May 5th, 2023
Um procedimento para estudar a dinâmica do metabolismo do DNA mitocondrial (mtDNA) em células usando um formato de placa multi-poço e imagens automatizadas de imunofluorescência para detectar e quantificar a síntese e distribuição do mtDNA é descrito. Isso pode ser usado para investigar os efeitos de vários inibidores, estresses celulares e silenciamento gênico no metabolismo do mtDNA.
O protocolo visa identificar proteínas com disfunções que levam a alterações no número de moléculas de DNA mitocondrial. Esta pesquisa também pode revelar os fatores que envolvem a distribuição do DNA mitocondrial dentro da mitocôndria. Os mecanismos de replicação e manutenção mitocondrial ainda não são totalmente compreendidos.
Muito menos se sabe sobre a regulação da distribuição de genomas mitocondriais dentro de organoides e as proteínas envolvidas nele. Como resultado, identificar e caracterizar alguns novos jogadores será de grande importância. A principal vantagem da técnica é seu protocolo de alto rendimento e alto conteúdo.
Podemos testar simultaneamente muitas condições experimentais e medir vários parâmetros durante um único experimento. Em estudos genômicos amplos, o protocolo proposto fornece uma oportunidade para delinear uma imagem global de como a informação genética codificada nuclear regula sua contraparte mitocondrial. Além disso, tem o potencial de identificar proteínas cuja disfunção causa estresse no DNA mitocondrial e ativa a via de resposta ao interferon.
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Este artigo descreve um protocolo de alto rendimento para estudar o metabolismo do DNA mitocondrial (mtDNA) em células. O método utiliza imagens de imunofluorescência automatizadas para detectar e quantificar a síntese e distribuição do mtDNA, permitindo investigações sobre os efeitos de inibidores, estresses celulares e silenciamento gênico.
High-throughput image-based quantification of mitochondrial DNA (mtDNA) synthesis and distribution enables systematic interrogation of mitochondrial genome maintenance under diverse perturbations. This capability is critical for de-risking early discovery programs targeting mitochondrial function and for clarifying the mechanistic impact of gene silencing or compound treatment on cellular bioenergetics. The approach supports predictive confidence in target validation and informs risk-adjusted portfolio decisions in disease-relevant contexts.
This method integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling quantitative, high-throughput assessment of mitochondrial genome maintenance in cell-based models.