May 2nd, 2022
Целью данной рукописи является описание мышиной модели KitV558Δ/+ и методов успешного вскрытия и обработки образцов мышей.
Наш протокол описывает разведение, поддержание, рассечение и обработку образцов единственной иммунокомпетентной мышиной модели, GIST, используемой в настоящее время. Мы надеемся, что будущие исследователи смогут использовать эту модель мыши для дальнейших трансляционных исследований в GIST. Традиционная терапия в GIST включает таргетную молекулярную терапию ингибиторами тирозинкиназы.
Эта модель позволяет исследователям тестировать иммунотерапию в GIST. Для начала стерилизуйте все инструменты, носите перчатки на протяжении всей процедуры и поддерживайте стерильное поле. Подготовьте участок разреза с 70% этанолом.
С помощью ножниц сделайте двухсантиметровый вертикальный разрез средней линии и войдите в брюшную полость. Резко лизируют любые внутрибрюшные спайки. Чтобы удалить дренирующий брыжеечный лимфатический узел, определите слепую кишку и поднимите ее брыжейку лучше.
Примерно на полпути к основанию брыжейки толстой кишки определите брыжеечный лимфатический узел и резко рассекните его. По мере необходимости разделите ткань лимфатического узла на трети для выделения белка, гистологии и одноклеточной суспензии. Поместите ткань лимфатических узлов в 20 миллилитров среды RPMI для одноклеточных суспензий и держите на льду.
Слепая кость в основном заменяется GIST у мышей Kit558. Для выделения ГИСТ и слепой кишки осторожно отделите илеоколическое соединение от основания опухоли. Затем снова разделите слепую кишку, на два сантиметра дистальнее основания опухоли.
У 50-60% мышей Kit558 головка опухоли содержит колпачок ткани слепой кишки, который обычно содержит серозную жидкость, но редко может содержать гной. Резко рассекните ткань колпачка от опухолевой ткани. Разделите опухолевую ткань и слепую кишку на трети для выделения белка, гистологии и одноклеточной суспензии.
Для одноклеточных суспензий поместите опухолевую ткань или слепую кишку в HBSS с 2% FCS, достаточным для покрытия образца, и держите на льду. Вылейте RPMI-среду с образцом лимфатического узла на 100-микрометровый фильтр. Переместите фильтр на новый 50-миллилитровый конический, и разомните лимфатический узел мягким концом трехмиллилитрового пластикового шприца.
Промывочный фильтр с 20 миллилитрами rpmi среды. Центрифугируйте образцы и аспирируйте супернатант. Повторно суспендировать гранулу в 20 миллилитрах шарикового буфера и перелить на 40-микрометровый фильтр.
Соберите фильтрат клеток. Подсчитывайте клетки с помощью гемоцитометра. Центрифугируйте образцы и выбросьте супернатант.
Затем повторно суспендировать в бусинчатом буфере для проточной цитометрии. Подготовьте буфер коллагеназы, как описано в тексте рукописи. Поместите GIST в стерильную посуду и добавьте 2,5 миллилитра коллагеназного буфера.
Используя стерильный скальпель и ножницы, измельчите опухоль до тех пор, пока она не окажется в мелких фрагментах. Используйте пипетку с большим отверстием, чтобы аспирировать опухоль и коллагеназу в 50-миллилитровую трубку. Инкубируют его при 37 градусах Цельсия в течение 30 минут со скоростью 100 оборотов в минуту, затем гасят реакцию двумя миллилитрами FBS.
Налейте коллагеназу с образцом GIST на 100-микрометровый фильтр и разомните опухоль мягким концом трехмиллилитрового пластикового шприца и соберите в 50-миллилитровую трубку. Фильтр для промывки с 20 миллилитрами HBSS. Центрифугируйте фильтрат при 450 RCF в течение пяти минут при четырех градусах Цельсия, затем выбросьте супернатант.
Повторно суспендировать гранулу в 20 миллилитрах шарикового буфера и перелить на 40-микрометровый фильтр Соберите фильтрат и подсчитайте ячейки с помощью гемоцитометра. Центрифугируют и аспирируют супернатант, затем повторно суспендируют в шариковый буфер для проточной цитометрии. С помощью ножниц расщелите слепую кишку продольно, чтобы обнажить внутреннюю слизистую оболочку.
Разрежьте его на 0,5-сантиметровые срезы и поместите в 50-миллилитровую трубку с пятью миллилитрами HBSS и 2% FBS. Энергично встряхните в течение 30 секунд и центрифугируйте при 450 RCF в течение 20 секунд. Затем отбросьте супернатант.
Добавьте от пяти до 20 миллилитров HBSS с двухмиллимолярной ЭДТА. Инкубируйте его при температуре 37 градусов Цельсия при 100 оборотах в минуту в течение 15 минут. Центрифугируйте и выбросьте супернатант, затем повторно суспендируйте гранулу в пяти-20 миллилитрах HBSS.
Энергично встряхните смесь в течение 30 секунд, затем центрифугируйте при 450 RCF в течение 20 секунд и выбросьте супернатант. Повторите этот процесс еще раз. Повторно суспендируйте гранулу в пяти миллилитрах коллагеназного буфера, затем инкубируйте ее при 37 градусах Цельсия в течение 30 минут со скоростью 100 оборотов в минуту.
Энергично встряхивайте каждые 10 минут и гасите реакцию двумя миллилитрами FBS. Налейте коллагеназу с образцом слепой кишки на 100-микрометровый фильтр и разомните мягким концом трехмиллилитрового пластикового шприца. Промыть фильтр 20 миллилитрами HBSS и собрать фильтрат.
Центрифугируйте и выбросьте супернатант. Повторно суспендировать гранулу в 20 миллилитрах шарикового буфера и перелить на 40-микрометровый фильтр. Соберите фильтрат и подсчитайте клетки с помощью гемоцитометра.
Повторите процесс центрифугирования еще раз и повторно суспендируйте гранулу в шариковом буфере для проточной цитометрии. Мыши Kit558 имели среднюю продолжительность жизни восемь месяцев из-за прогрессирующей непроходимости кишечника. Опухоли у мышей Kit558 экспрессировали канонические маркеры GIST, включая тирозинкиназу KIT, трансмембранный канал Dog1 и транскрипционный фактор ETV1.
Опухоли были изучены на предмет изменений в сигнальном пути KIT, таких как нисходящие маркеры ERK и AKT или иммунная микросреда, которая близко имитировала GIST человека. МРТ или КТ использовались для отслеживания объема опухоли в качестве точного измерения ответа опухоли. Рассечение опухоли от илеоколического соединения и от цекальной шапки важно для захвата истинного веса опухоли и иммунного и молекулярного анализа.
В рамках GIST эта модель позволила исследовать микроокружение опухоли, а также иммунотерапию.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Это рукопись описывает модель мыши Kit V558Δ/+ и излагает методики успешной диссекции и обработки образцов мышей. Протокол направлен на упрощение переводных исследований гастроинтестинальных стромальных опухолей (ГИСТ) с использованием этой иммунокомпетентной модели.
The KitV558Δ/+ genetically engineered mouse model provides an immunocompetent, disease-relevant system for translational research in gastrointestinal stromal tumor (GIST). This model enables rigorous evaluation of both targeted molecular and immune therapies, addressing the limitations of xenograft models and supporting predictive confidence in preclinical oncology pipelines. Its alignment with human GIST histology and immune microenvironment enhances mechanistic de-risking and informs portfolio advancement decisions.
This model bridges early discovery, lead identification, and preclinical validation for GIST, supporting robust hypothesis testing and translational continuity.