RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Возьмите многолуночную пластину с фильтрами в основании.
Добавьте тестовый образец, содержащий разные цитокины.
Добавьте различные наборы микросфер, дифференцированные по размеру и интенсивности внутренней флуоресценции.
Каждый набор конъюгирован с антителом, нацеленным на определенный цитокин.
Инкубируйте тарелку в темноте при перемешивании.
Антитела связываются со своими цитокинами-мишенями, иммобилизуя их на микросферах.
Примените вакуум для удаления несвязанных цитокинов. Связанные с микросферами цитокины сохраняются благодаря меньшему размеру пор мембраны.
Добавьте коктейль из конъюгированных с биотином детекционных антител, которые связываются с микросферическими цитокинами.
Добавьте флуоресцентный репортер-конъюгированный стрептавидин и инкубируйте в темноте при перемешивании. Стрептавидин связывается с биотином, обездвиживая репортера на микросферном комплексе.
Удалите несвязанные молекулы и снова суспендируйте микросферы.
С помощью проточной цитометрии можно идентифицировать связанные цитокины путем определения размера и внутренней флуоресценции микросфер.
Чтобы определить количество конкретного цитокина, измерьте интенсивность флуоресценции репортера.
Для проведения анализа перед применением дайте всем реагентам нагреться до комнатной температуры.
В этой демонстрации используются полипропиленовые фильтрующие пластины. Крайне важно, чтобы пластина оставалась в вертикальном положении на протяжении всей процедуры анализа, включая этапы промывки, чтобы избежать потери бусин.
Предварительно намочите фильтровальную бумагу, добавив 100 микролитров буфера для промывки 1x в каждую лунку, и дайте пластине постоять 1 минуту при комнатной температуре. Удалите буферный объем с помощью вакуумного коллектора. Промокните излишки буфера для стирки с нижней части тарелки, прижав пластину к стопке чистых бумажных полотенец. Затем поместите тарелку поверх перевернутой крышки тарелки.
Для образцов надосадочной жидкости для клеточных культур добавьте во все лунки по 25 микролитров буфера для анализа. Добавьте по 25 микролитров каждого стандарта в стандартные лунки. Наконец, добавьте по 25 микролитров каждого образца в лунки для образцов. Перемешайте бусины в течение 30 секунд. Затем добавьте по 25 микролитров смешанных шариков в каждую лунку, периодически встряхивая бусину, чтобы избежать оседания бусин.
Запечатайте пластину с помощью пломбировщика. После запечатывания оберните всю пластину, включая перевернутую крышку пластины, алюминиевой фольгой. Поместите тарелку на шейкер для тарелок, закрепите ее и встряхивайте со скоростью примерно 500 об/мин в течение двух часов при комнатной температуре. Не переворачивая, поместите пластину на вакуумный коллектор и подайте вакуум, как и раньше. Затем добавьте 200 микролитров 1x буфера для промывки в каждую лунку.
Удалите содержимое лунок с пробирной пластины методом вакуумной фильтрации. Промокните излишки буфера для стирки с нижней части тарелки впитывающей салфеткой или бумажными полотенцами, прежде чем повторить этот шаг еще раз. Далее добавьте в каждую лунку по 25 микролитров антител для обнаружения. После герметизации пластины свежим запайщиком оберните всю пластину, включая перевернутую крышку пластины, алюминиевой фольгой.
Поместите тарелку на шейкер для тарелок и встряхивайте со скоростью примерно 500 об/мин в течение 1 часа при комнатной температуре. Не вакуумируя, добавьте по 25 микролитров реактива стрептавидина фикоэритрина непосредственно в каждую лунку. Запечатайте и оберните тарелку, как и раньше. Тогда. Поместите тарелку на шейкер для тарелок и встряхивайте со скоростью примерно 500 об/мин в течение 30 минут при комнатной температуре.
Повторив этап вакуумной фильтрации дважды, добавьте по 200 микролитров 1x промывочного буфера в каждую лунку. Подвесьте бусины на шейкер для тарелок на 1 минуту. С помощью многоканальной пипетки перенесите образцы с фильтрующей пластины в пробирки FACS для считывания образцов на проточном цитометре.
Related Videos
09:22
Related Videos
12.2K Views
07:08
Related Videos
5.3K Views
08:48
Related Videos
3.2K Views
14:48
Related Videos
44K Views
04:45
Related Videos
573 Views
04:46
Related Videos
460 Views
11:00
Related Videos
45.8K Views
06:37
Related Videos
908 Views
05:25
Related Videos
1.7K Views
09:43
Related Videos
2.2K Views