May 17th, 2014
Описанный здесь это протокол для полу-автоматизированной визуализации тканеспецифической флуоресценции у эмбрионов рыбок данио.
Общая цель этой процедуры заключается в автоматическом обнаружении чувствительных к эстрогену клеток у живых личинок рыбок данио. Это достигается путем разведения пяти взрослых рыб X-E-R-E-G-F-P для получения эмбрионов репортеров данио-рерио. Далее эмбрионы помещаются в отдельные лунки 96-луночной пластины.
Затем в пластину эмбрионов добавляются эстрогены. Наконец, пластина сканируется на флуоресценцию с помощью эпифлуоресцентного микроскопа с моторизованным предметным столиком. В конечном счете, флуоресцентная микроскопия используется для того, чтобы показать тканевую специфическую активность рецепторов эстрогена.
Таким образом, основное преимущество использования этого метода по сравнению с другими традиционными методами, такими как высокопроизводительный скрининг или скрининг с высоким содержанием, заключается в том, что тканевая специфическая флуоресценция у личинок данио-рерио может быть визуализирована с помощью только стандартного эпифлуоресцентного микроскопа. Оснащен моторизованной сценой, не требует специализированного считывателя пластин. Предостережение: химические вещества с бисфенолом А и эстрадиолом опасны и могут оказывать вредное воздействие на плод человека.
Обращайтесь с эндокринными разрушителями с осторожностью и всегда используйте надлежащие средства индивидуальной защиты. В этой демонстрации рыбки данио будут подвергаться воздействию эстрогенов 17 бета-эстрадиола, бисфенола А и генина в различных дозах, начиная через 48 часов после оплодотворения после разведения рыбок данио, а также собирая и приравнивая икру. Согласно тексту в день обработки развести оттаивающие исходные химические растворы, один к 1000 в одном миллилитре Е трех В плюс вихревой ПТУ энергично.
В качестве пульта управления транспортным средством. Используйте разведение ДМСО в соотношении 1 к 1000 в Е, В, В и ПТУ с использованием пластикового трансфера с большим отверстием. Пипетка переносит три эмбриона из лунки в планшет на 96 лунок, подготавливая три лунки для каждого условия.
Избегайте помещения эмбрионов в наружные лунки, чтобы предотвратить испарение среды при длительном лечении. Работая быстро, чтобы избежать пересыхания зародышей, удалите среду из каждой лунки и добавьте по 200 микролитров хорошо перемешанного лечебного раствора. Визуально подтвердите, что все эмбрионы погружены в раствор и не прилипли к бортику лунки.
Инкубируйте эмбрионы при температуре 28,5 градусов Цельсия через 72 часа. После оплодотворения обезболите эмбрионы, добавив 10 микролитров четырех миллиграммов на миллилитр трики. К каждому, хорошо поместите пластину на 96 лунок на моторизованную сцену и используйте программное обеспечение Zeiss Zen Blue 2011.
Откалибруйте столик, выбрав вариант носителя образца и выбрав многолуночный 96. Затем выберите «Калибровка», прежде чем следовать пошаговым инструкциям с использованием объектива с 10-кратным увеличением и настройкой яркого поля или BF, определите положительный контрольный эмбрион и установите соответствующие настройки экспозиции для каналов BF и GFP, убедившись, что флуоресцентный сигнал не насыщает камеру. Сосредоточьтесь на одном эмбрионе и запрограммируйте микроскоп на получение в общей сложности трех Z-сечений, которые включают одно изображение на 50 микрометров выше и одно на 50 микрометров ниже текущей фокальной плоскости.
Далее необходимо задать программные параметры для получения мозаичного изображения с использованием каналов GFP и BF. На вкладке Приобретение выберите Расширенная настройка, выберите Области плитки, а затем Плитки. Выберите круг.
Опция Well select carrier and fill factor 90%, чтобы получить несколько изображений выбранных скважин, так что 90% площади каждой скважины будет видно на составном изображении. В разделе «Параметры» выберите желаемую степень перекрытия, например, от пяти до 10%, что обеспечивает плавный стык между изображениями. Затем начните визуализацию для ручной съемки изображений с использованием объектива 20x и настройки BF, определите положительный контрольный эмбрион.
Установите настройки BF и GFP, как и раньше, и сделайте снимки. На этом рисунке представлены составные изображения из отдельных скважин 96-луночной пластины. Каждое изображение состоит из 59 отдельных изображений с наложением изображения на 5%.
Обратите внимание, что живые рыбки данио ориентированы случайным образом внутри каждой лунки. Тем не менее, мы можем отличить флуоресценцию в сердце от флуоресценции в печени. Изображения светлого поля полезны в качестве справочных материалов для оценки ориентации рыбок данио и визуализации морфологических аномалий.
Показанные здесь изображения были получены с помощью объектива с увеличенным в 20 раз рабочим расстоянием для более детального анализа и были сделаны непосредственно после показанного автоматического сканирования, не снимая пластину с предметного столика микроскопа. Используя объектив 20-кратного увеличения, флуоресценцию в сердце можно точно локализовать на предсердных желудочковых клапанах, обозначенных стрелками, и на аортальных клапанах, как указано стрелкой. Как только эта техника будет освоена, в день можно будет получать изображения с 3 96 настенных панелей.
Не забывайте, что работа с соединениями, разрушающими эндокринную систему, может быть опасной, поэтому всегда принимайте надлежащие меры предосторожности, такие как ношение надлежащих средств индивидуальной защиты во время выполнения этой процедуры.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Этот протокол описывает метод для полуавтоматического изображения тканевой флуоресценции в эмбрионах данио, с фокусом на клетках, реагирующих на эстроген. Процедура использует флуоресцентную микроскопию для визуализации активности эстрогенных рецепторов в живых личинках данио.