Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Neuroscience

In utero Elektroporasyon Kortikal nöronlar Altküme Gen Fonksiyonu Öğrenmenin İlköğretim Nöronal Kültür takip

doi: 10.3791/2103 Published: October 8, 2010

Summary

Utero elektroporasyon nöronal progenitör hücrelerinin in vivo transfecting için değerli bir yöntemdir. Elektrotlar ve elektroporasyon gelişimsel timepoint yerleştirme bağlı kortikal hücrelerin bazı altkümelerini hedeflenebilir. Hedeflenen hücreler daha sonra in vivo veya in vitro genetik değişiminin etkileri analiz edilebilir.

Abstract

Primer nöronal kültürlerin in vitro çalışmada, kantitatif analizler için neurite akıbet sağlar . Genetik değişiklikler nöronal sürecin sonucudur, shRNA veya cDNA yapıları kimyasal transfeksiyon veya viral transdüksiyon yoluyla birincil nöron içine sokulabilir nasıl etkilediğini araştırmak için. Ancak, birincil kortikal hücreler ile, hücre tipleri (farklı katmanları, inhibitör nöronlar, glial hücreler glutamaterjik nöronlar) heterojen bir havuz, bu yöntemleri kullanarak transfekte vardır. Utero elektroporasyon embriyonik kemirgen korteks DNA yapıları tanıtmak için kullanılması hedeflenen hücreleri belirli altkümelerini sağlar: elektroporasyon korteksin erken embriyonik korteks hedefleri derin katmanları, geç embriyonik timepoints az elektroporasyon daha yüzeysel katmanları hedefleri. Ayrıca, dorsal karşı ventral-lateral medial korteks bölgelerinin hedef bireysel embriyolar sonuçları başkanları arasında elektrot diferansiyel yerleştirme. Elektroporasyon ardından, transfekte hücreler, disseke ayrışmış, ve neurite akıbet kantitatif analiz için in vitro kaplı olabilir. Burada, kortikal hücrelerin altkümelerini nöronal sürecin sonucudur kantitatif ölçmek için bir adım-adım yöntemi sağlar.

Utero elektroporasyon protokolün temel Kriegstein laboratuar 1, 2, diğer iki vallahi makalelerde detaylı olarak tarif edilmiştir . Biz en önemli ayrıntıları odaklanarak nöronal sürecin sonucudur gen fonksiyonu çalışmaya utero elektroporasyon geçerlidir protokolün bir açıklama ile takip utero elektroporasyon için protokol genel bir bakış, sağlayacaktır.

Protocol

Utero elektroporasyon protokolün temel Kriegstein laboratuar 1, 2 vallahi başka bir makalede ayrıntılı olarak tarif edilmiştir. Bu teknik ilk Osumi laboratuar 3 açıklanan ve bizim protokol LoTurco laboratuar 4 geliştirilen bir dayanmaktadır. Biz protokol nöronal sürecin sonucudur gen fonksiyonu çalışma utero elektroporasyon geçerli olduğu bir açıklama ile takip en önemli ayrıntıları odaklanarak sıçan embriyoların utero elektroporasyon için protokol genel bir bakış, sağlayacaktır.

1 utero Elektroporasyon

  1. DNA ve yükleme iğneler hazırlanması
    Utero electroporations için ilk adım, DNA enjekte etmek istediğiniz yapıları belirlemek için denemenizi tasarlamak için . Bu yöntem hem misexpressing veya ilgi genleri aşağı vurma için yararlıdır. Misexpressing veya eksprese eden bir gen planlıyorsanız, nöronal prekürsör hücrelerinin aktif bir yararlanıcı kullandığınızdan emin olun. Biz tavuk beta-aktin organizatörü ve CMV arttırıcı 5 oluşur CAGGS organizatörü, tavsiye ederiz. Sadece küçük bir alt hücreleri utero elektroporasyon kullanarak transfekte yılından bu yana başarıyla electroporated bu hücrelerin takip edebilir, böylece bu gibi GFP olarak plazmid floresan protein kodlama için kritik öneme sahiptir. Plazmid kodlama GFP için, biz mikrolitrelik başına 0.5 mikrogram konsantrasyonda DNA hazırlanması önerilir. ShRNA yapıları için, biz verimli olarak mcL sonuçlar başına 0.5-1.0 mg ilgi gen yıkmak bulduk. Aşırı ekspresyonu veya misexpression için, genin boyutu ve deney için çağırdığı ifade düzeyine bağlı olarak, mikrolitrelik ortalama 1.0 ve 3.0 mikrogram arasında kullanılacak. DNA'lar bir Qiagen endotoksin ücretsiz hazırlık kiti kullanılarak hazırlanan ve 1 x PBS içinde seyreltilir. Biz, bu nedenle, enjeksiyon için 10 mcL DNA karışımı hazırlar hayvanların çöp embriyonik beyin başına yaklaşık 0.5-1.0 mcL enjekte. Enjekte edilen DNA takip böylece DNA Fast Green 1 mcL ekleyin.
    Doğru şekli iğneler çekilmesi önemli bir adım. Walantus ve ark. DNA sağlamak için farklı bir sistem kullanır ve böylece iğne hazırlık sonra bizim 1,2 slighly farklı. Iğne çekmek için kullandığınız ayarları, sizin sahip olduğunuz iğne çektirmenin marka bağlıdır. Biz David Kopf Model 750 kullanın. Kullandığımız ayarları: Isı 1: 9.0, Isı 2: 0, solenoid: 0, Filament boyutu 3.0 mm, Isıtıcı Yakınlık: 3 mm, Süre: 10 sn. Bir kez çekti, biz, ucu açılması büyük bir bölümü mesafenin 11 mm olduğu gibi ~ 45 derecelik açı bir jilet ile iğne kesti. Daha sonra iğne arka uç DNA yükleyin. Daha sonra mısır yağı ile iğne kalan boşluğu doldurmak. DNA enjeksiyon için, biz bir Picospritzer III kullanın. Her iğne için kesilir tam konik bağlı olarak, 4.0 'dan 6.0' a Picospritzer ayarlayın. Biz iğne DNA dışarı attıktan basınçlı hava sağlamak için bir ayak pedalı kullanır.
  2. Ameliyat için hayvanların hazırlanması
    Biz sadece bu ameliyatlar için patojen free Sprague Dawley rat kullanın. Birkaç diğer laboratuvarları genotipleri de değişen fareler kullanın. Burada, biz E15 sıçan embriyoların elektroporasyon için protokol göstermek ancak in utero elektroporasyon E13 ve E18 yaşları arasında sıçan rutin olarak yapılır açıklanmaktadır. Erken evre elektroporasyon korteksin derin katmanları hedefleri olsa da, sonraki aşamada electroporations daha yüzeysel katmanları hedefliyoruz.
    Ameliyat başlamadan önce Hayvanlar buprenorfin bir ameliyat öncesi doz (0.05-0.1 mg / kg) verilmiştir. Hayvan anestezi için birden fazla seçenek vardır. Rutin intraperitoneal ketamin (40-80 mg / kg) ve xylazine (5-10 mg / kg) 1,2 Walantus ve ark. Isofuorane inhalasyon kullanır. Hayvanlar tamamen anestezisiz ve tepkisiz olmasını sağlamak için her zaman bir ayak tutam yapılmalıdır. Hayvanlar cerrahi işlem boyunca ısıtmalı pad üzerinde tutulur.
    Hayvan kürk kesi bölgesi traş ve iyot ile üç kez izledi etanol ile üç defa yıkanır. Kas bir kesi ile, orta hatta sadece yanal deride bir kesi yapılır. Rahim boynuzları çok dikkatli bir şekilde maruz kalmaktadır. Bunlar, parmaklarınızı kullanarak vücut boşluğuna hafifçe dışarı alay vardır. Dışarıdan vücut boşluğunda ise embriyolar steril PBS ile sulu tutun.
  3. DNA enjekte ve elektroporasyon
    Bu cerrahisine ilk başladığınızda, en zor kısmı lateral ventriküller doldurmak böylece DNA enjekte gereken yere tanıdık olma, ve doğru bölgeyi vurmak için iğne enjekte etmek için ne kadar derin alışmak. Ident böylece Embriyolar hafifçe parmak uçlarınızla manipülenerede baş gösteren rakamları ve yakından bakarsanız, orta hat dikiş görmek mümkün olacak. Bu lateral ventrikül nerede olduğunu belirlemek için kullanabileceğiniz genel bir dönüm noktası olarak hizmet vermektedir. Biz rahim duvarı ve lateral ventrikül içine DNA enjekte edilir. Lateral ventrikül DNA / boya karışımı ile doludur kadar DNA birden fazla bakliyat yapılır - DNA enjeksiyon kontrol etmek için bir footpedal kullanın. Daha sonra embriyo kafasının iki tarafında kürek elektrotlar ve embriyo baş arasında nabız sunmak için başka bir footpedal kullanın. Elektrot yerleştirme korteksin hangi bölgede electroporated belirlenmesinde kritik önem taşımaktadır. DNA negatif yüklü olduğundan, DNA bir ücret kürekler boyunca ortadan pozitif elektrot doğru gidecek. Elektrotları tam yerleştirme bağlı olarak, hücrelerin farklı alt hedef olacaktır. Biz, beyin üzerinde dorsal medial pozisyonları yakın pozitif elektrot rutin olarak yerleştirin. Ancak, LoTurco laboratuar güzel, beyin daha fazla ventral lateral bölgelerde elektrotlar koyarsanız lateral kortikal akışı 6 kortikal-striatal sınır ve hit hücrelerinin hücreleri hedef olduğunu gösterdi. Her embriyo electroporated olabilir ve DNA yapıları farklı kombinasyonlar, her embriyo kullanılabilir.
  4. Sütür ve post-operatif bakım
    Elektroporasyon ardından tüm embriyoların rahim boynuzları dikkatli bir şekilde vücut boşluğunda iade edilir ve kas tabakası ve cilt dikilir. Bu teknik, Walantus et al 1,2 ana hatlarıyla . Anestezi kurtarmak kadar Hayvanlar sürekli olarak izlenir ve analjezik buprenorfin (0.05-0.1 mg / kg) her 8-12 saatte bir uygulanır.

2. Kültürleme Electroporated Kortikal nöronlar

  1. Electroporated beyinleri Hasat ve electroporated bölge diseksiyon
    Utero elektroporasyon aşağıdaki in vivo analizleri için, hayvanlar yetişkinlik doğum sonrası erken elektroporasyon aşağıdaki 24 saat herhangi bir zaman noktasında hasat edilebilir. Ancak, kültür birincil nöronlar E16 az elektroporasyon takip eden 24 saat hasat. Şu anda, electroporated embriyolar GFP saptanabilir düzeylerde ifade edilmektedir.
    Hayvanlar karbondioksit inhalasyon ve hızlı dekapitasyon kullanılarak ötenazi. Rahim Embriyolar disseke ve kalsiyum katyonları ile HBSS yerleştirilen embriyoların hangi DNA plazmid electroporated izlerini tutmak. Bu süzülmüş HBSS, steril tüpler ve levhaları ve diseksiyon için otoklavlanmış araçlar kullanmak için kritik öneme sahiptir. Korteks disseke ve meninksler bir başlık bir mikroskop kullanılarak kaldırıldı. Bu korteks sonra GFP görselleştirmek için kapasiteye sahip bir diseksiyon mikroskop altında görülmektedir. Korteksin GFP pozitif bölgeleri tespit ve ue korteks GFP pozitif bölgelerde kesip Vanna makası, bir çift vardır. Bu parçalar, 15 ml konik bir tüp içinde kalsiyum katyonları olmadan HBSS yerleştirilir.
  2. Nöronlar Dissociating ve kaplama
    HBSS tüm GFP pozitif bölgelerde disseke sonra,% 0.25 tripsin ile değiştirilir ve 5 dakika boyunca 37 derece inkübe edilir. Tripsin, kaldırılır kaplama ortam (DMEM +% 5 FBS + Penn / strep + glutamin), ve hücreleri ayırmak triturated 5-7 kez değiştirilmelidir. Kullanılan Hacimler miktar doku mevcut üzerine bağlıdır. Disosiye hücreler daha sonra CC2 kaplı odasına slaytlar kaplanmıştır. Kaplama medya 1.5 mL hacmi iki oda slaytlar için, plaka odasına ortalama 200,000-350,000 hücreleri. 4 saat sonra, kaplama medya aspire edilir ve odasına Nöronal başına 1.5 ml kültür ortamı (Neurobasal medya + B27 takviyesi + glutamax + gentamisin) ile değiştirilir.

3. Nöronal Süreç Analizi akıbet

  1. Tespit ve immün kültürlerin
    Bu hücrelerin genetik manipülasyon kısa vadeli effecs ölçmek için, biz, üç gün sonra in vitro birincil nöronlar hasat . Birincil nöronlar ilave analizler için uzun kültür, medya yarısı her üç günde bir değiştirilmesi gerekmektedir. Kültürleri tespit odalarından medya aspirat ve 15 dakika için% 4 paraformaldhyde nöronlar düzeltmek. Ardından fiksasyon, hücreler PBS içinde iki kez yıkanır ve sonra engelleme solüsyonu (% 2 eşek serum% 0,1 Triton PBS X-100) bir saat koymak Hücreler daha sonra 1 saat süreyle primer antikor inkübe edilir. Nöronal sürecin sonucudur analizler için, nöronlar tanımlamak için anti-beta tubululin antikor - beta II tubulin immün neruonal hücre gövdesi, dendritler ve aksonlar etiketler. Hücreler daha sonra beş dakika süreyle PBS içinde üç defa yıkanır, sonra, DAPI çekirdekleri counterstaining ve montaj üç PBS yıkar takip, Cy3-anti fare 1 saat süreyle inkübe.
  2. Ölçme neurite uzunluk
    GFP pozitif, beta-III tubulin pozitif nöronların Görüntüler Zeiss Axioskop MC100 kamera sistemi ile elde edilir. Birçok değişken neurites, dallanma, tüm neurites uzunluğu, en uzun neurite süresi de dahil olmak üzere bu GFP pozitif hücrelerin kontrol edilebilir, hücre soma boyutu, vb Biz yıkmak veya genlerin aşırı ekspresyonu üzerine nöronal bir süreci akıbet analiz etmek için bu yöntemi kullandık nöronal sürecinin uzunluğu odaklanarak, nörogelişimsel ve nörodejenerasyon ile ilgili. Nöronal süreçlerin sonucudur ölçmek için, biz Axiovision LE 4.4 yazılımı (Zeiss) kullanın. Bu yazılım kapsamında, "taslak" aracı seçmek için bir seçenek yoktur. Bu aracı kullanarak, her bir nöron sürecinin uzunluğu izlemek için bilgisayarınızın fareyi kullanabilirsiniz. Bu sizin neurites doğru bir önlem almak için kullanmakta olduğunuz amacı tanımlamak için kritik öneme sahiptir. Bu analizler için, genellikle bir 20x objektif kullanın.

4. Temsilcisi Sonuçlar

Sprague Dawley çöp büyüklüğü 6 ve 14 embriyolar arasında değişmektedir bulduk. Biz genellikle tüm embriyoların electroporate. Her embriyo DNA'ların farklı bir kombinasyonu ile electroporated olabilir. Ancak, genellikle, dissociating ve kaplama önce aynı durum ve havuz bu beyinleri en az dört beyinleri electroporate.

Biz bu tekniği ile yaklaşık% 75 electroporated beyinleri dorsal medial veya ventral lateral korteks (Şekil 1) olsun, korteks istenen bölgeye yönelik olduğunu bulduk. Buna ek olarak, E13-14 hedef Tbr1 olumlu katmanı VI nöronlar gibi derin katman nöronların erken electroporations bulundu, bir süre sonra electroporations pozitif hedef CTIP2, TBR1 negatif tabaka V hücreleri, ve hala daha sonra electroporations hedef Brn2 olumlu layer II / III hücreleri. Kortekste nöronal alt tipi özellikleri farklı belirleyicileri ve açıklama mükemmel bir açıklaması, Moleneaux ve ark 7 bir makale bulundu . Şekil 2'de, 15.5 veya 17.5 embriyonik gün ya electroporated ve postnatal 5. günde hasat beyinleri koronal bölümleri gösterir. Oct6 için immün kırmızı ile gösterilir. Hedef hücre tabakası popülasyonları onaylamak için kültür belirteçleri immunostain. Biz aynı çöp her embriyo hücrelerinin aynı hücre tabakası nüfusu hedef bekleyebilirsiniz bulduk (diğer bir deyişle, daha sonra diğer teknik varyasyonlar yerine embriyonik timepoint hedefleme bağlıdır).

Kültür, pozitif GFP hücrelerinin yüzde yaygın GFP pozitif bölgesi (Şekil 3) dışarı Anatomi zaman ne kadar muhafazakar bağlı olarak değişebilir. Ancak, biz çok muhafazakâr ve hücrelerin sadece GFP pozitif yama, en yüksek oranda% 5-10 uymalarını teşrih bile electroporated korteks bölge diseksiyon olmasına rağmen, sadece tek bir katman hücre hedeflenmelidir. Bu düşük transfeksiyon effciency süreçleri analiz olduğunu electoporated hücreye ait olan belirlenmesinde yardımcı olur. Kaplama hücreleri bu yüksek yoğunlukta heathier kültürlerin katkıda bulunan, ancak, süreç ait olduğunu ayırt etmek zordur GFP negatif hücreler (Şekil 3) hücre gövdesi.

Electroporated hücrelerin ince süreçlerin görülmeye sorun varsa, (Invitrogen gelen ya GFP ifade artırmak için electroporating GFP DNA konsantrasyonu artırabilir, ya da bir anti-GFP antikor kullanarak ayrışmış hücreleri immunostain ) Cy2 ikincil antikor ile birlikte.

Şekil 1
Şekil 1 E15.5 Sprague-Dawley rat plazmid GFP ile electroporated ve üç gün sonra hasat edildi. Elektrot yerleştirme dayanarak, korteksin farklı bölgelerinde hedefleniyor. AF show GFP floresan bütün beyinlerinde.

Şekil 2
Şekil 2. E15.5 (A) veya E17.5 (B) Sprague-Dawley sıçan GFP postnatal 5. günde plazmid ve hasat ile electroporated edildi. Brain kesitli, koronal bir vibratome (100 mikron bölümleri) kullanarak sabit ve Oct6 (kırmızı) ile immunohistokimyasal edildi. A ve B ile immunohistokimyasal bölümden konfokal görüntüleri göstermektedir.

Şekil 3
Şekil 3 E15.5 Sprague-Dawley sıçan plazmid GFP ile electroporated. Elektroporasyon takiben 24 saat, beyin hasat ve GFP-pozitif, electroporated bölgelerinde video açıklandığı gibi, disseke ve ayrışmış edildi. In vitro olarak 3 gün sonra, hücreler sabit ve immunohistokimyasal BIII-tubulin (kırmızı) ve çekirdekleri DAPI (mavi) (A, C) ile boyama. Uzun neurite uzunluğu Axiovision yazılımı kullanılarak ölçüldü(B, D).

Discussion

Primer nöronal kültürlerin in vitro çalışmada neurite akıbet kantitatif analizler için izin verir . Genetik değişiklikler nöronal sürecin sonucudur nasıl etkilediğini araştırmak için, shRNA ya da misexpression yapıları kimyasal transfeksiyon veya viral transdüksiyon yoluyla birincil nöron içine sokulabilir. Ancak, birincil kortikal hücreler ile, hücre tipleri (farklı katmanları, inhibitör nöronlar, glial hücreler glutamaterjik nöronlar) heterojen bir havuz, bu yöntemleri kullanarak transfekte vardır. Utero elektroporasyon embriyonik kemirgen korteks DNA yapıları tanıtmak için kullanılması hedeflenen hücreleri belirli altkümelerini sağlar: elektroporasyon korteksin erken embriyonik korteks hedefleri derin katmanları, geç embriyonik timepoints az elektroporasyon daha yüzeysel katmanları hedefleri. Ayrıca, dorsal karşı ventral-lateral medial korteks bölgelerinin hedef bireysel embriyolar sonuçları başkanları arasında elektrot diferansiyel yerleştirme.

Belirli katmanlarına Hedefleme:

Lateral ventrikül içine DNA enjekte electroporate zaman, hemen yan venrtricle astar hücreleri hedef: bu hücreler radyal glial progenitör neokorteksin hücreleri yanı sıra sadece kendi terminali mitoz geçiren hücreler. İlginçtir ki, elektroporasyon şu günlerde incelendiğinde, hedef hücreleri birthdated hücrelerinin desenle eşleşen. Diğer bir deyişle, electropoartion gün terminal mitoz geçiren bu demek doğarlar hücreler, hedeflenen hücreler. Radyal glial hücreler de ventrikül yüzeyinde mevcut olduğundan, bir bu hücrelerin hedef olacağı varsayımında olabilir ve bu hücrelerden döl de hedef olacağını. Ancak, bu durum böyle değil, daha sonra hücrelerin nesiller GFP ifade yoktur. Radyal glial hücrelerin bölünme birden fazla tur plazmid dışarı sulandırır olabilir.

Uygulamalar:

Bu yöntem, genin etkilerini shRNA contructs elektroporasyon yoluyla yıkmak yanı sıra cDNA yapıları misexpression tarafından incelemek için mükemmel bir yoldur. Biz bu techniqe nörodejenerasyon ve psikiyatrik hastalıklar yer alan genlerin çalışma uygulamaktayız. Bu teknik sayesinde, vahşi tip ve bu hastalıkların kritik genlerin mutant formları tanıtmak ve nöron morfolojisi üzerindeki etkilerini incelemek. Buna ek olarak, cDNA ve shRNA contruct eş-electroporating endojen gen ürünü yokluğunda mutasyon ya da alternatif splice varyantı ifade etkilerini incelemek. Birden fazla genin aşağı vurma ve diğer gen ürünleri 8, 9, tek bir gen ürünü yıkmak etkileri kurtarmaya çalışırken: Co-electorporation iki gen ürünleri arasında genetik etkileşimler bakmak için kullanılmaktadır olabilir.

Disclosures

Çıkar çatışması ilan etti.

Acknowledgments

Yazarlar, yararlı tartışmalar için bu tekniği Joseph LoTurco ve Dennis Selkoe teşekkür etmek istiyorum. Yazarlar, bu araştırma desteği için, Amerikan Sağlık Yardım Vakfı bağışçılar teşekkür ederim.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
10X Hanks’ Balanced Salt Solution (HBSS) (Ca+2 /Mg +2 free) GIBCO, by Life Technologies 14185-052
10X Hanks’ Balanced Salt Solution (HBSS) (with Ca+2 /Mg +2 ) GIBCO, by Life Technologies 14065-056
1M HEPES pH 7.4 GIBCO, by Life Technologies 15630-080
100 x 15 mm Petri Dishes Fisher Scientific 08-757-12
60 x 15 mm Petri Dishes BD Biosciences 351007
15 mL conical vial Sarstedt Ltd 62-547-205
50 mL conical vial Sarstedt Ltd 62-554-205
Scissors Fine Science Tools 91402-12
Standard Forceps Fine Science Tools 11000-12
Curved Forceps Fine Science Tools 11273-20
Fine Forceps Fine Science Tools 11255-20
Vannas spring scissors Fine Science Tools 15000-00
.25% Trypsin-EDTA GIBCO, by Life Technologies 25200
Reichert Bright-Line Hemacytometer Hausser Scientific 1490
Hand-Held Tally Counter Sigma-Aldrich Z169021
Dulbecco’s Modified Eagle Medium (D-MEM) GIBCO, by Life Technologies 11960-051
Fetal Bovine Serum Sigma-Aldrich F4135
Penicillin-Streptomycin GIBCO, by Life Technologies 15140
L-glutamine GIBCO, by Life Technologies 25030
NEUROBASAL Medium GIBCO, by Life Technologies 21103-049
B-27 Serum-Free Supplement GIBCO, by Life Technologies 17504-044
GlutaMAX -I Supplement GIBCO, by Life Technologies 35050-061
Gentamicin Reagent Solution GIBCO, by Life Technologies 15750-060
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich P6148
Phosphate Buffered Saline Sigma-Aldrich P4417
Triton X-100 Sigma-Aldrich T9284
Donkey Serum Jackson ImmunoResearch 017-000-121
beta-III tubulin antibody Chemicon International MAB1637
MAP2 antibody Chemicon International AB15452
Donkey Cy3 anti-mouse Jackson ImmunoResearch 715-166-151
Donkey Cy2 anti-chicken Jackson ImmunoResearch 703-226-155
DAPI GIBCO, by Life Technologies D3571
CC2 Coated Two-Chamber Slides Lab-Tek 154852
Fluorescent Mounting Media KPL Inc 71-00-16
24 x 60 mm Micro Cover Glasses VWR international 48393-106
Clear nail polish Electron Microscopy Sciences 72180
Ketamine Henry Schein 995-2949
Xylazine Henry Schein 4015809TV
buprenorphine Henry Schein 1118217
Picospritzer III Parker Hannifin Corporation
BTX square wave electroporator Fisher Scientific BTXECM830
Tweezertrodes, 7 mm, platinum Harvard Apparatus 450488

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Walantus, W., Castaneda, D., Elias, L., Kriegstein, A. In utero intraventricular injection and electroporation of E15 mouse embryos. J Vis Exp. (2007).
  2. Walantus, W., Elias, L., Kriegstein, A. In utero intraventricular injection and electroporation of E16 rat embryos. J Vis Exp. (2007).
  3. Takahashi, M., Sato, K., Nomura, T., Osumi, N. Manipulating gene expressions by electroporation in the developing brain of mammalian embryos. Differentiation. 70, (4-5), 155-1562 (2002).
  4. Bai, J., Ramos, R. L., Ackman, J. B., Thomas, A. M., Lee, R. V., LoTurco, J. J. RNAi reveals doublecortin is required for radial migration in rat neocortex. Nat Neurosci. 1277-1283 (2003).
  5. Okada, A., Lansford, R., Weimann, J. M., Fraser, S. E., McConnell, S. K. Imaging cells in the developing nervous system with retrovirus expressing modified green fluorescent protein. Exp Neurol. 156, (2), 394-406 (1999).
  6. Bai, J., Ramos, R. L., Paramasivam, M., Siddiqi, F., Ackman, J. B., LoTurco, J. J. The role of DCX and LIS1 in migration through the lateral cortical stream of developing forebrain. Dev Neurosci. 144-156 (2008).
  7. Molyneaux, B. J., Arlotta, P., Menezes, J. R., Macklis, J. D. Neuronal subtype specification in the cerebral cortex. Nat Rev Neurosci. 427-437 (2007).
  8. Young-Pearse, T. L., Bai, J., Chang, R., Zheng, J. B., Loturco, J. J., Selkoe, D. J. A Critical Function for -Amyloid Precursor Protein in Neuronal Migration Revealed by In Utero RNA Interference. J Neurosci. 27, 14459-14469 (2007).
  9. Young-Pearse, T. L., Chen, A. C., Chang, R., Marquez, C., Selkoe, D. J. Secreted APP regulates the function of full-length APP in neurite outgrowth through interaction with integrin beta1. Neural Develop. 3, 15-15 (2008).
<em>In utero</em> Elektroporasyon Kortikal nöronlar Altküme Gen Fonksiyonu Öğrenmenin İlköğretim Nöronal Kültür takip
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Rice, H., Suth, S., Cavanaugh, W., Bai, J., Young-Pearse, T. L. In utero Electroporation followed by Primary Neuronal Culture for Studying Gene Function in Subset of Cortical Neurons. J. Vis. Exp. (44), e2103, doi:10.3791/2103 (2010).More

Rice, H., Suth, S., Cavanaugh, W., Bai, J., Young-Pearse, T. L. In utero Electroporation followed by Primary Neuronal Culture for Studying Gene Function in Subset of Cortical Neurons. J. Vis. Exp. (44), e2103, doi:10.3791/2103 (2010).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
simple hit counter