$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Начните с чашки со стеклянным дном, содержащей эмбриональные корковые нейроны на предметном столике для флуоресценции полного внутреннего отражения или микроскопа TIRF.
Эти нейроны экспрессируют pH-чувствительный зеленый флуоресцентный белок или маркер везикул, помеченный GFP, который флуоресцирует при нейтральном внеклеточном pH, но остается нефлуоресцентным в кислых везикулах.
При слиянии везикул с плазматической мембраной воздействие внеклеточного pH индуцирует флуоресценцию, отмечая событие экзоцитоза.
Выберите объектив и установите показатель преломления в соответствии с нейроном.
Направьте лазерный луч под углом к стеклу, что вызовет полное внутреннее отражение и создаст затухающую волну. Эта волна избирательно возбуждает маркеры GFP вблизи плазматической мембраны.
Установите глубину проникновения TIRF, чтобы исключить маркеры GFP над затухающим полем.
Во-первых, используйте широкопольное эпифлуоресцентное освещение для определения местоположения нейронов, экспрессирующих GFP.
Затем переключитесь на подсветку TIRF для специфического мембранного возбуждения.
Получение покадровых изображений для записи события слияния везикул и визуализации экзоцитоза.
После настройки микроскопа TIRF и образца и нахождения нейронной фокальной плоскости в соответствии с текстовым протоколом, запустите программное обеспечение лазера и подключитесь к программному обеспечению для управления лазером. Установите освещение на широкое поле и выберите объектив. Затем установите показатель преломления образца и отрегулируйте интенсивность лазера, сняв галочку TTL для лазера 491.
Оптимизация параметров визуализации важна при визуализации неповрежденных экзоцитарных везикул на дне, чтобы избежать смещения фокуса и фототоксичности при получении изображений с высоким соотношением сигнал/шум, достаточным для анализа.
Установите ползунок в положение 100, а затем уменьшите его до значения от 20 до 40. Затем перепроверьте TTL. Далее снова сфокусируйтесь на образце в освещении проходящим светом.
Затем в программном обеспечении для обработки изображений выберите лазерную подсветку 491 и откройте затвор. Поместите конденсор вверх дном на оптическую скамью, чтобы не поцарапать объектив. Точно отрегулируйте фокусную точку лазера на потолке.
И со снятым конденсатором центрировать точку к центру диафрагмы замкнутого поля. Затем замените конденсатор. А в программном обеспечении TIRF установите глубину проникновения равной 110 нанометрам. Затем переключитесь с широкоугольного освещения на режим освещения TIRF для получения изображений.
Теперь, используя широкопольную эпифлуоресценцию, найдите клетки, экспрессирующие флорин VAMP2, через окуляры. Затем, чтобы уменьшить фотообесцвечивание и фототоксичность, отрегулируйте параметры изображения, чтобы максимизировать отношение сигнал/шум и динамический диапазон с минимальным временем экспозиции и интенсивностью лазера. Установите непрерывный автофокус на ячейку. Затем получите набор цейтраферных изображений, сбор которых происходит каждые 0,5 секунды в течение 5 минут.