Summary
זוהי הפגנה של כמה ממברנות ביולוגיות ניתן להבין באמצעות מודלים חשמל. אנחנו גם מדגימים נהלים הקלטה פוטנציאל פעולה מחוט עצב הגחון של סרטנים עבור מעבדות סטודנט חוקיים.
Abstract
זוהי הפגנה של כמה מודלים חשמלי יכול לשמש כדי לאפיין קרומים ביולוגיים. תרגיל זה גם מציג המינוח biophysical בשימוש electrophysiology. הציוד אותו הוא משמש מודל הממברנה כמו לחיות על ההכנות. כמה מאפיינים של חוט העצב מבודד נחקרות: פוטנציאל הפעולה העצבי, גיוס של נוירונים, ואת ההיענות של חוט העצב לגורמים סביבתיים.
Discussion
המטרה שלנו במצגת on-line את הווידאו הזה הנייר כדי להוכיח את מאפייני biophysical של תאים יכולים, בין השאר, להיות המודל כמו מעגלים חשמליים. בנוסף, עם רקמה עצבית לחיות כי הוא יחסית להשיג בקלות, עקרונות היסוד של מהירות ההולכה, תקופות עקשן וטכניקות הקלטה אלקטרו אפשריים עבור מעבדות סטודנט לתואר ראשון עם השקעה צנועה של ציוד. נושאים ופרדיגמות היסוד שהוצגו ניתן לשנות בקלות את הדרישות של קורסים שונים.
תחזוקה של סרטנים ושפע שלהם הופך אותם מודלים אטרקטיבי עבור ניסויים סטודנט מונחה. מיתרי סרטנאים עצב הגחון הם בדרך כלל חזקים ולשמור על שלמות פיזיולוגיים מלוחים מינימלית במשך שעות, וזה מתאים במעבדה סטודנט 3 שעות.
בהינתן כי חלק מן האקסונים גדולים VNC של סרטנים מחוברים דרך צמתים הפער, ניסויים נוספים על תרומתם ניתן לבצע ומאפיינים שונים מאשר למצוא את הכנת צפרדע רגיל עצב השת ניתן להדגים. עצב השת הוא מודל קלאסי לטיפול פעולה מתחם הפוטנציאלים ומאפיינים הולכה. זה יכול להיות גם ניסוי השוואתי מעניין לסטודנטים להשוות תכונות הולכה, גיוס האקסון, ותקופות עקשן בין שתי ההכנות.
Disclosures
אין ניגודי אינטרסים הכריז.
Acknowledgments
ניסויים אלה שונו מן ידני מעבדה, שבו נעשה שימוש בקורס, בניצוחו של ד"ר HL אטווד, במחלקה לזואולוגיה, אוניברסיטת טורונטו. תרגילים שימשו גם שונה מן מדריך זה הופק עבור "הסדנה 6 ה IBRO אינטנסיבי BASIC Neuroscience" ו נערך באוניברסיטת קוריאה, סיאול, דרום קוריאה בשנת 1993 (Cooper et al. 1993). שינויים הנוכחית נדרשו להשתמש בציוד משותף להציג יום הסטודנט במעבדות מכוונת באוניברסיטאות שונות. נתמך על ידי אוניברסיטת קנטקי, החוג לביולוגיה, משרד לימודי הסמכה ו במכללה לאמנויות ומדעים.
Materials
Circuit board |
|||
|
|||
Physiology experiments |
|||
|
References
- Bennett, M. V. L., Barrio, L. C., Bargiello, T. A., Spray, D. C., Hertzberg, E., Sdez, J. C. Gap junctions: new tools, new answers, new questions. Neuron. 6, 305-320 (1991).
- Bernardini, G., Peracchia, C., Peracchia, L. L. Reversible effects of heptanol on gap junction structure and cell-to-cell electrical coupling. European Journal of Cell Biology. 34 (2), 307-312 (1984).
- A report on the, "SIXTH INTENSIVE IBRO WORKSHOP ON BASIC NEUROSCIENCE". Cooper, R. L., Chang, J. J., Ito, M. July 1993, Seoul, South Korea, , Society for Neuroscience. 116-116 (1985).
- Cragg, B. G., Thomas, P. K. The relationship between conduction velocity and the diameter and internodal length of peripheral nerve fibers. Journal of Physiology. 136, 606-614 (1957).
- Erlanger, J. G. asser, S, H., Bishop, G. H. The compound nature of the action current of nerves as disclosed by the cathode ray oscillograph. American Journal of Physiology. 70, 624-666 (1924).
- Furshpan, E. J., Potter, D. D. Transmission at the giant motor synapses of the crayfish. Journal of Physiology. 145 (2), 289-325 (1959).
- Johnston, M. F., Simon, S. A., Ramrn, F. Interaction of anesthetics with electrical synapses. Nature (Lond). 286, 498-500 (1980).
- Loewenstein, W. R. Permeability of membrane junctions. Annual NY Academy of Sciences. 137, 441-472 (1966).
- Meda, P., Bruzzone, R., Knodel, S., Orci, L. Blockage of cell-to-cell communication within pancreatic acini is associated with increased basal release of amylase. Journal of Cell Biology. 103 (2), 475-483 (1986).
- Peracchia, C. Increase in gap junction resistance with acidification in crayfish septate axons is closely related to changes in intracellular calcium but not hydrogen ion concentration. Journal of Membrane Biology. 113 (1), 75-92 (1990).
- Peracchia, C., Dulhunty, A. F. Low resistance junctions in crayfish: structural changes with functional uncoupling. Journal of Cell Biology. 70, 419-439 (1976).
- Peracchia, C., Bernardini, G., Peracchia, L. L. Is calmodulin involved in the regulation of gap junction permeability. Pfügers Arch. 399, 152-154 (1983).
- Peracchia, C., Lazrak, A., Peracchia, L. L. Molecular models of channel interaction and gating in gap junctions. Handbook of Membrane Channels. Molecular and Cellular Physiology. Peracchia, C. , Academic Press. San Diego. 361-377 (1994).
- Spray, D. C., Harris, A. L., Bennett, M. V. L. Gap junctional conductance is a simple and sensitive function of intracellular pH. Sciences NY. 211, 712-715 (1981).
- Spray, D. C., Harris, L. L., Bennett, M. V. L. Comparison of pH and Ca dependence of gap junctional conductance. Intracellular pH: Its Measurement, Regulation, and Utilization in Cellular Functions. Nuccitelli, R., Deamer, D. , Alan R. Liss. New York. 445-461 (1982).
- Spray, D. C., White, R., De Carvalho, C., Harris, A. L., Bennett, M. L. V. Gating of gap junction channels. Journal of Biophysics. 45, 219-230 (1984).
- Watanabe, A., Grundfest, H. Impulse propagation at the septal and commissural junctions of crayfish lateral giant axons. Journal of General Physiology. 45, 267-308 (1961).
- Wiersma, C. A. G., Hughes, G. M. On the functional anatomy of neuronal units in the abdominal cord of the crayfish, Procambarus clarkii. Journal of Comparative Neurology. 116, 209-228 (1961).