Summary
Detta manuskript visar och diskuterar tekniker som används för undersökning av bekämpningsmedel känslighet och upptäcka resistens mot kontakt och systemiska bekämpningsmedel i leddjur skadedjur.
Abstract
Pest resistens mot bekämpningsmedel är ett växande problem eftersom bekämpningsmedel är en integrerad del av högavkastande produktion jordbruk. När fåtal produkter är märkta för en enskild skadedjur inom en viss gröda system, är kemisk bekämpning alternativen begränsade. Därför är samma produkt (er) används upprepat och kontinuerligt selektionstryck läggs vid målet skadedjur. Det finns både ekonomiska och miljömässiga kostnader i samband med utvecklingen av resistenta populationer. Kostnaden för bekämpningsmedel motstånd har uppskattats till cirka $ 1500000000 årligen i USA. Detta dokument beskriver protokoll som för närvarande används för att övervaka leddjur (speciellt insekter) populationer för utveckling av resistens. Den vuxna flaskan test används för att mäta toxicitet för att kontakta insektsmedel och en ändring av detta test används för växt-systemiska insekticider. I dessa biologiska testsystem, är insekter utsätts för teknisk kvalitet insektsmedel och svar (mortalitet) som noterats vid en viss post-exponering intervall. Dödligheten uppgifter utsätts för logganalys Dos probit att generera uppskattningar av en dödlig koncentration som ger dödligheten till 50% (LC 50) av målgrupper och en serie av konfidensintervall (CL: s) som uppskattningar av data variabilitet. När dessa uppgifter samlas in för en rad insektsmedel-känsliga populationer kan LC 50 användas som basdata för framtida övervakning. Efter befolkning har utsatts för produkter, kan resultaten jämföras med en tidigare fastställd LC 50 med samma metod.
Protocol
1. Inledning
Livsmedelsproduktionen har blivit av yttersta vikt med insikten att år 2025 kommer världen att nå en befolkning för 8.04 miljarder människor 1. Det kommer att vara att leverera en större mängd mat grödor än idag produceras. Tillräcklig tillgång på foder kommer inte att kunna utan användning av växtskyddsmedel som bekämpningsmedel för att öka mängden skördar och upprätthålla kvaliteten. Baserat på historiska och nuvarande beroendet av bekämpningsmedel, kommer förekomster av bekämpningsmedel motståndet fortsätter att inträffa och rapporteras i den vetenskapliga litteraturen.
Pest resistens mot bekämpningsmedel är problematiskt eftersom produkterna är en integrerad del av högavkastande och hög kvalitet produktion jordbruk. Däremot kan överanvändning och / eller missbruk av ett bekämpningsmedel leder till utveckling av resistens som kan vara skadliga för växtodling. Skadedjur (dvs insekter, ogräs, patogener, etc.) utveckla resistens med olika mekanismer, men en viktig drivande faktor för utveckling av resistens är bristen på registrerade bekämpningsmedel 1 med oberoende verkningsmekanismer tillgängliga för användning. När fåtal produkter är märkta för en enskild skadedjur inom en viss gröda system, är kemisk bekämpning alternativen begränsade. Därför är samma kemiska (s) används upprepat och kontinuerligt selektionstryck är placerad på skadedjur. Detta problem förvärras när skadedjur har flera generationer under ett enskilt år och varje generation utsätts för bekämpningsmedel.
Det finns både ekonomiska och enrivornmental kostnader i samband med Resistance 2. Pest motstånd leder till högre priser och mer frekventa tillämpningar av bekämpningsmedel krävs för att uppnå tillfredsställande kontroll. Skördeförluster kan förekomma även efter att öka användningen av bekämpningsmedel på grund av underlåtenhet att kontrollera målet skadedjur. Pimentel 2 uppskattningar av dessa kostnader av bekämpningsmedel motstånd i Förenta Staterna till cirka $ 1500000000 årligen.
Undersökningar av bekämpningsmedel känslighet hos skadegörare är en proaktiv strategi för att upptäcka eventuella skifte i insektsmedel prestanda och ge en tidig varning för att ändra strategier för kemisk bekämpning. Genom att ändra övergripande IPM strategier kan lönsamheten för en given bekämpningsmedel utökas, vilket i sin tur är viktigt för jordbruket att fortsätta att tillhandahålla tillräckligt med mat och fiber för världen. Denna uppsats kommer att beskriva ett protokoll som kan användas för att övervaka insektsmedel känslighet och upptäcka utveckling av insektsmedel resistenta populationer med hjälp av den vuxna flaskan Test 3 för kontakt insektsmedel och en ändring av detta test för växt systemiska insekticider 4.
2. Metoder
2,1 Säkerhetsdeklaration
Använda lämpliga säkerhetsåtgärder är viktigt när det handlar om insektsmedel. Konsultera varuinformationsbladet (MSDS) för lämplig personlig skyddsutrustning (PPE) innan du hanterar bekämpningsmedel. Särskild laborationer om hantering av bekämpningsmedel i laboratorier bör krävas av personal innan du börjar biologiska testsystem.
2.2 Ringa stamlösning
Utveckla en stamlösning av en känd koncentration från en källa av insektsmedel aktiva substansen (AI). Alla önskade koncentrationer ingår som behandling i det biologiska testet kommer att göras från den ursprungliga stamlösning. För intresse av detta papper, 100 ml av en 100 mikrogram / ml kommer att utvecklas som en stamlösning, men kan någon koncentration spädas från denna första koncentration. Justera mängden teknisk kvalitet AI som ska vägas baseras på procent renhet.
Belopp som skall vägas = (volym att göra) X ([# mikrogram / ml] / [% purity/100])
Till exempel skulle det kräva 10152.284 mikrogram av tekniska AI att göra 100 ml av en 100 mikrogram / ml lösning av en teknisk kvalitet insektsmedel på 98,5% renhet:
(100 ml) X ([100μg/ml] / 0,985) = 10152,284 mikrogram
2.2.1 Vuxna Injektionsflaska test för Kontakt Insekts
Delvis fylla en mätkolv med aceton och väga den justerade mängden insektsmedel AI. Skölj vikten båten med aceton i kolven att ta bort alla insektsmedel från de väger båten. Fyll mätkolven till graderingen linje med aceton. De flesta lösningar som hölls i kylda förhållanden kommer att upprätthålla verksamhet utan märkbar förlust av effekt för cirka en månad.
2.2.2 Ändring av vuxna Injektionsflaska test för systemiska insekticider
Förgiftning av insekter med systemiska insekticider är tydligt skiljer sig från kontakt med produkterna. Systemisk produkter vanligtvis måste förtäras av insekten att bli aktiva i stället för den insekt som har direkt exposure produkten som med kontakt insektsmedel. Därför var den vuxna flaskan testet ändras så att för systemiskt insektsmedel som ska testas. Vikten av AI som behövs för stamlösning beräknas liknar den som nämns i avsnitt 2.2. Den metod som är liknande, förutom AI löses upp i en 10% av vikten honung: vattenlösning. Denna lösning bör göras inom 24 timmar efter inledande av bioassay. Om teknisk kvalitet materialet inte är vattenlösligt, kan en hög koncentration av insekticid-lösning göras med aceton så att endast en liten mängd av insektsmedel: acetonblandning läggs till honung: vatten lösning 4.
2,3 Bestämma en serie koncentrationer och utvecklingsländerna Koncentrationer
Fastställande av lämpliga koncentrationer behövs för att fastställa de olika svaren för det biologiska testet kan vara svårt. Flera replikationer kan behövas för att definiera de olika koncentrationer och detta görs genom trial and error. Dessutom kan utbudet förändras över tid om befolkningsförändringar nivåer av känslighet. Många andra faktorer bör beaktas vid upprättande av slutliga koncentrationer och innefattar: familj av insekt, klass av insektsmedel, storlek insekt, etc. Tidigare publicerade resultat från vuxna flaska tester kan hjälpa till med det första urvalet av insektsmedel koncentrationer. Biotestsystem har publicerats för: Hemiptera: Aleyrodiidae 5-6, 7 Aphididae, Pentatomidae 8-10 och Miridae 11-14, Thysanaptera: Thripidae 15, Coleoptera: Brentidae 16, 17 Curculionidae, Coccinellidae 18-19 och Cybocephalidae 19, Diptera: Culicidae 20, Lepidoptera: Tortricidae 21 och Noctuidae 3, 22-26, Hymenoptera: Braconidae 7,18, 26-27 Ichneumonidae, Aphidiidae 18, Encyrtidae 7 och Aphelinidae 18.
Halterna är gjorda baserade på "X" mikrogram / ml lösning. Men när injektionsflaskor är förberedda för vuxna flaskan testet, kommer bara 0.5ml läggas till varje flaska, och därför är koncentrationen av flaskan halv koncentrationen gjorts. När koncentrationer valt följande ekvation kan bistå vid fastställandet av lösning lagts till för att önskad koncentration.
(C1) (V1) = (C2) (V2)
Där C1 är koncentrationen av stamlösning, V1 är volymen i lager behövs för att göra den nya koncentrationen, C2 är koncentrationen förbereds, och V2 är volymen av den nya koncentrationen. Till exempel är 5mls en 100μg/ml stamlösning behövs för att göra en 100 ml av en 5μg/ml. Detta 5μg/ml lösning skulle resultera i flaskor belagda vid en koncentration av 2.5μg/vial.
5mls = [(5μg/ml) (100 ml)] / (100μg/ml)
2.3.1 Vuxna Injektionsflaska test för Kontakt Insekts
Delvis fylla volymetrisk flaks och alikvot den beräknade mängden av stamlösning krävs för att få önskad koncentration. Fyll mätkolven med aceton till graderingen linjen och gå vidare till avsnitt 2,4 eller sigill med Parafilm MSEK (Alcan Inc., Neenah, WI) för förvaring i kylskåp för senare användning. De flesta lösningar är bra för 1 månad.
2.3.2 Ändring av vuxna Injektionsflaska test för systemiska insekticider
Denna process är densamma som tidigare nämnts i 2.3.1, utom en 10% av vikten honung: vatten lösning ersätts med aceton. Blanda nog honung: vatten lösning för att göra alla önskade koncentrationer. Dessa lösningar bör användas inom 24 timmar efter beredning.
2,4 Beredning av injektionsflaskor
2.4.1 Vuxna Injektionsflaska test för Kontakt Insekts
Om koncentrationer förvaras i kylskåp, låt värmas upp till rumstemperatur. Volymen av aceton förändringar baserade på temperatur som kan påverka insektsmedel koncentration. Färgkod 20 ml glasflaskor (utrustade för skruvlock) för koncentrationer med färg eller markörer.
Ställ en repeterande pipett för att leverera 0.5ml/concentration. Initiera arbetet med aceton kontroll följer med den lägsta koncentrationen och fortsätta med stigande koncentration tills alla halter har använts. Häll ungefär halv volym lösning som det faktiska antalet injektionsflaskor som ska behandlas (dvs. 20mls för 40 flaskor) i en liten bägare. När lösningen inte används, täck över den för att minimera avdunstning som kan orsaka förändringar i koncentration. Rita insektsmedel lösningen i att upprepa pipett och fördela 0,5 ml lösning i enskilda glasflaskor.
Omedelbart efter behandlingen, är glasflaskor placeras på en kommersiell varmkorv rulle. Som rullar sin tur glasflaskor rotera och aceton avdunstar och lämnar insidan av flaskan belagda med teknisk kvalitet insektsmedel. Värme kan degrade insektsmedel, och därför är det viktigt att värmen ska bort. Detta kan ske antingen genom att koppla bort värmeelementet på en modell som värmer och rullar samtidigt och styrs av samma switch eller genom att använda en modell av varmkorv rulle som självständigt har fungerande växlar för värmeelement och rullar. Undvik att behandla fler flaskor än rullen håller, aceton kan avdunsta innan glasflaskor roteras och de kan inte få en jämn beläggning på flaskans väggar.
Låt flaskorna för att rotera tills all aceton har avdunstat. Det kanske ett fint lager av aceton-kondens på flaskan väggar, varför flaskor måste undersökas individuellt. Tid som behövs för att rulla flaskor varierar baserat på laboratorieförhållanden. När flaskorna är torra, mössa och lagra dem antingen kyld eller mörka förhållanden. Insekter har observerats vilar på lock med konisk liners eller trasiga liners folie som hänger under läppen i flaskan (dvs undvika behandlade ytor), och därför är det viktigt att använda un-fodrade lock.
All överbliven lösning används för att förbereda injektionsflaskorna ska kasseras på rätt sätt. Lösningen kvar i mätkolv kan förseglas med Parafilm och förvaras i kylskåp. Datum flaskorna när de är förberedda, eftersom olika insektsmedel har olika hållbarhet. Till exempel pyretroid-belagda injektionsflaskor är bra för ungefär en månad, medan flaskor belagda med ett mer instabilt insektsmedel, som ett organiskt fosfor, har hylla livet för två veckor eller mindre.
2.4.2 Modifierad Vuxen Injektionsflaska test för systemiska insekticider
Oasis behövs för att fungera som ett substrat för leverans av insekticid lösningen på insekter 4. Klipp oasis (12mm x 12mm) bitar med en kork borr. Placera en bit oasis i glasflaskor som tidigare beskrivits. Fyll upprepa pipett justeras för att leverera 0,5 ml lösning och fördela på oasis. Denna volym av vätska bör mätta bit oasis, men bör inte överstiga den nivå av skummet i flaskan. Återigen arbetar i sekvens från kontrollen (10% av vikten honung: vattenlösning bara) och lägsta till högsta koncentrationerna.
2,5. Förvara injektionsflaskor
2.5.1 Vuxna Injektionsflaska test för Kontakt Insekts
Vid lagring insektsmedel belagda flaskor, vet egenskaper insektsmedel. Olika bekämpningsmedel har olika lagringsbehov som: pyretroider är ljuskänsliga och kan förvaras i rumstemperatur, men i mörkret, men organophosphate insektsmedel är temperaturkänsliga och måste förvaras i en frys. Om insektsmedel måste förvaras i frysen, måste de värmas upp till rumstemperatur innan exponera insekter.
2,6 Biotest
Samla insekter som ska testas. Denna process kan göras med feromon-betade fällor, nät sopa, eller varje annan form av massa fånga. Insekter bör hållas för 8-24h för att möjliggöra naturlig dödlighet att inträffa för dem som skadades under insamlingen, förse dem med mat och en vattenhalt källa under denna period. Testa 10-25 insekter per koncentration (10 minst), det större antalet testade insekter, kommer mer robust datamängden vara. När du väljer insekter för biologiska testsystem välja friska, aktiva individer och kasta slö eller onormala individer. Placera insekter i flaskorna så att de utsätts för hela skalan av koncentrationerna och inte bara en koncentration i taget. Denna procedur kommer att placera de mest friska och aktiva individer i en eller ett fåtal koncentrationer. Dessutom, om det inte är möjligt att genomföra försöket med ett minimum av 10 insekter per koncentration, exponera så många som möjligt till varje koncentration. Sedan samla in mer insekter från samma prov område inom en kort tid (två-tre veckor) och upprepa experimentet. Vissa insekter kan förlora känslighet (build motstånd) som odlingssäsongen fortskrider, och därför får svaret av individer samlas i början av våren skilja sig från de som samlats in under hösten 28.
Utveckla kriterier för att bedöma dödligheten. De vanligaste kriterier som används för att klassificera insekter som döende eller döda är en brist på samordnad rörelse. Dessa observationer kan vara en oförmåga att rätta sig om de placeras på dess rygg ytan, oförmögen att upprätthålla samordnad flygning på 1 m eller brist på koordinerad rörelse när de försiktigt petade med ett trubbigt instrument. Om individen kan rätta sig utan faller över, det finns ingen samordnad rörelse; insekten bör övervägas död. Insekten kan uppleva svårigheter rätande sig på en hal yta, och därför är det kanske nödvändigt att förse insekten en yta så att den kan få den dragkraft som krävs för att rätta sig själv. Registrera antaletöverlevande och döda individer att beräkna överlevnad för varje koncentration.
2.6.1 Vuxna Injektionsflaska test för Kontakt Insekts
Placera insekt (s) i flaskan och fäst locket löst. Locket behöver för att förhindra att insekten från att fly, men vara löst nog för att tillåta luftflöde. För de flesta insekt biologiska testsystem, är bara en insekt placeras i varje flaska, men kan små insekter, t.ex. vita flygare eller trips, exponeras i en takt av så många som 30 individer per flaska 6, 15. Placera rören upprätt i rumstemperatur tills insekter bedöms för dödligheten vid slutpunkten av det biologiska testet. Exponering gånger kan skilja sig med arter och eventuellt insektsmedel 3,5-27. I processen att etablera inledande toxicitet nivåer med en ny insekt eller kemiska, övervaka ämnen på flera schemalagda tidpunkter efter exponering. Undersökningar kan avslutas när dödligheten vid den högsta koncentrationen är 100% och samtidigt bibehålla en hög överlevnad (<10% dödlighet) i den icke-insektsmedel behandlade kontroll. Om 100% dödlighet inte uppnås med den högsta koncentrationen med hög överlevnad i den kontroll bör bioassay upprepas med ett utbud av högre koncentrationer. Helst bör dödligheten nivåerna ökar som ökar insektsmedel koncentration.
Vissa insekter, när de utsätts för 24 timmar, kräver en källa till fukt (dvs en liten bit av växtmaterial) 12. När du arbetar med en delikat insekt, är det fördelaktigt att avgöra hur länge insekten kan överleva i flaskan utan en källa till fukt innan insektsmedel exponering i vuxen flaskan testet. Denna information kan bestämmas genom att placera insekt i en flaska med och utan fukt källa och övervaka dess överlevnad över tid innan de utför själva insektsmedel undersökningar.
2.6.2 Modifierad Vuxen Injektionsflaska test för systemiska insekticider
Före inledandet av biologiska testsystem avgöra om insekten kan föda och överleva på oasis mättad med honung: vatten lösning i frånvaro av insektsmedel. Placera insekter i injektionsflaskor med oasis mättade med honung: vatten (eller honung: vatten med största mängd aceton som används vid beredning koncentrationer med icke-vattenlösliga teknisk kvalitet insektsmedel) och övervaka efterlevande i flera dagar. Denna ändring av den vuxna flaskan testet har bara undersökts med ett Miridae 4 och en Pentatomidae 29, därför att bestämma längden av testet kräver mer experimenterande än för kontakten insektsmedel bioassay. Till exempel var Lygus lineolaris (Palisot de Beauvois) utvärderas för dödligheten vid 24 timmar efter exponering för tiametoxam, men 72 timmar för imidakloprid 4. Dödligheten av Oebalus pugax F. utvärderades vid 96 timmar när de utsätts för dinotefuran 29. Därför måste insekt efterlevande under kontroll flaskor vara genomgående hög i flera dagar innan en korrekt dödlighet rating från insektsmedel ruset kan göras.
Placera insekt (er) i scintillation flaskan med mättade oasis. Istället för att försegla flaskor med lock, tätning injektionsflaskor med en bomullstuss. Placera rören upprätt i rumstemperatur tills insekter bedöms för dödlighet. Som tidigare nämnts takt dödligheten med jämna mellanrum. Examination kan avslutas när det är 100% mortalitet vid den högsta koncentrationen med hög överlevnad (<10% dödlighet) i kontrollgruppen. Det kan vara nödvändigt att undersöka ytterligare koncentrationer.
2.6.3 Dataanalys
Korrigera för dödlighet i kontrollgruppen behandling med en formel enligt Abbott 30.
Korrigerad dödlighet (%) = ((% överlevnad kontroll -% överlevnad behandlade) /% överlevnad kontroll) x 100
Analysera data med hjälp av probit Logga Dos för att bestämma dödlig koncentration som krävs för att döda 50% av en befolkning (LC 50) och skapa 95% konfidensintervall (CL). Flera program finns tillgängliga för att bestämma LC 50 (SAS: PROC probit 31, Polo-Plus 32).
3. Anteckningar
- Arbeta med aceton och insektsmedel under ett negativt flöde luft huva.
- När du fyller mätkolvar, är det bäst att ha två tvättar flaskor aceton. En sprutflaska som har anpassats för snabb leverans av vätskor och en för långsam leverans. Ta del av leveransen armen för att skapa en större öppning och den här flaskan kan användas för leverans av en stor volym snabbt. När aceton närmar sig till graderingen linjen, byta flaskor och använda tvättflaska med långsammare leverans så att du har mer kontroll över det belopp som lämnas ut. Om en kolv är fylld ovanför examen linjen, lämna av toppen och låt aceton avdunsta till graderingen linjen.
- Notera mängden neeDED av stamlösning, behövs för att förbereda en koncentration, dvs, om du fyller kolven ¾ väg, men behöver lägga 30mls, kan du gå över examen linje.
Discussion
LC 50-värdet kan användas för att etablera sig som baslinje känslighet för en målgrupp (er). Värdet av denna data kan i framtiden att övervaka undersökningar eller för den närmaste att jämföra nuvarande resultat till det av en tidigare fastställd LC 50 för att bestämma känsligheten hos målgruppen har skiftat. Faktiska LC 50-värden kan jämföras mellan populationer genom att granska 95% konfidensintervall, om den övre och undre gränserna inte överlappar varandra, är det troligt att befolkningen har upplevt en betydande förändring av känsligheten och i vissa situationer är ett tecken på motstånd 33. LC 50 S kan också användas för att undersöka säsongsmässiga förändringar i insektsmedel esusceptibilitye 28, eller jämföra svaren mellan arter eller insektsmedel AI S. Mycket arbete har även använda dessa data för att jämföra svaren mellan män och kvinnor 10 eller mellan vuxna och omogna stadier, 10,34. Ibland konfidensintervall bred eller inte kan beräknas. För att få tätare konfidensintervall genomföra bioassay med fler insekter och / eller flera koncentrationer.
Disclosures
Inga intressekonflikter deklareras.
Acknowledgments
Vi vill tacka Cotton Incorporated Program statliga stödet # 08-317MO, USDA / CSREES SR-IPM Grant 2009-34103-20018 och Landis International för att finansiera forskning som hänför sig till denna publikation.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 50-100 ml glass beaker | |||
| Volumetric flask with stoppers (can use the amber colored flasks for light sensitive pesticides such as pyrethroids) | |||
| 20ml glass scintillation vials with un-lined lids | |||
| A method for color coating vials (paint or markers) | |||
| Acetone | |||
| Commercial hotdog roller (heat element disconnected) | |||
| 2 wash bottles (one modified such that the opening is large for fast delivery of the liquid and one so that the spout opening is small for slow delivery of the liquids) | |||
| Small weigh boat (make sure all plastic materials acetone safe) | |||
| Access to a balance with 0.001g readability or a higher precision. | |||
| Parafilm M | |||
| Repeater pipettor | |||
| Appropriate tips | |||
| Glass pipettes that fit in the volumetric flask. | |||
| Hood (used to remove the acetone smell) | |||
| A place to store insecticide solutions and vials [refrigerator (solutions), dark room or freezer depending on the chemical (vials)] |
References
- Yu, S. J. The Toxicology and Biochemistry of Insecticides. , CRC Press Taylor & Francis Group. Boca Raton, Fl. (2008).
- Pimentel, D. Environmental and Economic Costs of the Application of Pesticides Primarily in the United States. Environ. Dev. Sustain. 7, 229-252 (2005).
- Plapp, F. W. Jr, McWhorter, G. M., Vance, W. H., H, W. Monitoring for pyrethroid resistance in the tobacco budworm in Texas-1986. Proceedings Beltwide Cotton Production Research Conferences. Beltwide Cotton Production Research Conferences, 5–8 January 1987, Dallas, TX, , National Cotton Council of America. Memphis, Tenn. (1987).
- Prabhaker, N., Toscano, N. C., Henneberry, T. J., Castle, S. J., Weddle, D. Assessment of two bioassay techniques for resistance monitoring of silverleaf whitefly (Homoptera: Aleyrodidae) in California. J. Econ. Entomol. 89, 805-815 (1996).
- Sivasupramaniam, S., Johnson, S., Watson, T. F., Osman, A. A., Jassim, R. A. glass-vial technique for monitoring tolerance of Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae) to selected insecticides in Arizona. J. Econ. Entomol. 90, 66-74 (1997).
- Shean, B., Cranshaw, W. S. Differential susceptibilities of green peach aphid (Homoptera: Aphididae) and two endoparasitoids (Hymenopera: Encyrtidae and Braconidae) to pesticides. J. Econ. Entomol. 84, 844-850 (1991).
- Willrich, M. M., Leonard, B. R., Cook, D. R. Laboratory and field evaluations of insecticide toxicity to stink bugs (Heteroptera Pentatomidae). J. Cotton Sci. 7, 156-163 (2003).
- Snodgrass, G. L., Adamczyk, J., Gore, J. Toxicity of insecticides in a glass-vial bioassay to adult brown, green, and southern green stink bugs (Heteroptera: Pentatomidae). J. Econ. Entomol. 98, 177-181 (2005).
- Nielsen, A. L., Shearer, P. W., Hamilton, G. C. Toxicity of insecticides to Halyomorpha halys (Hemiptera: Pentatomidae) using glass-vial bioassays. J. Econ. Entomol. 101, 1439-1442 (2008).
- Dennehy, T. J., Russell, J. S. Susceptibility of Lygus bug populations in Arizona to acephate (Orthene) and bifenthrin (Capture) with related contrasts of other insecticides. Proceedings Beltwide Cotton Conferences. Proceedings Beltwide Cotton Conferences, 9–12 January 1996, Nashville, TN, , National Cotton Council of America. Memphis, Tenn. (1996).
- Snodgrass, G. L. Glass-vial bioassay to estimate insecticide resistance in adult tarnished plant bugs. Heteroptera: Miridae). J. Econ. Entomol. 89, 1053-1059 (1996).
- Snoddgrass, G. L., Scott, W. P. A discriminating-dose bioassay for detecting pyrethroid resistance in tarnished plant bug ( Heteroptera: Miridae) populations. Southwest. Entomol. 24, 301-307 (1999).
- Lopez, J. D. Jr, Hoffman, W. C., Latheef, M. A., Fritz, B. K., Martin, D. E., Lan, Y. Adult vial bioassay of insecticidal toxicity against cotton fleahopper, Pseudatomoscelis seriatus (Hemiptera: Miridae). J. Pest. Sci.. 33, 261-265 (2008).
- Lopez, J. D. Jr, Hoffman, W. C., Latheef, M. A., Fritz, B. K., Martin, D. E., Lan, Y. Evaluation of toxicity of selected insecticides against thrips on cotton in laboratory bioassays. J. Cotton Sci. 12, 188-194 (2008).
- Smith, T. P., Hammond, A. M. Comparative susceptibility of sweetpotato weevil (Coleoptera: Brentidae) to selected insecticides. J. Econ. Entomol. 99, 2024-2029 (2006).
- Kanga, L. H. B., Wall, M. L., Plapp, F. W. Jr, Gardiner, E. M. M. Pyrethroid resistance in field-collected boll weevils from southeast Arkansas in 1994. Southwest. Entomol. 20, 247-253 (1995).
- Bayoun, I. M., Plapp, F. W. J. r, Gilstrap, F. E., Michels, G. J. Toxicity of selected insecticides to Diuraphis noxia (Homoptera: Aphidiae) and its natural enemies. J. Econ. Entomol. 88, 1177-1185 (1995).
- Smith, T. R., Cave, R. D. Pesticide susceptibility of Cybocephalus nipponoicus and Rhyzobius Iophanthae (Coleoptera Cybocephalidae, Coccinellidae). Fla. Entomol. 89, 502-507 (2006).
- Sukontason, K., Olson, J. K., Hartberg, W. K., Duhrkopf, R. E. Organophosphate and pyrethroid susceptibilities of Culex salinarius adults from Texas and New Jersey. J Am. Mosquito Contr. 14, 477-480 (1998).
- Kanga, L. H. B., Plapp, F. W. J. r, Wall, M. L., Elzen, G. W., Lopez, J. Monitoring for resistance to organophosphorus, carbamate, and pyrethroid insecticides in the oriental fruit moth (Lepidoptera: Torticidae). Canadian Entomol. , 131-441 (1999).
- Plapp, F. W., Jackman, J. A., Campanhola, C., Frisbie, R. E., Graves, J. B., Luttrell, R. G., Kitten, W. F., Wall, M. Monitoring and management of pyrethroid resistance in the tobacco budworm (Lepidoptera: Noctuidae) in Texas, Mississippi, Louisiana, Arkansas, and Oklahoma. J. Econ. Entomol. 83, 335-341 (1990).
- Mink, J. S., Boethel, D. J., Leonard, B. R. Monitoring permethrin resistance in soybean looper (Lepidoptera: Noctuidae) adults. J. Entomol. Sci. 28, 43-50 (1993).
- Cook, D. R., Leonard, B. R., Gore, J., Temple, J. H. Baseline responses of bollworm, Heliocoverpa zea (Boddie), and tobacco budworm, Heliothis virescens (F.), to indoxcarb and pyridalyl. J. Agricul. Urban Entomol. 22, 99-109 (2005).
- Temple, J. H., Pommireddy, P. L., Cook, D. R., Maçon, P., Leonard, B. R. Arthopod management: Susceptibility of selected lepidopteran to pests Rynaxypyr, a novel insecticide. J. Cotton Sci. 13, 23-31 (2009).
- Plapp, F. W., Vinson, S. B. Comparative toxicities of some insecticides to the tobacco budworm and its ichneumonid parasite, Campoletis sonorensis. Environ. Entomol. 6, 381-384 (1977).
- Xu, J., Shelton, A. M., Cheng, X. iaN. ian Variation in susceptibility of Diadegma insulare (Hymenoptera: Ichneumonidae) to permethrin. J. Econ. Entomol. 94, 541-546 (2001).
- Snodgrass, G. L., Scott, W. P. Seasonal changes in pyrethroid resistance in tarnished plant bug (Heteroptera: Miridae) populations during a three year period in the delta area of Arkansas, Louisiana and Mississippi. J. Econ. Entomol. 93, 441-446 (2000).
- Miller, A. L. E., Way, M. O., Bernhardt, J., Stout, M. J., Tindall, K. V. Multi-state resistance monitoring of rice stink bug with a new and old insecticide. Proceedings Rice Technical Working Group, February 22-25, 2010, Biloxi, MS, , (2010).
- Abbott, W. S. A method for computing the effectiveness of an insecticide. J. Econ. Entomol. 18, 265-267 (1925).
- User's Manual version 8.0. , SAS Institute. Cary, N.C. (2002).
- A user's guide to Probitor Logit analysis. , LeOra Software. Berkeley, CA. (2002).
- Preisler, H. K., Robertson, J. L. Pesticide bioassays with arthropods. , CRC Press. Boca Raton, FL. (1992).
- Hollingsworth, R. G., Steinkraus, D. C., Tugwell, N. P. Responses of Arkansas population of tarnished plant bugs (Heteroptera: Miridae) to insecticides, and tolerance differences between nymphs and adults. J. Econ. Entomol. 90, 21-26 (1997).
