August 8th, 2013
Измерения биомаркеров в сложных биологических образцов все больше руководящих принятия клинических решений. Мы описываем высокочувствительным методом для одновременного измерения сердечного миозин-связывающего белка С, креатин киназы MB и сердечного тропонина I в образцах сыворотки пациентов с инфарктом миокарда и группой контроля.
Общая цель этой процедуры заключается в одновременном количественном определении сердечного миозинсвязывающего белка С и сердечного тропонина I в образцах сыворотки. Это достигается путем предварительного покрытия 96-луночного планшета сердечным антителом к миозинсвязывающему белку С для плексного анализа или с использованием предварительно закодированного триплексного анализа. На втором этапе планшеты с покрытием инкубируются с калибраторами и образцами сыворотки.
Затем добавляются меченые антитела для обнаружения на последнем этапе, генерируется хемилюминесцентный сигнал, который обнаруживается считывателем планшетов. В конечном счете, уровни сердечных белков, представляющих интерес, присутствующих в образцах сыворотки, могут быть определены с помощью одиночного или мультиплексного иммуноанализа. За день до эксперимента внесите пипеткой 30 микролитров мышиного моноклонального антисердечного миозинсвязывающего белка С антител без желатина в нижний угол каждой лунки 96 лунок мисомасштаба для открытия голой стандартной пластины.
Затем постучите по боковым сторонам пластины, чтобы распределить раствор антитела по дну каждой лунки. После запечатывания инкубируйте планшет в течение ночи при температуре четыре градуса Цельсия без встряхивания. На следующее утро выложите раствор над раковиной, а затем на стопку бумажных полотенец.
Затем добавьте 150 микролитров 1%-го блокатора А в PBS в каждую лунку, чтобы блокировать неспецифическое связывание. Инкубируйте запечатанную пластину в течение одного часа при комнатной температуре, встряхивая при 700 об/мин во время стадии блокирования, разбавьте рекомбинантный фрагмент сердечного миозинсвязывающего белка С до исходной концентрации 2000 нанограмм на миллилитр в 1%-ном блокаторе А в PBS. Затем последовательно разбавляют этот раствор в пять раз, что в сумме получается на семь стандартов.
Теперь удалите блокирующий раствор, как показано только что на рисунке, а затем трижды промойте пластину 150 микролитрами 0,05%tween 20 в PBS. После третьего мытья энергично переведите тарелку над раковиной, а затем плотно похлопайте тарелку по слою бумажных полотенец до полного высыхания. Далее пипеткой накапывают по 25 микролитров каждого стандарта и отбирают пробу в соответствующие лунки.
Затем, пока герметичная пластина инкубируется в шейкере в течение одного часа при комнатной температуре, разбавляют специально изготовленное сердечное антитело для обнаружения миозина, связывающего белок С, меченное sul oag, до одного микрограмма на миллилитр в 1% блокаторе А в PBS. После тщательной промывки планшета, как показано выше, добавьте 25 микролитров раствора антител для обнаружения в каждую лунку, а затем инкубируйте герметичную пластину в течение одного часа при комнатной температуре, встряхивая в течение инкубационного периода, запустите демонстрационную пластину со светодиодными индикаторами, чтобы убедиться в правильной работе секторного тепловизора, и программное обеспечение разбавьте буфер Рейда в это время. После тщательной промывки планшета, как показано ранее, с помощью многоканальной пипетки добавьте 150 микролитров буфера Рейда в каждую лунку, стараясь избежать образования пузырьков воздуха, а затем немедленно отсканируйте планшет в секторном тепловизоре перед началом трехплексного анализа.
Дайте 96-луночному триплексному планшету и растворам разбавителя уравновеситься до комнатной температуры. Затем добавьте в тарелку 25 микролитров 1%-го блокатора А в PBS, убедившись, что вся лунка покрыта раствором, и инкубируйте герметичную пластину при комнатной температуре в течение 30 минут, встряхивая. В то же время, разбавляя рекомбинантный сердечный миозинсвязывающий белок C-C-K-M-B и сердечный тропонин I вместе в 1% блокаторе А в PBS, чтобы создать стандарт, содержащий 2000 нанограммов на миллилитр сердечного миозинсвязывающего белка C, 100 нанограммов на миллилитр CKMB и 25 нанограммов на миллилитр сердечного тропонина.
Затем я последовательно разбавляю эту смесь в пять раз до конечного объема не менее 100 микролитров для каждого стандартного разбавленного образца два раза 1%-ным блокатором А в PBS. Затем добавьте 2 технических повтора стандартов по 25 микролитров, а также образцы к 25 микролитрам блокирующего буфера, уже присутствующего в лунках трехплексного планшета, включите заготовку разбавителя только после инкубации герметичной пластины во время встряхивания, разведите три антитела для обнаружения SUL oag вместе до конечной концентрации один микрограмм на миллилитр каждый в 1% растворе блокатора А и PBS через два часа. Вымойте пластину, как только что показано, а затем с помощью многоканальной пипетки добавьте 25 микролитров раствора антител для обнаружения в каждую.
Хорошо инкубируйте герметичную пластину в течение одного часа, встряхивая при этом при 700 оборотах в минуту в течение инкубационного периода. Запустите демонстрационную пластину и разбавьте буфер Рейда, как показано только что на рисунке. Затем, промыв планшет с 0,05% до 20 в PBS, с помощью многоканальной пипетки добавьте 150 микролитров буфера Рейда в каждую лунку, избегая образования пузырьков воздуха, и немедленно отсканируйте пластину в секторном тепловизоре.
На этом рисунке стандартная кривая сердечного миозинсвязывающего белка С в плексном анализе сравнивается с кривой сердечного миозинсвязывающего белка С в трехплексном анализе. Оба анализа демонстрируют очень высокую чувствительность и широкий динамический диапазон. Область обнаружения анализа отображается серым цветом, как плекс, так и три.
Стандартные кривые сердечного миозин-связывающего белка С аналогичны. Нижний предел обнаружения, нижний предел количественного определения и верхний предел количественного определения сопоставимы как в плексном, так и в триплексном анализах. На этих графиках показаны стандартные кривые сердечного тропонина I и CKMB триплексной пластины.
Оба калибратора показали высокую чувствительность и большой динамический диапазон. Область обнаружения анализа отображается серым цветом. Перекрестная реактивность детектирующих антител с двумя другими калибраторами изучалась путем инкубации индивидуальных стандартных кривых всех трех калибраторов с антителами одиночного обнаружения; между калибратором CKMB и антителами для обнаружения сердечного тропонина I и сердечного миозинсвязывающего белка С наблюдалась лишь низкая перекрестная реактивность.
Несмотря на то, что не наблюдалось перекрестной реактивности между другими калибраторами и антителами для обнаружения в качестве доказательства применимости анализа для выявления повреждения сердца, уровни в сыворотке крови 16 пациентов с инфарктом миокарда сравнивали с контрольной группой с использованием трех уровней сердечного миозин-связывающего белка C-C-K-M-B и сердечного тропонина в сыворотке трех сложных планшетов. У пациентов с инфарктом миокарда было установлено, что все три биомаркера были повышены по сравнению с контрольной группой.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
В данной статье представлен чувствительный метод для одновременного измерения сердечно-сосудистых биомаркеров в сыворотках. Внимание сосредоточено на сердечно-сосудистом белке связывания миозина C, креатинкиназе MB и сердечно-сосудистом тропонине I, особенно в контексте инфаркта миокарда.
This method enables sensitive, multiplexed detection of cardiac biomarkers in serum, supporting early and accurate assessment of myocardial injury. By quantifying cMyBP-C alongside CK-MB and cTnI, it improves biomarker panel reliability for target validation in cardiovascular drug development. The electrochemiluminescence platform offers high sensitivity and broad dynamic range with minimal sample volume, facilitating preclinical and translational research workflows.
The method fits within the discovery-to-preclinical continuum, enabling biomarker measurement from early hypothesis testing through lead optimization and mechanistic validation.