Summary
Protocol
Collagenasi Preparazione
- Pesare la collagenasi in un buffer 50 isolamento ml e aggiungere per rendere la concentrazione finale, come indicato nella tabella sottostante. Sciogliere il collagenasi vortexando.
(12 + 2 topi topi topi in più = 14 x 5 ml / mouse = 70 ml di soluzione di collagenasi totale)
(70 ml x 0,5 mg / ml o 0,3 mg / ml = 35 mg o 21 mg del totale collagenasi P)Tensione Età Collagenasi P (mg / ml) Tempo (min) C3H, Balb / C, B6 > 12 settimane 0,8 17 C3H, Balb / C, B6 <= 12 settimane 0,5 13 NOD, NOR, NON > 12 settimane 0,8 17 NOD, NOR, NON <= 12 settimane 0,5 17 - Dispensare 2 ml di soluzione di collagenasi in ogni fiala di vetro e posto sul ghiaccio. Caricare ogni siringa da 5 ml con 3 ml di aghi 30g collagenasi aggiungere e mettere in ghiaccio (la preparazione in cappa).
Dilatazione
- Poco prima dissezione, sacrificio animale per dislocazione cervicale. Spruzzare tutto il corpo con il 70% dei ETOH, rendendolo completamente bagnato. Fare un V-Insision a partire dalla zona genitale. Ruotare il mouse in modo la coda è rivolto verso di voi.
- Rimuovere l'intestino verso il lato sinistro del mouse aperta. Questo esporrà il pancreas e del dotto biliare comune.
- Posizionare una pinza emostatica su entrambi i lati del piccolo-intestinale, dove il dotto biliare fognature, lasciando una piccola tasca per soluzione collagenasi entrare l'intestino.
- Gonfiare il pancreas attraverso il dotto biliare con un ago 30g e siringa da 5 ml contenente 3 ml di soluzione di collagenasi a freddo, a partire dalla cistifellea.
- Rimuovere il pancreas dal corpo e posizionarlo in un flaconcino siliconata contenente 2 ml di soluzione di collagenasi. Questo passo dovrebbe essere fatto rapidamente e in modo pulito possibile, riducendo al minimo la raccolta di grasso e tessuto connettivo.
- Posizionare il flaconcino su ghiaccio e ripetere il passo 3 con il mouse successiva.
Digestione
- Sigillare ogni fiala e collocarlo in un 37 ° C bagnomaria. Incubare per 13-17 minuti (il tempo varia con sforzo e l'età dell'animale).
- Dopo il tempo è trascorso, agitare il flacone energicamente. Il pancreas dovrebbe cadere a pezzi.
- Versare ogni digestione attraverso un colino grande dissipatore di sterile in un bicchiere da 1000 ml, sterile e con forza pipetta fuori dallo schermo con il tampone di lavaggio. Erogare il digerisce in 50 ml provette conicals (3 pancreata/50 tubo ml: se n = 12, basta utilizzare il tampone di lavaggio per rendere il volume finale 200 ml e dispensare a tubi 4x50 ml). La diluizione deve essere fatta rapidamente e in ghiaccio per evitare indesiderate digestione isolotto.
- Spin down: Avviare la centrifuga. Quando raggiunge 1300 rpm, spegnerlo.
- Aspirare il sopranatante, lasciando ~ 5 ml. Essere molto cauti a non aspirare il pellet.
- Risospendere le sfere toccando vigorosamente con la mano, poi aggiungere 50 ml di tampone di lavaggio.
- Spin down: Avviare la centrifuga. Quando raggiunge 1300 rpm, spegnerlo.
- Risospendere il pellet e lavare con 5 ml di soluzione di lavaggio.
- Trasferire il 5 ml a 15 ml e spin down, come sopra.
- Aspirare il surnatante modo più completo possibile. (Buffer rimanente potrebbe causare la variazione della densità del Ficoll).
Ficoll
Eseguire rapidamente. Esposizione a lungo termine Ficoll è tossico per gli isolotti.
- Assicurarsi pellet è completamente rotto prima di aggiungere Ficoll (tessuto ininterrotta è difficile da risospendere in Ficoll).
- Risospendere il pellet in 7 ml di Ficoll, densità 1,108, vortexando vigorosamente.
- Strati l'uno sopra l'densità di Ficoll 2 ml di ciascuna delle densità rimanenti in questo ordine: 1,096, 1,069, quindi 1,037.
- Spin per 15 minuti a 1800 rpm a 4 gradi, con pausa OFF!
- Scegli isolotti del secondo livello utilizzando spoid (sterili pcontagocce Lastic). Trasferire tutte le collezioni ad una conica da 50 ml contenente circa 25 ml di tampone a freddo.
- Lavare, come sopra, 3 volte con tampone di lavaggio (ripetendo il passaggio 12-15).
- Isolotti Risospendere in 20 ml di RPMI-1640 (contenente 10% FCS e la penicillina e la streptomicina, HEPES, MEM-NEAA) e mescolare delicatamente. Rimuovere 100 ul di campione per il conteggio.
- Trasferire 100 ul a 35 mm Griglia piastra contenente 1 ml di media e 1 ditizone ml.
- Incubare isolotti rimanenti in RPMI 1640, a 37 ° C, 7% di CO 2 incubatore, in 160 piastre mm con un totale di 30 ml di media / piastra.
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Materials
Name | Type | Company | Catalog Number | Comments |
Dithizone | reagent | Dissolve 5mg Dithizone in 5 ml of DMSO in a 50 ml conical tube. Add 45 ml of normal saline and mix gently. Filter with a 60 cc syringe and a 0.22 "m syringe filter into a new 50 ml tube. Store at 4 OC, until use. Add 1 ml to each 35 mm counting Grid-plate, when needed. | ||
PBS | Buffer | |||
HBSS | Buffer | |||
Isolation soln. | Buffer | HBSS containing 10 mM of HEPES, 1 mM of MgCl2, 5 mM of Glucose, pH 7.4 | ||
Wash soln. | Buffer | Isolation buffer containing 1mM CaCl2 | ||
Collagenase P | Boehringer Ingeheim | 1213873 | ||
Dissection tools | Hemostat clamp (n=2), Forceps (n=2), Scissors (for skin incision an for taking out pancreas from adjacent tissue) | |||
Syringe | sterile, 5ml, 1/mouse. | |||
30 G needles | sterile, 1/syringe | |||
siliconized glass vials w/Teflon cap | Fisher Scientific | 213-018-54 | sterile, 1/mouse | |
large sink strainer | sterile | |||
1000 ml Beaker | sterile | |||
Gauze pads | 4x4, 2/mouse | |||
plastic eye dropper | sterile | |||
Mice | Animal | |||