11 de abril de 2022
O protocolo descreve um projeto de chip microfluídico simples e metodologia de microfabricação usada para cultivar C. elegans na presença de um suprimento contínuo de alimentos por até 36 h. O dispositivo de crescimento e imagem também permite imagens intermitentes de alta resolução a longo prazo de processos celulares e subcelulares durante o desenvolvimento por vários dias.
A principal vantagem desta técnica é que o animal pode crescer livremente dentro do dispositivo e pode ser preso para imagens de alta resolução. O dispositivo pode ser reutilizado várias vezes. Ao fabricar o dispositivo, a limpeza é o fator mais importante para poder fabricar dispositivos livres de poeira para evitar vazamentos durante as operações do dispositivo.
Para começar o padrão de projeto um para a camada de fluxo e o padrão dois para a camada de controle usando formas retangulares em um software de processamento de texto e imprimir as máscaras fotográficas com a ajuda de um plotter a laser com um tamanho mínimo de oito micrômetros em filme à base de poliéster. Corte as bolachas de silício em pedaços quadrados de 2,5 centímetros de altura e largura. Limpe-os com hidróxido de potássio a 20% por um minuto e enxágue as bolachas em água deionizada.
Use uma bolacha para o fluxo e a outra para a camada de controle. Seque as peças com 14 P-S-I de gás nitrogênio comprimido seguido de desidratação em uma placa quente a 120 graus Celsius por quatro horas. Após o resfriamento, pegue uma peça de silício, coloque-a no mandril de um codificador de rotação e ligue o vácuo para manter a bolacha no lugar.
Coloque aproximadamente 20 microlitros de hexametildisilano na peça de silício e cubra-a usando o codificador de spin a 500 R-P-M por cinco segundos, seguido por 3000 R-P-M por 30 segundos. Para obter uma espessura fotorresistente uniforme de aproximadamente 40 micrômetros específica para a camada de fluxo, cubra a bolacha de silício com aproximadamente 1,5 mililitros de fotorresistência negativa usando um codificador de spin a 500 R-P-M por cinco segundos, seguido por 2000 R-P-M por 30 segundos. Repetir o revestimento da peça de silício com hexametildisilano e fotorresistência negativa para a segunda bolacha para obter uma espessura fotorresistente uniforme de aproximadamente 40 micrômetros específica para a camada de controle.
Alternativamente, para aumentar a espessura da camada de fluxo para aproximadamente 80 micrômetros para animais mais velhos, cubra bolachas de silício com aproximadamente 1,5 mililitros de fotorresistência negativa dois, usando o codificador de spin a 500 R-P-M por cinco segundos, seguido por 2000 R-P-M por 30 segundos. Asse os pedaços de silicone revestidos anteriormente fotorresistentes em uma placa quente a 65 graus Celsius por um minuto, seguido por 95 graus Celsius por 10 minutos. Após o resfriamento, coloque peças de silicone cozidas macias no estágio de exposição do iluminador U-V com a superfície revestida fotorresistente voltada para a lâmpada U-V.
Exponha as duas peças separadamente ao U-V por 15 segundos usando uma lâmpada de 200 watts através de uma máscara fotográfica com padrões um e dois para obter camadas de fluxo e controle, respectivamente. Asse os dois pedaços de silicone expostos, conforme descrito anteriormente, com camadas revestidas voltadas para cima. Após o resfriamento das peças, desenvolva os padrões mergulhando as peças de silicone na solução reveladora fotorresistente por 20 minutos.
Uma vez que o padrão esteja visível, lave as peças com álcool isopropílico puro e seque suavemente usando gás nitrogênio. Mantenha as peças de silicone em um exsicador com a superfície revestida voltada para cima. Exponha as peças a vapores de silano derramando 50 microlitros de T-C-P-F-O-S puro em uma lâmina de vidro.
Coloque a lâmina dentro de um exsicador e incube por duas horas. Faça P-D-M-S em um copo de plástico, misturando a base do elastômero com o agente de cura e mexa constantemente por três minutos. Degaseifique a mistura P-D-M-S em um exsicador por 30 minutos para remover todas as bolhas de ar.
Coloque as bolachas de silício da camada de controle em uma placa de Petri e despeje uma camada de mistura P-D-M-S de cinco milímetros de espessura sobre as peças de silício. Após o processo de derramamento P-D-M-S, repita a desgaseificação da mistura P-D-M-S. Coloque a bolacha de silício com a camada de fluxo voltada para o caminhão rotador aplicando pressão de vácuo de 200 a 500 militorres.
Despeje aproximadamente um mililitro de P-D-M-S sobre a bolacha de silício. Codifique-o usando um revestidor de spin para obter uma camada de aproximadamente 80 micrômetros de espessura. Asse as duas bolachas de silício com o P-D-M-S revestido de spin e despeje as camadas P-D-M-S a 50 graus Celsius em um forno de convecção de ar quente por seis horas.
Depois de esfriar, as peças cortam a camada P-D-M-S de cinco milímetros de espessura da peça de silício ao redor da camada de controle usando uma lâmina afiada e retiram-na do substrato de silício. Perfure dois orifícios de aproximadamente um milímetro de diâmetro usando um perfurador Harris no reservatório do bloco P-D-M-S para conectar as entradas do canal de imobilização e do canal de isolamento às linhas de gás para deflexões de membrana P-D-M-S. Coloque a peça de silício com a camada P-D-M-S revestida por rotação no padrão um com a superfície revestida de P-D-M-S voltada para cima em uma bandeja de plástico.
Mantenha o bloco P-D-M-S perfurado com o padrão dois na bandeja com o lado moldado voltado para cima. Mantenha a bandeja de plástico dentro de um limpador de plasma e exponha as duas superfícies P-D-M-S a 18 watts de plasma a ar por dois minutos aplicando baixo vácuo. Retire os dois blocos tratados com plasma e ligue suavemente os blocos pressionando as superfícies tratadas com plasma dos padrões um e dois juntos.
Asse os padrões colados a 50 graus Celsius por duas horas em um forno de convecção de ar quente. Depois de tirar o dispositivo colado do forno, corte-o da bolacha de silício com o padrão um e o padrão dois e faça furos nos reservatórios de entrada e saída da camada de fluxo usando o perfurador Harris. Coloque o bloco P-D-M-S colado com a camada de fluxo voltada para cima em uma bandeja de plástico e mantenha um vidro de cobertura limpo na mesma bandeja.
Exponha os blocos no vidro da tampa a 18 watts de plasma de ar por dois minutos. Ajuste a pressão de vácuo para ver uma câmara violeta. Coloque o bloco P-D-M-S exposto a plasma no vidro da tampa e asse a estrutura colada em um forno a 50 graus Celsius por duas horas.
Armazene o dispositivo em uma câmara limpa para qualquer experimento futuro. Pegue o dispositivo, coloque-o em um microscópio estéreo e prenda as tubulações. Conecte um tubo microflex a uma linha de gás nitrogênio comprimido e a um conector de três vias na outra extremidade.
Conecte os tubos um e dois dos conectores de três vias ao purgador em membranas isolantes, respectivamente. Conecte dois tubos microflex às duas portas de saída da torneira de três vias. Conecte a outra extremidade dos dois tubos a uma agulha de calibre 18 de oito milímetros de comprimento.
Preencha a camada de fluxo com buffer M-9 usando uma micropipeta através da porta de entrada. Encha ambos os tubos com água deionizada através da extremidade conectada à agulha. Insira as duas agulhas nos orifícios perfurados que ligam a membrana de isolamento e aprisionamento.
Abra o regulador de gás nitrogênio a 14 P-S-I e gire a válvula de três vias do tubo um para empurrar a água para o dispositivo através dos canais microfluídicos nas camadas de controle, ou seja, as membranas de armadilha e isolamento. Libere a pressão usando a torneira de três vias, uma vez que os canais estejam cheios de água e preparados. Remova as bolhas fluindo mídia adicional através do canal de fluxo.
A figura mostra imagens de P-S-3-2-3-9, animal crescendo dentro do chip microfluídico e imobilizado a cada oito a 10 horas para capturar imagens de fluorescência. A variação no padrão de expressão representa um exemplo de regulação genética temporal em que o mesmo gene é expresso em diferentes células em diferentes estágios de desenvolvimento. A imagem do genótipo W-D-I-S-5-1 individual de caenorhabditis elegans mostra arquitetura dendrítica ramificada semelhante a menorá em cada neurônio P-V-D, compreendendo processos primários, terciários secundários e quaternários nos estágios de desenvolvimento L-2, L-2 tardio, L-3 e L-4, respectivamente.
A figura aqui compara o desenvolvimento de P-V-D e os animais cultivados por dispositivos, e aqueles cultivados em placas N-G-M. Os números de S-P e Q-P em diferentes estágios do desenvolvimento do verme aumentaram com a idade. Caenorhabditis elegans foi tratada com uma gota de três levamisol milimolares para causar paralisia suficiente necessária para imagens de alta resolução.
Os valores de S-P não foram significativamente diferentes quando medidos a partir de animais em estádios semelhantes cultivados em placas N-G-M e fotografados usando três levamisol milimolar em uma lâmina de ágar. Além disso, a distância entre os dois corpos celulares P-V-C, um presente na cauda e o segundo presente perto da vulva, aumenta à medida que se afastam tanto em animais cultivados no dispositivo quanto naqueles cultivados em placas N-G-M. A figura representa a imagem de alta resolução dos neurônios receptores de toque de animais que crescem dentro do dispositivo microfluídico.
A montagem representa todo o processo neuronal P-L-M-R em pontos de tempo sucessivos, destacando as mitocôndrias e o processo neuronal. O gráfico representa o comprimento total do processo neuronal, que foi observado para aumentar com uma inclinação de 10,4 micrômetros por hora. O dispositivo microfabricado usa uma fina membrana P-D-M-S desviada na presença de gás nitrogênio de alta pressão para imobilizar e manter os C-elegans no lugar para imagens de alta resolução.
Este procedimento pode permitir estudos longitudinais de processos celulares e subcelulares em C-elegans que necessitam de observações intermitentes durante um longo período de tempo.
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Este protocolo descreve um design de chip microfluídico e método de fabricação para o cultivo de C. elegans com suprimento contínuo de alimento por até 36 horas. Também facilita a imagem de alta resolução de processos celulares durante o desenvolvimento em longo prazo.
This microfluidic platform enables longitudinal imaging of C. elegans without anesthetic interference, supporting mechanistic de-risking in target validation and phenotypic screening workflows. By allowing repeated high-resolution imaging of the same animal over developmental timepoints, it improves predictive confidence in early discovery assays. The system provides a disease-relevant system for studying neuronal growth, vulval development, and dendritic arborization with translational biomarker alignment potential.
The method integrates into the discovery continuum from hypothesis testing through lead identification by enabling repeated imaging sessions that support mechanistic de-risking and predictive confidence in target validation.