26 апреля 2016 г.
Представлен протокол использования высокопроизводительных жидкостных хроматографических колонок реакционного потока для методов, использующих дериватизацию после колонки (PCD).
Общая цель данного метода заключается в повышении эффективности и чувствительности высокоэффективной жидкостной хроматографии с постколоночной дериватизацией (метод PCD) за счет использования реакционной проточной колонки. Этот метод может помочь в решении ключевых вопросов в таких областях, как фармацевтика, биомедицина и экология, где анализируются соединения с низким откликом на детекторах ВЭЖХ. Основным преимуществом данной методики является отсутствие необходимости в использовании реакционных змеевиков.
Поскольку смешивание элюата колонки с дериватизирующим реагентом происходит более эффективно, чем при использовании традиционных методов, данный подход применялся для изучения антиоксидантов, аминокислот и фенолов. Он также может быть применен к другим классам соединений, таким как тиолы, металлы, антибиотики и токсины.
Хотя дериватизация проводится не для всего образца, благодаря меньшему размыванию зоны концентрация аналита в потоке элюата выше, чем при традиционном постколоночном дериватизировании. Для начала данной процедуры подготовьте систему ВЭЖХ, используя в качестве подвижной фазы 100% воду в линии A и 100% метанол в линии B, промыв насосы в соответствии с требованиями производителя. Настройте компоненты системы ВЭЖХ и дополнительный насос для дериватизации.
После этого настройте УФ/ВИД-детектор для анализа на длине волны 520 нанометров. Подключите вход колонки потока реакции (RF) к прибору ВЭЖХ. Подключите периферийный выходной порт к УФ/ВИД-детектору, используя трубку длиной 15 сантиметров с внутренним диаметром 0,13 миллиметра.
Затем подсоедините линию насоса с DPPH к периферийному порту на выходе колонки RF. Закройте неиспользуемый периферийный порт на выходе колонки RF с помощью стоппера для колонки. Подсоедините отрезок трубки длиной 15 сантиметров с внутренним диаметром 0,13 миллиметра к центральному порту на выходе колонки RF.
Установите скорость потока насоса ВЭЖХ на 1 мм/мин при использовании 100% метанола. Затем уравновесьте колонку 100% метанолом в течение 10 минут. В это время приготовьте раствор DPPH в метаноле с концентрацией 0,1 мг/мл.
Обработайте колбу с реагентом DPPH ультразвуком в течение 10 минут. Промойте насос DPPH подготовленным реагентом DPPH в соответствии с требованиями производителя. После этого возьмите две сухие и чистые емкости, пометьте одну из них как «центральная», а другую — как «периферическая». Точно взвесьте обе емкости.
Соберите элюат, выходящий из центрального порта, в сосуд с пометкой «central» в течение одной минуты. После повторного взвешивания сосуда центрального порта вычислите массу потока из центрального порта. Повторите предыдущие шаги для элюата, выходящего из UV/VIS, который подключен к периферийному порту колонки RF.
Вычислите вес для сосуда периферического порта. Затем рассчитайте процентный вклад потока из центрального и периферического портов. Повторяйте предыдущие шаги до достижения правильного соотношения потоков, после чего установите скорость потока насоса DPPH на 0.5 milliliters per minute.
После завершения анализа остановите подачу потока реагента для дериватизации. Извлеките линию насоса с реагентом DPPH из периферийного порта и закройте порт пробкой. Уравновесьте колонку подвижной фазой, в которой она будет храниться, пропуская подвижную фазу через колонку со скоростью 1 мм/мин в течение 10 минут.
Затем остановите поток насоса пузырьковой фазы на приборе ВЭЖХ. В завершение замените реагент DPPH метанолом и промойте дополнительный насос. Здесь представлены две хроматограммы образца кофе ристретто, дериватизированного радикалом DPPH с использованием как стандартного ПСД, так и РЧ-ПСД оборудования.
Здесь приведены рассчитанные пределы количественного определения и обнаружения для каждой из аминокислот, проанализированных в режимах RF-PCD и стандартного PCD. Здесь представлена хроматограмма четырех аминокислот, проанализированных с использованием стандартного метода PCD, метода RF-PCD и потока без дериватизации в методе RF-PCD. Здесь показано сравнение сигналов, полученных для пиков глицина и лейцина с использованием как стандартного метода PCD, так и метода RF-PCD.
Здесь представлено сравнение ширины пика триптофана при анализе с использованием стандартного метода PCD, метода RF-PCD и анализа непроизводного потока методом RF-PCD. Тестовый образец, состоящий из 21 компонента, включая вещества, которые дают отклик на схему дериватизации, и те, которые его не дают, был подвергнут разделению, дериватизации и детектированию. Для сравнения та же смесь была разделена и детектирована без дериватизации.
Здесь представлено сравнение формы пика пара-крезола в случае с использованием дериватизации на колонке RF-PCD и без нее. После освоения данного метода его настройка занимает столько же времени, сколько и при обычном анализе с постколонной дериватизацией. При выполнении этой процедуры важно максимально точно соблюдать предписанные соотношения потоков.
После выполнения данной процедуры для анализа других соединений можно использовать иные реагенты для послеколоночной дериватизации, такие как ОФА, нингидрин или галогены. После просмотра этого видео у вас должно сложиться четкое представление о том, как настраивать и оптимизировать реакционную проточную колонку.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данной статье представлен протокол повышения эффективности и чувствительности послеколоночной дериватизации (ПКД) в высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) с использованием реакционных проточных колонок. Этот метод особенно полезен при анализе соединений с низким откликом детекторов ВЭЖХ в различных областях науки.
Постколоночная дериватизация (ПКД) повышает чувствительность детектирования аналитов с низким откликом в фармацевтических и биомедицинских исследованиях, однако традиционные методы характеризуются уширением пиков из-за использования длинных реакционных катушек. Реакционный поток ПКД (RF-PCD) устраняет это ограничение, обеспечивая эффективное смешивание внутри колонки, что повышает эффективность разделения и отношение сигнал/шум. Данное усовершенствование обеспечивает надежное количественное определение таких соединений, как аминокислоты, антиоксиданты и фенолы, что напрямую влияет на чувствительность анализа в рабочих процессах на ранних этапах поиска новых лекарственных средств.
RF-PCD вписывается в континуум поиска новых соединений, повышая надежность детектирования при скрининге на ранних этапах, когда чувствительное количественное определение биоактивных соединений служит основой для идентификации и приоритизации перспективных кандидатов.