-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Bioengineering
Одной молекулы флуоресцентной микроскопии на Planar Поддерживаемые Бислои
Одной молекулы флуоресцентной микроскопии на Planar Поддерживаемые Бислои
JoVE Journal
Bioengineering
Author Produced
This content is Free Access.
JoVE Journal Bioengineering
Single Molecule Fluorescence Microscopy on Planar Supported Bilayers

Одной молекулы флуоресцентной микроскопии на Planar Поддерживаемые Бислои

Full Text
14,397 Views
20:00 min
October 31, 2015

DOI: 10.3791/53158-v

Markus Axmann1, Gerhard J. Schütz1, Johannes B. Huppa2

1Institute of Applied Physics - Biophysics,Vienna University of Technology, 2Institute for Hygiene and Applied Immunology, Immune Recognition Unit,Medical University of Vienna

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Здесь показано приготовление функционализированных белком планарных стеклянных липидных бислоев, определение подвижности белка внутри и измерение плотности белка. Изложена дорожная карта создания микроскопа с полным внутренним отражением с пониженным шумом, который позволяет визуализировать одиночные двухслойные резидентные флуорохромы с высоким пространственно-временным разрешением.

В этом видео мы покажем, как получить и охарактеризовать биофункционализированный планарный липидный билар. Мы также подробно опишем архитектуру микроскопа с полным внутренним отражением и возможностями детектирования отдельных молекул. Мы измерим плотность мощности возбуждения, текучесть и плотность белка липидного слоя.

Начнем с краткого введения: В плоскостное стекло с липидной поддержкой. Когда маленькие одноканарные везикулы сталкиваются с чистой стеклянной поверхностью, они лопаются и распространяются, образуя непрерывный липидный бислой. Для водной подушки мы обычно выбираем материал ладони.

Олефосфохолин или POPC имеет преобладающий липид, потому что он дает образование жидких липидных бислоев при комнатной температуре и 37 градусах Цельсия. Для функционализации мы добавляем никель антиокс, синтетический липид с хелатирующей группой никеля, который связывает белки полигистаминовых меток. Например, ко-стимулирующая молекула B 7 one, молекула адгезии ICAM one и флуоресцентно меченная пептидная молекула MHC для распознавания Т-клеток, как показано здесь, тем не менее, эта двухслойная система в принципе может быть использована для управления совершенно различными процессами в различных биологических системах.

Из-за природы планарной системы, флуоресцентные события можно контролировать в режиме полного внутреннего отражения, что значительно снижает клеточный фон и очень хорошо подходит для флуоресцентной микроскопии с одной молекулой. После обработки высоким вакуумом в течение ночи липиды образуют пленку на внутренней стороне колбы. Для регидратации липидов используйте Degas PBS в дозе 10 миллилитров Degas PBS на высушенную смесь липидов.

Не перемешивайте. Теперь, чтобы избежать окисления липидов, наполните колбу инертным газом, таким как азот или аргон. Липиды образуют молочную суспензию.

Возьмите небольшой образец в качестве заготовки для спектрофотометра, чтобы предотвратить газообмен на следующем этапе. Очень важно правильно укупорить колбу, содержащую липидную суспензию. Используйте термоустойчивую липкую ленту, например, автоклавную ленту там, где защита воздуха при физическом образовании осуществляется с помощью закрытой ультразвуковой ванны.

После установки колбы приступайте к процедуре ультразвуковой обработки на максимальной мощности 170 Вт. Sonic Cade в течение 60 минут. Из-за физического формирования, помутнение значительно снизилось.

Это можно проверить с помощью спектрофотометрии на 550 нанометрах. Используйте аликвоту, взятую перед обработкой ультразвуком, в качестве заготовки. Оптическая плотность на уровне 230 нанометров, которая указывает на количество липидов, должна оставаться постоянной.

Здесь мы заполняем небольшие ультрацентрифужные пробирки суспензией visl объемом в один миллилитр и помещаем их в ротор настольной ультрацентрифуги с фиксированным углом. Очень важно использовать только небольшие пузырьки uni laina для приготовления бислоя. Более крупные и плотные многослойные пузырьки, которые также образуются во время ультразвуковой обработки, препятствуют текучести бислоя и поэтому должны быть бледнеют и удаляются центрифугированием.

Сначала мы вращаем в течение часа при 150 000 G при комнатной температуре. Полученный снат затем центрифугируют в течение дополнительных восьми часов при температуре 288 000 G при четырех градусах Цельсия. Стеклянные лампы должны быть очень чистыми, прежде чем липидные пузырьки смогут распространяться на них, образуя непрерывный и жидкий бислой.

Для этого мы помещаем покровные листы в тефлоновую насыпь, которую затем помещаем в стеклянный сосуд для упражнения. Большая осторожность там, где защита глаз, защитные перчатки и лабораторный халат и работа в химическом шкафу. Мы добавляем одну часть 30% перекиси водорода, а затем три части концентрированной серной кислоты, чтобы получить очень реактивную и окислительную периомоносерную кислоту.

Эта смесь бурно реагирует с органическими веществами, в том числе с веществами кожи, глаз и одежды. Он нагревается сразу. Инкубируйте предметные стекла в течение 30 минут.

Захватите защитное стекло щипцом Тщательно смойте кислоту с обеих сторон чистого защитного стекла с помощью дистиллированной или высококачественной смешанной воды. Затем поместите предметное стекло на тефлоновую подставку и дайте ему высохнуть не более 10 минут, чтобы иметь возможность производить несколько отдельных липидных бислоев одновременно. Склеиваем высушенные покровные листы с быстрым затвердеванием.

Двухкомпонентный эпоксидный клей к восьмилуночной или 16-луночной лабораторной технической камере. Во-первых, осторожно снимите оригинальное стекло с его рамы. Смешайте два компонента клея в пропорции один к одному.

Равномерно распределите его по нижним пазам рамки камеры. Поместите чистую крышку на покрытую клеем дно рамки камеры. Убедитесь, что клей равномерно распределен между предметным стеклом и пластиковой рамкой.

Дайте клею застыть в течение 30 минут. Разбавляют физическую липидную суспензию в PBS от одного до 10 и фильтруют ее через фильтр 0,2 микрона из расчета 120 микролитров этого разбавления в каждую лунку камеры с восемью лунками или по 60 микролитров в каждую лунку камеры с 16 лунками. Убедитесь, что вся стеклянная поверхность покрыта, и подождите 20 минут.

Теперь бислой сформировался Чтобы избавиться от остатков леса, промойте каждую лунку 30 миллилитрами PBS. Любой ценой избегайте воздействия воздуха на поверхность стекла. Это мгновенно разрушит бислой, чтобы гарантировать, что каждая лунка содержит одинаковый объем буфера Для следующего этапа украшения белка полностью заполните каждую лунку и удалите купол жидкости.

Вынимаем 330 микролитров. Это оставит около 350 микролитров в каждом. Хорошо чтобы украсить бислой белками, приготовьте мастер-смесь, содержащую полигистаминовые технологические белки по выбору и добавьте 50 микролитров ее в каждую лунку.

Белки связываются с никелево-антиголовочной группой темного липида для обеспечения воспроизводимых результатов, тщательно перемешиваются и всегда инкубируются в течение 60 минут для удаления несвязанных белков. Снова умойтесь 30 миллилитрами PBS. Теперь давайте сосредоточимся на аппаратном обеспечении для микроскопии.

Во-первых, мы проиллюстрируем требования микроскопии полного внутреннего отражения для объективной микроскопии газона. Нужен масляный иммерсионный объектив с высокой числовой апертурой. Входящий луч лазерного возбуждения отражается дихроичным зеркалом и фокусируется с помощью набора из двух или трех линз только на заднюю фокальную плоскость объектива.

Затем лазерный свет направляет объектив в виде покрытого лучом вдоль оптической оси. Таким образом, флуоресцентный образец освещается на всю глубину. При перемещении луча перпендикулярно оптической оси луч остается собранным, но отклоняется от объектива под наклоном.

Если вы продолжите перемещение, то в какой-то момент достигнете критического угла, под которым луч полностью отражается на границе раздела между стеклопакетом и образцом. Интенсивность возникающей затухающей волны экспоненциально затухает, и возбуждаются только четвертые этажи, находящиеся в непосредственной близости от границы раздела с точностью до нескольких сотен нанометров. Теперь мы проиллюстрируем, как вручную сфокусировать лазерный луч в задней фокальной плоскости объектива.

При использовании трех или двух линз с первыми двумя линзами диаметр лазерного луча увеличивается. Отношение их фокусного расстояния определяет размер пятна освещения в плоскости образца. Чтобы луч оставался ровным, отрегулируйте расстояние между этими линзами так, чтобы оно было равно сумме фокусных расстояний обоих.

Третья линза используется для фокусировки расширенного луча в заднюю фокальную плоскость объектива. Поскольку фокусное расстояние этого объектива должно соответствовать размерам корпуса микроскопа и связанного с ним перископа, в нашем случае оно должно быть намного длиннее — 75 сантиметров. Расстояние между второй и третьей линзой не влияет на свойства луча.

Таким образом, пространство бесконечности между ними может быть использовано для изменения луча определенным образом без искажений. Например, можно вставить отверстие и точно спроецировать его на плоскость образца. По сути, того же можно добиться при использовании двух линз вместо трех.

Система из двух линз менее определена, но приводит к меньшему количеству аберраций объектива. Простые функции, такие как апертура Все еще могут быть очень хорошо реализованы для временной модуляции. Газовый, железный или твердотельный лазер должен быть размещен перед затвором миллисекундного диапазона, например, механическим затвором или алюминиевым оптическим модулятором.

Хорошей альтернативой является диодный лазер, который может быть электронно модулирован и не нуждается во внешней заглушке. Двух зеркал достаточно, чтобы направить луч в любое место и в любом направлении. Как обсуждалось ранее, эти две линзы используются для расширения луча и его фокусировки на задней фокальной плоскости микроскопа. Объективный.

Мы можем переместить луч для конфигурации газона, сместив нижнее зеркало перископа на оптической рейке. Для обнаружения изображений мы используем высокочувствительную камеру. Например, устройство с умножительной зарядовой связью электронов или второй лазерный луч em CCDA с другой длиной волны может быть выровнен по траектории луча.

С использованием зеркал и дихроичной накладки. Для одновременного обнаружения двух цветов мы размещаем коммерчески доступное устройство для разделения луча в тракте излучения. Для экспериментов очень полезно иметь два независимых пути пучка возбуждения.

Например, один для визуализации газона, а второй для целенаправленного фотообесцвечивания или активации. Этого можно легко достичь, установив комплект из 2 светоделителей 50 50. Как показано на нашем рисунке, две разные системы регулировки линз и зеркал приведут к созданию двух отдельных профилей луча и углов луча.

Например, расширенный для визуализации на газоне и более узкий для отбеливания или активации на негазоне. В луч без газона может быть размещено отверстие для точной формы точки отбеливания или активации. Две дополнительные заслонки, по одной на каждый путь луча Обеспечивают независимое управление переключателем лазерного луча, оставляя объектив на прямой ненаклонной траектории.

Включите измеритель мощности и настройте его на соответствующую длину волны лазера. Измерьте мощность лазерного излучения на объективе и запишите ее. Теперь переместите зеркало за микроскопом, чтобы наклонить лазерный луч на объектив в положение газона.

Никогда не смотрите прямо в свет лазера. В правом нижнем углу вы видите профиль интенсивности возбуждающего лазера, визуализированный через излучение бислоя, украшенного флуоресцентными белками. Здесь мы используем представление ложных цветов для выделения областей разной интенсивности.

Измерьте среднюю интенсивность фона в пределах достаточно большой области интереса. Это значение зависит от конкретных настроек камеры, таких как усиление ЭМ и скорость считывания, и его необходимо вычесть из всех измеренных интенсивностей. Определите среднюю интенсивность в пределах всей освещаемой площади.

Выберите диаметр достаточно большим, чтобы значения интенсивности на периферии были аналогичны значениям интенсивности фона камеры, измеряющей среднюю интенсивность центральной области. Эта область определяет область интереса, в которой в дальнейшем будут проводиться микроскопические эксперименты. Теперь вычтем среднее значение интенсивности фона из интенсивностей как удаленной, так и центральной области.

Затем умножьте скорректированные интенсивности фона на соответствующее количество пикселей размера области, чтобы получить интегрированные интенсивности. Установите интегральную интенсивность освещенной области равной единице и рассчитайте дробь для центральной области. Мощность, измеренная с помощью измерителя мощности.

В нашем случае пять милливатт прямо пропорциональны интегральной интенсивности всей освещаемой площади. Умножьте это значение на долю мощности центральной области, чтобы определить мощность в центральной области. В нашем примере, 1,15 милливатт, коэффициент преобразования количества пикселей в квадратные микроны зависит от фактического размера пикселя чипа камеры и увеличения пути излучения.

Его можно легко определить с помощью предметного стекла с помощью микрометра. В нашем примере центральная площадь соответствует 170,8 квадратным микронам. Плотность мощности относится к измеренной мощности, деленной на площадь, и, таким образом, равна 1,15 милливатт, деленной на 170,8 квадратных микрона, или 0,007 милливатт на квадратный микрон.

То есть 0,7 киловатта на квадратный сантиметр. Чтобы определить текучесть бислоя, мы проводим флуоресцентное восстановление после фотообесцвечивания обертывания. Как показано на нижнем левом видео, мы видим флуоресцентный бислой с низкой плотностью мощности.

В правом нижнем углу фильма вы можете увидеть соответствующую лабораторную техническую камеру на микроскопе. Затем мы отбеливаем круглую область короткими импульсами с высокой плотностью мощности и контролируем восстановление при низкой плотности мощности. Опять же, монтаж дает представление об эксперименте для различных временных точек, где нулевое время — это импульсы отбеливателя.

Мы количественно определяем среднюю скорректированную интенсивность флуоресценции фона в пределах круга отметки и нормализуем все измеренные интенсивности до интенсивности в начале эксперимента. Перед импульсами отбеливателя мы строим график нормализованных значений интенсивности в зависимости от времени. Значение насыщения представляет собой подвижную фракцию в нашем случае более 90%Сначала сделайте изображение бислоя при низкой плотности мощности возбуждения.

Например, при размещении фильтра оптической плотности со значением логарифмического затухания два, это снижает мощность в 100 раз. Время экспозиции должно быть постоянным на протяжении всей процедуры и достаточным для того, чтобы визуализировать единичную силу жидкости при неослабленной плотности мощности в нашем случае 10 миллисекунд при 0,7 киловатта на квадратный сантиметр. Используйте представление в ложных цветах, чтобы выделить области разной интенсивности.

Выберите одну область интереса, в которой впоследствии будут выполнены измерения одной молекулы, и одну область того же размера. Для вычитания фона вычислите интенсивность вычитания фона. Теперь снимите фильтр оптической плотности с пути луча возбуждения, обесцвечьте область и сделайте снимок.

Вы увидите, как отдельные силы гриппа рассеиваются в отбеленной области. Одиночные силы гриппа ограничены дифракцией с типичным диаметром от двух до трех пикселей, берут одну область семь на семь пикселей вокруг каждой отдельной молекулы сигнала и вторую область рядом. Для вычитания фона важно количественно оценить сигнал только одной силы Fluor

.

Таким образом, лучше всего визуализировать белки на слое BI с соотношением белка к белку менее единицы или для белков, специально меченных SAT. Еще большее соотношение рациона и белка единицы, как показано в нашем примере, измерьте интегральную интенсивность для обеих областей и вычтите фон из сигнала, чтобы не учитывать последнее наблюдаемое событие, показанное в нашем примере, поскольку обесцвечивание, вероятно, произошло во время среднего воздействия. Скорректированные сигналы здесь мы делаем для одного гриппа из четырех, который мы наблюдаем на протяжении девяти кадров.

Тем не менее, эту процедуру следует выполнять, по крайней мере, для нескольких сотен событий с одной молекулой. Давайте вернемся к нашему исходному изображению бислоя, наблюдаемому при ослабленной плотности мощности возбуждения. Молекулярная плотность определяется путем коррекции интегральной интенсивности интересующей области для низкой плотности мощности возбуждения путем умножения на сотню и деления ее на среднюю интенсивность отдельной молекулы и площадь.

Мы имеем дело с плотностью 421,4 силы флуория на квадратный микрон. В нашем примере при соотношении диеты к белку равным единице, это равно тому же количеству молекул на квадратный микрон. После просмотра этого видео вы сможете получить и охарактеризовать функционализированный белок липидный бислой с помощью флуоресцентной микроскопии с одной молекулой.

Кроме того, вы должны быть ознакомлены с основными принципами модификации и модернизации стандартного микроскопа для этой цели. Позже мы будем использовать эту методологию для определения кинетики связывания двухслойного связанного антигена с клеточными Т-клеточными рецепторами, но многие другие приложения, основанные на этом, безусловно, возможны.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Биоинженерия выпуск 104 Малый / Большой однослойные везикулы Planar Стекло Поддерживаемые липидов бислоя лазер полного внутреннего отражения микроскопии флуоресценции Восстановление после фото-отбеливание одна молекула микроскопии

Related Videos

Поддерживаемые Planar Бислои для формирования Исследование иммунологических синапсов и Kinapse

12:24

Поддерживаемые Planar Бислои для формирования Исследование иммунологических синапсов и Kinapse

Related Videos

13.1K Views

Автоматизированная система для одной молекулы флуоресцентной Измерения поверхностного иммобилизованных биомолекул

10:57

Автоматизированная система для одной молекулы флуоресцентной Измерения поверхностного иммобилизованных биомолекул

Related Videos

13.2K Views

Анализ бислоя липидов с планарной поддержкой: метод in vitro на основе микроскопии для исследования сборки септина на биологических мембранных мимиках

04:10

Анализ бислоя липидов с планарной поддержкой: метод in vitro на основе микроскопии для исследования сборки септина на биологических мембранных мимиках

Related Videos

818 Views

Подготовка Mica Поддерживаемые липидного бислоя за большой размер оптической микроскопии изображений

07:48

Подготовка Mica Поддерживаемые липидного бислоя за большой размер оптической микроскопии изображений

Related Videos

13.9K Views

Атомно-силовая микроскопия изображений и силовая спектроскопия поддерживаемых липидного бислоя

10:15

Атомно-силовая микроскопия изображений и силовая спектроскопия поддерживаемых липидного бислоя

Related Videos

15.4K Views

SNARE-опосредованного Слияние единого Протеолипосомы с ПРИВЯЗНЫХ Поддержанные Бислои в ячейке Микрожидкостных Flow, отслеживаемых поляризованной TIRF микроскопией

10:58

SNARE-опосредованного Слияние единого Протеолипосомы с ПРИВЯЗНЫХ Поддержанные Бислои в ячейке Микрожидкостных Flow, отслеживаемых поляризованной TIRF микроскопией

Related Videos

11.4K Views

Восстановление мембранно-привязанных минимальных актиновых коры на поддерживаемых липидных бислоях

11:55

Восстановление мембранно-привязанных минимальных актиновых коры на поддерживаемых липидных бислоях

Related Videos

2.8K Views

Восстановление сборки септина на мембранах для изучения биофизических свойств и функций

06:32

Восстановление сборки септина на мембранах для изучения биофизических свойств и функций

Related Videos

2.7K Views

Одномолекулярная диффузия и сборка на полимерно-переполненных липидных мембранах

10:43

Одномолекулярная диффузия и сборка на полимерно-переполненных липидных мембранах

Related Videos

2.9K Views

Одномолекулярная визуализация латеральной подвижности и активности ионных каналов в липидных бислоях с использованием флуоресцентной микроскопии с полным внутренним отражением (TIRF)

08:55

Одномолекулярная визуализация латеральной подвижности и активности ионных каналов в липидных бислоях с использованием флуоресцентной микроскопии с полным внутренним отражением (TIRF)

Related Videos

4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code