Name: Preparando a desenvolver tecido olfativo periférico para Molecular e análise imuno-histoquímica em Drosophila (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-06-13T14:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 18 s
Description: Aprenda a dissecar tecido olfativo periférico em desenvolvimento de Drosophila para análises moleculares. Este método permite estudar dinâmicas de expressão gênica por RT-PCR quantitativa e sequenciamento de RNA.

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Este estudo foi suportado por uma concessão do National Science Foundation para Pelin C. Volkan (DEB-1457690).

O seguinte protocolo é consistente com as diretrizes de ética estabelecidas pelo Comitê de ética de pesquisa Universidade Duke.
1. tecido preparação e encenação do desenvolvimento da Drosophila melanogaster Pupa
<ol><li>Em primeiro lugar, identifica quantas moscas serão necessárias para a dissecação. Por RT-PCR e RNAseq, colete 100-200 discos da antena e antenas de indivíduos que são necessários nas fases prepupal, de 8 h APF, 40 h/a APF e adulto. Por imuno-histoquímica, disse o indivíduo 10-20.</li>
	<li>Limpar todos os materiais, incluindo almofadas de dissecação e fórceps, usando lenços com 70% EtOH. Se o material dissecado é para ser usado para extração de RNA, limpar tudo com neutralizador de RNase e fazer todas as soluções usando uma nuclease-livre ou pyrocarbonate de dietilo (DEPC) água tratada. Nota: Este protocolo usa almofadas de dissecação do silicone em vez de vidro para as dissecções. Almofadas do silicone são simpáticos a fórceps ultra-fina e promovem dissecações rápidas e de alta qualidade.</li>
	<li>Recolha a pupa à h 0 palco APF/prepupal.<ol>
<li>Para garantir a encenação mais precisa, monitore as larvas em 30 min com intervalos de 1 h. Nota: Errante terceiro ínstar larvas numa garrafa moderadamente lotada serão provavelmente pupate dentro de algumas horas.</li>
		<li>Uma vez que as larvas ficam imobilizadas e estão rodeadas por um caso de pupa muito leve (quase branco) colorido, transferi-los para uma pequena 2 - em placa de Petri com papel de filtro úmido.</li>
		<li>Continue por 1-2 h, ocasionalmente monitoramento, identificação e transferência de pré-pupa. Nota: Como alternativa, limpar uma garrafa de todas as pupas e permitem que as larvas desenvolver para 2h. Todas as pupas coletadas após 2h será dentro de um intervalo APF 0 - 2 h.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Afastar-se imediatamente para o passo 3.1 para dissecar o disco da antena prepupal para a fase APF h 0. Se o prepupa precisa ser envelhecido, recolhê-los em um prato, cubra o prato e coloque uma película de parafina em torno das bordas para inibir a secura e coloque o prato de Petri a 25 ° C. Nota: As pupas podem agora ser envelhecidas a eclosão.</li>
	<li>Para pupas coletadas em um intervalo de 2 h, era a pré-pupa por 2 h a menos do que a idade desejada a fim de assegurar que as pupas não excedente.</li>
	<li>Use o fórceps ultra-fina (Dumont 55) como o tecido é muito pequeno e frágil.</li>
</ol>2. tecido preparação e encenação do desenvolvimento da Pupa de outras espécies de Drosophila
<ol><li>Para determinar o comprimento do desenvolvimento pupal em outras espécies de Drosophila , coloque as amostras à temperatura ideal, gravar as datas quando a pré-pupa é observadas, classificá-los dentro de um frasco de fresco e registrar o número de dias de prepupa a idade adulta.</li>
	<li>Recorde a proporção de tempo para desenvolvimento pupal para espécies não -melanogaster e melanogaster. Multiplica a relação do tempo do desenvolvimento pelo número de horas utilizadas para encenar melanogaster para obter o número de horas de idade das espécies não -melanogaster .</li>
</ol>3. dissecação do disco da antena Pupal de d. melanogaster
Nota: Todas as vezes de envelhecimento e protocolos de dissecação são descritos por melanogaster da drosófila. Para todas as outras espécies, uma modificação do protocolo de envelhecimento com base em pontos de tempo de desenvolvimento específicas serão necessária, como descrito acima.
<ol><li>Para dissecções do disco da antena pupal, coletar 50-100, 0 - 2 h ou pupas velho 6-8 h, usando uma espátula e coloque-os sobre uma almofada de dissecação.</li>
	<li>Pipete 150 µ l de solução de isolamento de RNA para um RNase livre microcentrífuga de 1,5 mL com uma pipeta de 200 µ l de tubo e colocar o tubo no gelo.</li>
	<li>Disse as pupas em 150-200 µ l de 1X PBS (tampão fosfato solução salina, livre de nuclease). Coloca várias gotículas de PBS (150-200 µ l por gotículas) na rampa de dissecação.</li>
	<li>Na rampa de dissecação, coloque o 0 - 2 h ou pupas de 6-8 h envelhecido (uma pupa por gota) para ser dissecado em um do 1x gotículas de PBS. Use o fórceps em uma mão para estabilizar o corpo.</li>
	<li>Para o 0 - 2 h envelhecido pupas, usando fórceps na outra mão, segure a parte mais anterior (os ganchos de boca) o prepupa e puxe-o para expor o cérebro e os discos imaginária anexados ao caso anterior pupal.</li>
	<li>Para as pupas APF de 8 h, primeiro suavemente Descole o pupa caso do bairro mais anterior da pupa, expondo a cabeça dentro do saco de membrana que envolve o corpo. Nota: O corpo, nesta fase, se parece com uma larva de degeneração.</li>
	<li>Remova a cabeça na articulação do pescoço. Nota: Isso garante que os discos da antena não serão perdidos, que nesta fase estão ligados principalmente a óptica lóbulos do cérebro.</li>
	<li>Transferi o tecido com o cérebro e os discos imaginária para outro 1x gotículas de PBS usando fórceps ou uma pipeta de 20 µ l.</li>
	<li>Identifica o olho-antena disco conectado ao cérebro em lóbulos óptica. Usando fórceps, desconecte-o olho-antena disco o cérebro e o caso de pupa. Transferi-lo para um novo 1x gotículas de PBS usando fórceps ou uma pipeta de 20 µ l. Nota: O disco olho-antena prepupal é um tecido liso. No entanto, pelas pupas de 8 h, os discos de olho são girados colocando os discos da antena, que se senta à frente do cérebro central.</li>
	<li>Usando a pinça, corte o tecido no local da conexão entre o olho e o disco da antena. Use uma pipeta de 20 µ l para transferir suavemente o tecido dissecado para o reagente de solução de isolamento de RNA. Minimize a quantidade de líquido transferido pipetando uma quantidade tão pequena quanto possível.</li>
	<li>Repita até que todas as pupas tem sido dissecadas.</li>
</ol>4. dissecação de d. melanogaster Mid-pupa e adulto antenas
Nota: Por 40 h APF, a maioria da metamorfose é completa, e as estruturas de adultas são evidentes, mas são ainda branco e anódino. Neste ponto do tempo do desenvolvimento, a antena adulta tomou sua forma final, no entanto, ainda é transparente e a maioria dos receptores de olfativo, com exceção de alguns, não ter começado a expressão.
<ol><li>Para dissecções antenais pupal, coletar 50-100 pré-pupa, conforme descrito na etapa 1 e idade-los para 40 h/a 25 ° C.</li>
	<li>Pipetar 150 µ l de solução de isolamento de RNA em uma RNase livre microcentrifuga de 1,5 mL tubo utilizando uma pipeta de 200 µ l e colocar o tubo no gelo.</li>
	<li>Na rampa de dissecação, coloque a pupa para ser dissecado em um do 1x gotículas de PBS. Use o fórceps em uma mão para estabilizar o corpo. Usando fórceps na outra mão, retire suavemente o caso pupal do bairro mais anterior da pupa, expondo a cabeça dentro do saco de membrana que envolve o corpo.</li>
	<li>Usando a pinça, cuidadosamente corte a cabeça do resto do corpo pupal, mantendo o corpo com um conjunto de pinças e arrancando a cabeça no colo da conjunta com outro conjunto de pinças. Transferi suavemente a cabeça outro 1x gotículas de PBS usando fórceps. Pipete para cima e para baixo para limpar o conteúdo da cabeça (o cérebro, etc.) para obter uma membrana clara que costumavam cercar a cabeça de Drosophila em desenvolvimento. Nota: A 40-50 h APF, as antenas estão ligadas à seção anterior-a maioria da membrana. Eles se tornarão aparentes para dissecação quando o conteúdo da cabeça é limpas com pipetagem.</li>
	<li>Usando fórceps, desconecte as antenas pupal da membrana. Desconecte o segmento 2nd da antena 3rd usando fórceps a fatia na articulação segmentar, como apenas o segmento de 3rd vai abrigar os neurônios olfactory do receptor.</li>
	<li>Use uma pipeta de 20 µ l para transferir suavemente o tecido dissecado para o reagente de solução de isolamento de RNA. Minimize a quantidade de líquido transferido pipetando uma quantidade tão pequena quanto possível. Repita até que todas as pupas tem sido dissecadas.</li>
	<li>Para adultas antenais dissecações, coletar aproximadamente 50 adultos e idade-los para uma pós-eclosão semana. Nota: A expressão de genes de receptores olfativos e outros genes pico uma semana após a eclosão. Os adultos são envelhecidos por uma semana para garantir biologicamente relevantes genes com transcrições de baixa abundância a subir acima do limite de deteção.</li>
	<li>Para extração de RNA, disse moscas enquanto eles ainda estão vivos em uma almofada de2 CO. Trate o CO2 pad com inibidores de RNase. Para a imagem latente confocal, dissecar as moscas num bloco de dissecação em 1X PBS ou PBS + 0,2% Triton.</li>
	<li>Primeiro, coloca os adultos para dormir na plataforma de estação de CO2 , no âmbito de dissecação. No pad Estação CO2 , usando a pinça na mão para estabilizar o corpo, use fórceps na outra mão para gentilmente puxe/pitada para fora o terceiro segmento da antena do segundo.</li>
	<li>Transferi as antenas para uma solução de isolamento de RNA, usando a pinça para colocar as antenas diretamente no líquido. Repita até que todos os adultos têm sido dissecados. Nota: Certifique-se que as antenas estão submersos em solução de isolamento de RNA. A antena pode ficar preso na lateral do tubo. Isso fará com que uma maior degradação do RNA, reduzindo a quantidade e a qualidade do RNA.</li>
	<li>Diretamente, prossiga para a extração do RNA ou colocar o tubo a-80 ° C para armazenamento a longo prazo.</li>
</ol>5. RNA isolamento dos tecidos dissecados
<ol><li>Remova todas as amostras do armazenamento-80 ° C e descongelá-los no gelo.</li>
	<li>Brevemente gire (5-6 s, ~ 6.000 x g), cada amostra para coletar o material na parte inferior do tubo.</li>
	<li>Moer cada amostra usando um pilão de plástico esterilizado e um motor elétrico para 10 s no gelo.</li>
	<li>Repita os passos de 5,2 e 5,3 4.</li>
	<li>Realize a extração do RNA usando kits comercialmente disponíveis e seguindo o protocolo do fabricante para um rendimento ideal.</li>
	<li>Execute qRT-PCR utilizando primers específicos contra os genes de interesse e seguindo os protocolos do fabricante e reagentes disponíveis comercialmente.<ol>
<li>Realizar todas as reações de PCR usando as seguintes condições: desnaturação de 95 ° C por 10 min, seguido de 40 ciclos de 95 ° C por 15 s, 55 ° C por 30 s e 60 ° C por 30 s. Nota: Pares de Primer para mergulho e dpr genes estão listados na tabela 1, e primers para genes olfactory do receptor são listados no CE Hueston et al 8.</li>
	</ol>
</li>
</ol>6. fixação dos discos antenais Pupal e antenas para imuno-histoquímica
Nota: Corrigi os tecidos em lotes de 10 a 20 indivíduos para assegurar que os tecidos são fixos para a mesma quantidade de tempo. Minimize a quantidade de tempo que as amostras fiquem em PBT (PBS com detergente) antes de transferi-las para um fixador para maximizar a integridade dos tecidos.
<ol><li>Recolher os discos antenais dissecados ou pupal antenas em um tubo PCR de 200 µ l contendo 200 µ l de 0,2% PBT no gelo para manter a integridade do tecido e para evitar a amostra da colagem na parede de 200 µ l do PCR tubos que levará a uma fixação incompleta. Nota: Antenas Pupal e discos da antena podem ser difícil de ver como eles são completamente translúcidos. É aconselhável usar um escopo de dissecação para todas as etapas de lavagem para evitar qualquer perda de tecido. Alternativamente, placas de 96 poços Terasaki podem ser usado para a fixação e coloração para controlar melhor o tecido.</li>
	<li>Corrigir o disco da antena dissecado e amostras da antena de pupas em aproximadamente 200 µ l de 4% PFA (paraformaldeído) por 30 min à temperatura ambiente. Por isto e subsequentes etapas, manter os tubos com as amostras em um nutator para misturar corretamente as amostras na solução. Progresso para a etapa de 6,7.</li>
	<li>Para a antena de adulta, dissecar a cabeça primeiro e corrigi-lo em aproximadamente 200 µ l de 4% PFA (paraformaldeído) por 1h à temperatura ambiente.</li>
	<li>Lavar 3x com 200 µ l de 0,2% PBT por 10 min cada. Mantenha as amostras no nutator durante a incubação.</li>
	<li>Volte para o microscópio de dissecação para dissecção mais fino do segundo segmento da antena das cabeças fixas. Usando o fórceps para estabilizar a cabeça, suavemente puxe/pitada para fora o terceiro segmento da antena do segundo.</li>
	<li>Transferir os segmentos antenais terceiros dissecados em aproximadamente 200 µ l de 4% PFA (paraformaldeído) e corrigi-los por 30 min à temperatura ambiente.</li>
	<li>Lavar 3x com 200 µ l de 0,2% PBT por 10 min cada. Mantenha as amostras no nutator durante a incubação.</li>
	<li>Armazenar as amostras em 4 ° C ou continuar diretamente com toda montagem immunohistochemistry. Nota: A eficiência de coloração pode mudar quando o anticorpo está sendo usado. Este método deve ser apropriados para menos etiquetas de proteína abundante ou mais fracos de anticorpos. No entanto, às vezes, ele pode requerer uma otimização do protocolo (a identidade ou quantidade do fixador ou o tempo de fixação).</li>
</ol>

<ol><li>Barish, S., Volkan, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+olfactory+receptor+neuron+specification+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Wiley+Interdisciplinary+Reviews.+Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of olfactory receptor neuron specification in Drosophila.</a> Wiley Interdisciplinary Reviews. Developmental Biology. 4 (6), 609-621 (2015).</li>
<li>Pan, J. W., Volkan, P. C. <a target="_blank" href="https://www.omicsonline.org/open-access/mechanisms-of-development-and-evolution-of-the-insect-olfactory-system-2168-9296.1000130.php?aid=21773">Mechanisms of development and evolution of the insect olfactory system.</a> Cell and Developmental Biology. 2, 130(2013).</li>
<li>Ramdya, P., Benton, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evolving+olfactory+systems+on+the+fly%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Genetics%22%5BJournal%5D)">Evolving olfactory systems on the fly.</a> Trends in Genetics. 26 (7), 307-316 (2010).</li>
<li>Bellen, H. J., Tong, C., Tsuda, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((100+years+of+Drosophila+research+and+its+impact+on+vertebrate+neuroscience%3A+a+history+lesson+for+the+future%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">100 years of Drosophila research and its impact on vertebrate neuroscience: a history lesson for the future.</a> Nature Reviews Neuroscience. 11 (7), 514-522 (2010).</li>
<li>Knecht, Z. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distinct+combinations+of+variant+ionotropic+glutamate+receptors+mediate+thermosensation+and+hygrosensation+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22eLife%22%5BJournal%5D)">Distinct combinations of variant ionotropic glutamate receptors mediate thermosensation and hygrosensation in Drosophila.</a> eLife. 5, 44-60 (2016).</li>
<li>Enjin, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Humidity+sensing+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Biology%22%5BJournal%5D)">Humidity sensing in Drosophila.</a> Current Biology. 26 (10), 1352-1358 (2016).</li>
<li>Li, Q., Barish, S., Okuwa, S., Volkan, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Examination+of+endogenous+rotund+expression+and+function+in+developing+Drosophila.+olfactory+system+using+CRISPR-Cas9-mediated+protein+tagging%5BTitle%5D)+AND+%22G3%3A+Genes%7CGenomes%7CGenetics%22%5BJournal%5D)">Examination of endogenous rotund expression and function in developing Drosophila. olfactory system using CRISPR-Cas9-mediated protein tagging.</a> G3: Genes|Genomes|Genetics. 5 (12), 2809-2816 (2015).</li>
<li>Hueston, C. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chromatin+modulatory+proteins+and+olfactory+receptor+signaling+in+the+refinement+and+maintenance+of+fruitless+expression+in+olfactory+receptor+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Biology%22%5BJournal%5D)">Chromatin modulatory proteins and olfactory receptor signaling in the refinement and maintenance of fruitless expression in olfactory receptor neurons.</a> PLoS Biology. 14 (4), 1002443(2016).</li>
<li>Li, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combinatorial+rules+of+precursor+specification+underlying+olfactory+neuron+diversity%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Biology%22%5BJournal%5D)">Combinatorial rules of precursor specification underlying olfactory neuron diversity.</a> Current Biology. 23 (24), 2481-2490 (2013).</li>
<li>Li, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+functionally+conserved+gene+regulatory+network+module+governing+olfactory+neuron+diversity%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Genetics%22%5BJournal%5D)">A functionally conserved gene regulatory network module governing olfactory neuron diversity.</a> PLoS Genetics. 12 (1), 1005780(2016).</li>
<li>Pan, J. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patterns+of+transcriptional+parallelism+and+variation+in+the+developing+olfactory+system+of+Drosophila+species%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Patterns of transcriptional parallelism and variation in the developing olfactory system of Drosophila species.</a> Scientific Reports. 7 (1), 8804(2017).</li>
<li>Pan, J. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+analysis+of+behavioral+and+transcriptional+variation+underlying+CO2+sensory+neuron+function+and+development+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Fly%22%5BJournal%5D)">Comparative analysis of behavioral and transcriptional variation underlying CO2 sensory neuron function and development in Drosophila.</a> Fly. 11 (4), 239-252 (2017).</li>
<li>Stern, D. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+and+transgenic+reagents+for+Drosophila+simulans%2C+D.+mauritiana%2C+D.+yakuba%2C+D.+santomea%2C+and+D.+virilis%5BTitle%5D)+AND+%22G3%3A+Genes%7CGenomes%7CGenetics%22%5BJournal%5D)">Genetic and transgenic reagents for Drosophila simulans, D. mauritiana, D. yakuba, D. santomea, and D. virilis.</a> G3: Genes|Genomes|Genetics. 7 (4), 1339-1347 (2017).</li>
</ol>

Os autores não têm nada para divulgar.

Este protocolo é um recurso útil para laboratórios interessados em identificar os programas genéticos e transcriptional operando no desenvolvimento de tecido olfativo de Drosophila , bem como uma análise comparativa destes programas através de Drosophila espécies. É especialmente útil se sistemas-nível transcricionais perfis de diferentes estádios de desenvolvimento são necessários como um primer para futuros estudos. O protocolo descrito aqui demonstra como estágio e isolar a desenvolver o tecido olfat...

O sistema olfativo de Drosophila é um sistema amplamente utilizado em neurobiologia do desenvolvimento, neurociência de sistemas, bem como neurofisiologia, estudos de comportamento e evolução comportamental1,2,3, 4. Drosófila olfativos tecidos casa os neurônios olfactory do receptor (ORNs) que detectam sinais químicos voláteis além de neurônios sensoriais hidro - e thermo1,5,6. O objetivo geral do presente manuscrito é demonstrar como estágio e dissecar desenvolvimento pupal e adulto tecido olfativo em espécies de Drosophila . A justificativa para esta técnica é para gerar amostras de diferentes estágios pupal para análises moleculares e no desenvolvimento do sistema olfativo periférico, tais como RNAseq e RT-PCR quantitativo, além na vivo tecido técnicas de rotulagem . Esta técnica pode ser especialmente útil para identificar a dinâmica do transcriptional perfis no sistema olfativo em desenvolvimento adulto da espécie non -melanogaster da drosófila , que não dispõem de todos os reagentes transgênicos para o tipo de célula específico rotulagem e análises. Neste manuscrito, demonstramos como dissecar discos da antena e antenas de espécies de Drosophila pupa e adultas. Primeiro, mostramos como identificar Drosophila 0 h de formação do casulo (APF, pupas brancas ou pré-pupa) para preparo do desenvolvimento e envelhecimento espécie-específicos. Em seguida, mostramos como dissecar os discos da antena e o terceiro segmento da antena; especificamente, como dissociar o disco do olho e o segundo segmento da antena para a pureza de tecido necessária para RNAseq ou RT-PCR. Os estágios no d. melanogaster descrito neste protocolo aproximadamente correspondem ao disco da antena previamente padronizado (pré-pupa), a seleção de precursores da antena de disco (8 h APF), o início da diferenciação terminal para ORNs (40 h/a APF), e antena de adulta. Finalmente, damos exemplos para um RT-PCR quantitativo de antenas adultas isoladas usando o método e por imuno-histoquímica na vivo . Esse método pode ser usado para gerar amostras para uma análise de DNA/RNA e imuno-histoquímica no desenvolvimento de tecidos periféricos olfativos, de diferentes espécies de Drosophila .

<table><tbody><tr><td>10X Phosphate-buffered Saline</td><td>Gibco</td><td>70011-044</td><td>Diluir a 1X em água livre de RNase</td></tr><tr><td>CO2 tank</td><td>Air Gas</td><td>CD R200</td><td></td></tr><tr><td>Dois fórceps afiados (Dumont #55)</td><td>Fine Science Tools</td><td>11255-20</td><td></td></tr><tr><td>Trizol</td><td>Invitrogen</td><td>15596-026</td><td>Soluções de isolamento de RNA Microscópio</td></tr> <tr><td></td><td></td><td>de dissecação</td><td></td></tr><tr><td>Balde pequeno com</td> micropipetas e pontas <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td>de gelo<td>P20 e P200</td></tr><tr>Tubos <td></td><td></td> de<td>microfuga de 1,7 mL</td><td>Compre nuclease grátis para obter melhores resultados</td></tr><tr><td>Tubos de PCR de 0,2 mL</td> Pó <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>de paraformaldeído</td><td>Polysciences</td><td>380</td><td></td></tr><tr><td>10% Triton X-100</td><td>Teknova</td><td>T1105</td><td>Diluir a 0,2% v/v em placas</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td>de<td>Petri</td></tr> 1X PBS 2" <tr><td>Papel de filtro de 55mm</td><td>Whatman</td><td>1001-055</td><td>Molhe com água e coloque em uma placa de Petri para manter as pupas úmidas</td></tr><tr><td>Incubadora</td><td></td><td></td><td></td>de 25 C</tr><tr><td>deionizado H2O</td><td></td><td></td><td>Compre nuclease livre ou trate com DEPC</td></tr><tr><td>Sylgard 184 Kit de Elastômero de Silicone</td><td>Dow Corning</td><td></td><td>para ser usado para fazer almofadas de dissecação de tampas de placas Terizaki.</td></tr><tr><td>MicroWell Mini Bandejas com tampas</td><td>Nunc</td><td>438733</td><td>Tampas podem ser usadas para fazer almofadas de dissecação de silicone</td></tr><tr><td>Anticorpo anti-GFP de coelho</td><td>MBL corpor internacional</td><td>PM005</td><td>anticorpo primário</td></tr><tr><td>de camundongo anti RAT CD2</td><td>AbD seroTec</td><td>MCA154RHDL</td><td>anticorpo primário</td></tr><tr><td>ADL195 (anti lamina, camundongo)</td> <td>Dev estuda hydoma ban</td><td>ADL195-s</td><td>anticorpo primário</td></tr><tr><td>Alexa Fluor&reg; 488 cabra anti-coelho IgG (H + L)</td> <td>invitrogen</td><td>A11008</td><td>Anticorpo secundário</td></tr><tr><td>Cy3 Cabra Anti-Mouse IgG</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>115-166-003</td><td>Anticorpo secundário</td></tr><tr><td>Triton X-100, detergente de grau proteico, solução a 10%,</td><td>detergente de 648463</td><td></td><td>CALBIOCHEM</td> filtrado estéril</tr><tr><td>Rotador de laboratório</td><td>Thermo scientific</td><td></td><td>Rotator</td></tr><tr><td>Nuclease Água Livre</td><td>Growcells.com</td><td>NUPW-0125</td><td>Limpadores</td></tr><tr><td>de Tecido de Leve</td> para Água <td>VWR</td><td>82003-822</td><td>Para suprimentos de limpeza e dissecação</td></tr><tr><td>Superscript II</td><td>invitrogen</td><td>18064014</td><td>Transcriptase Reversa&nbsp;</td></tr><tr><td>QIAshredder (50)</td><td>Extração de RNA</td><td>QIAGEN</td><td>79654</td></tr><tr><td>Oligo(dT)12-18 Primer</td><td>RT</td><td>life technologies</td><td>18418012</td></tr><tr><td>RNeasy MinElute Cleanup Kit (50)</td><td>Extração de RNA</td><td>QIAGEN</td><td>74204</td></tr><tr><td>FASTSTART UNIV SG MASTER (5 ML)(500 RXN)</td><td>qPCR</td><td>Roche</td><td>04913850001</td></tr><tr><td>FASTSTART ESSENTIAL GREEN DNA MASTER&nbsp;</td><td>qPCR</td><td>Roche</td><td>06402712001</td></tr><tr><td>LIGHTCYCLER 480 - PLACA MULTIPOÇOS 96</td><td>qPCR</td><td>Roche</td><td>04729692001</td></tr><tr><td>NEBPróximo PCR 2X Master Mix de alta fidelidade</td><td>qPCR</td><td>NEB</td><td>M0541S</td></tr></tbody></table>

preparando a desenvolver tecido olfativo periférico para molecular e análise imuno-histoquímica em drosophila

Preparing Developing Peripheral Olfactory Tissue for Molecular and Immunohistochemical Analysis in Drosophila

O sistema olfativo de Drosophila é um sistema amplamente utilizado em neurobiologia do desenvolvimento, neurociência de sistemas, bem como neurofisiologia, comportamento e evolução comportamental. Drosófila olfativos tecidos casa os neurônios olfactory do receptor (ORNs) que detectam sugestões químicas voláteis, além dos neurônios-hidro e thermo-sensorial. Neste protocolo, descrevemos a dissecação de desenvolver tecido olfativo periférico da espécie Drosophila adulto. Primeiro, descrevemos como fase e idade larvas de Drosophila , seguidas pela dissecação do disco da antena de primeiros estágios pupal, seguidos pela dissecação de antenas de adultos e estágios meados-pupal. Mostramos também métodos onde as preparações podem ser utilizadas em técnicas moleculares, tais como a extração de RNA para qRT-PCR, RNAseq ou imuno-histoquímica. Esses métodos também podem ser aplicados a outras espécies de Drosophila , após desenvolvimento pupal espécie-específicos são determinados e respectivas fases são calculados para envelhecimento adequado.

O tecido olfativo em desenvolvimento dissecado pode ser usado para a extração de RNA, seguida por RT-PCR para avaliar a expressão do gene ou pode ser tomado através de protocolos de imuno-histoquímica para determinar seu padrão de expressão e a sub celular localização de genes de interesse. Nesta seção, apresentamos resultados representativos de qualquer protocolo. A Figura 1 é o representante RT-PCR quantitativo mostrando a transcrição dos genes de olfactory...

Aqui, apresentamos um protocolo para estágio e dissecar a desenvolver o tecido olfativo de espécies de Drosophila . O tecido dissecado mais tarde pode ser usado para análises moleculares, como quantitativa de RT-PCR (Reverse transcrição-Polymerase Chain Reaction) ou RNA sequenciamento (RNAseq), bem como na vivo de análise como a imuno-histoquímica ou em situ hibridização.

Preparando a desenvolver tecido olfativo periférico para Molecular e análise imuno-histoquímica em Drosophila

The olfactory system of Drosophila is a widely used system in developmental neurobiology, systems neuroscience, as well as neurophysiology, behavior, and ...

O objetivo geral de estadiar e dissecar tecidos olfativos periféricos da pupila e do adulto em desenvolvimento em espécies de Drosophila é gerar amostras para análises moleculares e de desenvolvimento dos tecidos olfatórios periféricos. Este método pode ajudar a responder a questões-chave no campo do desenvolvimento e evolução do sistema olfativo, como a expressão, dinâmica, níveis e padrões de genes específicos nos tecidos olfatórios periféricos em desenvolvimento. Através deste método, podemos obter insights sobre o desenvolvimento do sistema olfativo periférico em espécies de Drosophila.Também pode ser aplicado a outros sistemas sensoriais, como o paladar periférico e os sistemas visuais. Para um experimento de sequenciamento de RNA, planeje coletar entre 100 a 200 discos antenais ou antenas para quatro estágios diferentes de desenvolvimento. Para imuno-histoquímica, planeje dissecar 10 a 20 moscas.Limpe todos os materiais envolvidos na dissecação usando etanol 70%. Em seguida, limpe ainda mais os materiais com neutralizadores de RNase. E faça todas as soluções usando água sem nuclease ou tratada com DEPC.Para coletar pupas, monitore as larvas em intervalos de 30 minutos. E cole

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Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Biologia do Desenvolvimento

Esta técnica expõe a Drosophila neuromusculature embrionárias para imuno-histoquímica ou gravação eletrofisiológico. É útil para o estudo de eventos no início do desenvolvimento neuromuscular ou a realização de eletrofisiologia em mutantes que não podem eclodir.

Colheita e Preparação Drosophila Os embriões para Gravação eletrofisiológicos e outros procedimentos

Nós descrevemos o procedimento para preparar...

Visualização do Sistema Nervoso embrionárias no Whole-mount Drosophila Os embriões

Preparação de adultos Drosophila Olhos de Seccionamento Fino e análise microscópica

A arborização dendrítica de neurônios sensoriais...

Análise morfológica de Drosophila Larval sensorial periférica Dendrites Neuron e axônios Usando Mosaicos Genéticos

Neste vídeo, uma mosca Drosophila viva é montada em um tubo para estudos eletrofisiológicos. Os eletrodos são posicionados na base do sensillum para registrar respostas neuronais específicas aos feromônios com os neurônios receptores olfativos da mosca.

Registros eletrofisiológicos de Drosophila Sensilla em resposta a odores voláteis

Aqui descrevemos o processo de imunomarcação de montagem total de antenas de Drosophila, o que nos permite entender melhor os mecanismos moleculares envolvidos na diversificação de neurônios receptores olfativos (ORN)s.

Monte todo imunomarcação de Neurônios Receptores Olfatórios no<em&gt; Drosophila</em&gt; Antena

O objetivo geral deste protocolo é demonstrar como apresentar odorantes de baixa volatilidade para a gravação de sensibilidade única a partir de neurônios receptores olfativos de Drosophila que respondem a feromonas cuticulares de cadeia longa.

Gravação eletrofisiológica de<em&gt; Drosophila</em&gt; Sensilla Tricoide em resposta aos odorantes de baixa volatilidade

Este protocolo descreve a dissecção e imunocoloração de adultos Drosophila melanogaster tecidos do cérebro. Especificamente, este protocolo destaca o uso da Drosophila cogumelo corpo e fotoreceptor neurônios como subconjuntos neuronal de exemplo que podem ser usados com precisão para descobrir princípios gerais subjacentes a muitos aspectos do desenvolvimento neuronal.

Dissecção e imunofluorescência coloração de cogumelo corpo e fotoreceptor neurônios em cérebros adultos Drosophila melanogaster

Este trabalho apresenta um método cirúrgico para dissecando Drosophila pupal retina juntamente com protocolos para o processamento de tecido para extração de RNA, análise ocidental e imuno-histoquímica.

Dissecação da Retina Pupal drosófila para imuno-histoquímica, análise ocidental e isolamento de RNA

Este protocolo descreve o procedimento de dissecção, condição cultural e imagem ao vivo de um sistema de explant antena-cérebro para o estudo do conjunto do circuito olfativo.

Um sistema de explant para estudos de imagem de lapso de tempo da montagem do circuito olfativo em Drosophila

Descrevemos aqui métodos para induzir e analisar a remodelação olfativa dependente da experiência dos glomérulos sinápticos do lobo antenal no cérebro juvenil de Drosophila .

Remodelação dependente da experiência da conectividade sináptica do neurônio sensorial olfativo do cérebro juvenil em um período crítico no início da vida

Aprenda a dissecar tecido olfativo periférico em desenvolvimento de Drosophila para análises moleculares. Este método permite estudar dinâmicas de expressão gênica por RT-PCR quantitativa e sequenciamento de RNA.

Preparando a desenvolver tecido olfativo periférico para Molecular e análise imuno-histoquímica em Drosophila

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