para densidade microglial, morfologia e análise periférica de infiltração de células mieloides no cérebro do rato

Este protocolo descreve um método para combinar hibridização in situ fluorescente (FISH) e imunohistoquímica de fluorescência (IHQ) em cortes frescos congelados e fixos de camundongos em cérebros, com o objetivo de obter sinais de FISH multimarcados e IHC de fluorescência. IHQ teve como alvo proteínas citoplasmáticas e ligadas à membrana.

Combinando Hibridização In Situ por Fluorescência Multiplex com Imunohistoquímica Fluorescente em Seções Cerebrais de Camundongos Frescos Congelados ou Fixos

A capacidade de marcar permanentemente células-tronco e sua prole com um fluoróforo usando uma linhagem transgênica indutível que traça a linhagem do mouse permite a análise espacial e temporal de ativação, proliferação, migração e/ou diferenciação in vivo. O rastreamento de linhagem pode revelar novas informações sobre o comprometimento da linhagem, a resposta à intervenção e a multipotência.

Rastreamento de linhagem de células-tronco fluorescentes indutíveis no cérebro do rato adulto

A hibridização in situ de fluorescência iterativa assistida por expansão (EASI-FISH) é uma técnica robusta que combina microscopia de expansão com hibridização in situ de fluorescência (FISH) para detectar a expressão de vários genes em tecidos espessos. Este protocolo descreve os recentes avanços no método e sua adaptação para rotular o sistema nervoso central intacto da Drosophila.

Detecção multiplex da expressão gênica no cérebro intacto de Drosophila usando hibridização in situ de fluorescência iterativa assistida por expansão

Aprenda a detectar três genes simultaneamente em secções cerebrais de rato combinando hibridização in situ por dupla fluorescência com imunomarcação. Este método permite localizar a expressão génica em tipos celulares específicos sem necessidade de anticorpos para todos os alvos.

Combinando Duplo Fluorescência In Situ A hibridação com imunomarcação para a detecção da expressão de três genes em secções do cérebro do rato (Vídeo) | JoVE Journal

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