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Biology

Murino pancreatica isolamento Islet

Published: August 22, 2007 doi: 10.3791/255

Summary

Protocol

Collagenasi Preparazione

  1. Pesare la collagenasi in un buffer 50 isolamento ml e aggiungere per rendere la concentrazione finale, come indicato nella tabella sottostante. Sciogliere il collagenasi vortexando.


    (12 + 2 topi topi topi in più = 14 x 5 ml / mouse = 70 ml di soluzione di collagenasi totale)


    (70 ml x 0,5 mg / ml o 0,3 mg / ml = 35 mg o 21 mg del totale collagenasi P)


    Tensione Età Collagenasi P (mg / ml) Tempo (min)
    C3H, Balb / C, B6 > 12 settimane 0,8 17
    C3H, Balb / C, B6 <= 12 settimane 0,5 13
    NOD, NOR, NON > 12 settimane 0,8 17
    NOD, NOR, NON <= 12 settimane 0,5 17


  2. Dispensare 2 ml di soluzione di collagenasi in ogni fiala di vetro e posto sul ghiaccio. Caricare ogni siringa da 5 ml con 3 ml di aghi 30g collagenasi aggiungere e mettere in ghiaccio (la preparazione in cappa).

Dilatazione

  1. Poco prima dissezione, sacrificio animale per dislocazione cervicale. Spruzzare tutto il corpo con il 70% dei ETOH, rendendolo completamente bagnato. Fare un V-Insision a partire dalla zona genitale. Ruotare il mouse in modo la coda è rivolto verso di voi.
  2. Rimuovere l'intestino verso il lato sinistro del mouse aperta. Questo esporrà il pancreas e del dotto biliare comune.
  3. Posizionare una pinza emostatica su entrambi i lati del piccolo-intestinale, dove il dotto biliare fognature, lasciando una piccola tasca per soluzione collagenasi entrare l'intestino.
  4. Gonfiare il pancreas attraverso il dotto biliare con un ago 30g e siringa da 5 ml contenente 3 ml di soluzione di collagenasi a freddo, a partire dalla cistifellea.
  5. Rimuovere il pancreas dal corpo e posizionarlo in un flaconcino siliconata contenente 2 ml di soluzione di collagenasi. Questo passo dovrebbe essere fatto rapidamente e in modo pulito possibile, riducendo al minimo la raccolta di grasso e tessuto connettivo.
  6. Posizionare il flaconcino su ghiaccio e ripetere il passo 3 con il mouse successiva.

Digestione

  1. Sigillare ogni fiala e collocarlo in un 37 ° C bagnomaria. Incubare per 13-17 minuti (il tempo varia con sforzo e l'età dell'animale).
  2. Dopo il tempo è trascorso, agitare il flacone energicamente. Il pancreas dovrebbe cadere a pezzi.
  3. Versare ogni digestione attraverso un colino grande dissipatore di sterile in un bicchiere da 1000 ml, sterile e con forza pipetta fuori dallo schermo con il tampone di lavaggio. Erogare il digerisce in 50 ml provette conicals (3 pancreata/50 tubo ml: se n = 12, basta utilizzare il tampone di lavaggio per rendere il volume finale 200 ml e dispensare a tubi 4x50 ml). La diluizione deve essere fatta rapidamente e in ghiaccio per evitare indesiderate digestione isolotto.
  4. Spin down: Avviare la centrifuga. Quando raggiunge 1300 rpm, spegnerlo.
  5. Aspirare il sopranatante, lasciando ~ 5 ml. Essere molto cauti a non aspirare il pellet.
  6. Risospendere le sfere toccando vigorosamente con la mano, poi aggiungere 50 ml di tampone di lavaggio.
  7. Spin down: Avviare la centrifuga. Quando raggiunge 1300 rpm, spegnerlo.
  8. Risospendere il pellet e lavare con 5 ml di soluzione di lavaggio.
  9. Trasferire il 5 ml a 15 ml e spin down, come sopra.
  10. Aspirare il surnatante modo più completo possibile. (Buffer rimanente potrebbe causare la variazione della densità del Ficoll).

Ficoll

Eseguire rapidamente. Esposizione a lungo termine Ficoll è tossico per gli isolotti.

  1. Assicurarsi pellet è completamente rotto prima di aggiungere Ficoll (tessuto ininterrotta è difficile da risospendere in Ficoll).
  2. Risospendere il pellet in 7 ml di Ficoll, densità 1,108, vortexando vigorosamente.
  3. Strati l'uno sopra l'densità di Ficoll 2 ml di ciascuna delle densità rimanenti in questo ordine: 1,096, 1,069, quindi 1,037.
  4. Spin per 15 minuti a 1800 rpm a 4 gradi, con pausa OFF!
  5. Scegli isolotti del secondo livello utilizzando spoid (sterili pcontagocce Lastic). Trasferire tutte le collezioni ad una conica da 50 ml contenente circa 25 ml di tampone a freddo.
  6. Lavare, come sopra, 3 volte con tampone di lavaggio (ripetendo il passaggio 12-15).
  7. Isolotti Risospendere in 20 ml di RPMI-1640 (contenente 10% FCS e la penicillina e la streptomicina, HEPES, MEM-NEAA) e mescolare delicatamente. Rimuovere 100 ul di campione per il conteggio.
  8. Trasferire 100 ul a 35 mm Griglia piastra contenente 1 ml di media e 1 ditizone ml.
  9. Incubare isolotti rimanenti in RPMI 1640, a 37 ° C, 7% di CO 2 incubatore, in 160 piastre mm con un totale di 30 ml di media / piastra.

    Figura 1

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Materials

Name Type Company Catalog Number Comments
Dithizone reagent Dissolve 5mg Dithizone in 5 ml of DMSO in a 50 ml conical tube. Add 45 ml of normal saline and mix gently. Filter with a 60 cc syringe and a 0.22 "m syringe filter into a new 50 ml tube. Store at 4 OC, until use. Add 1 ml to each 35 mm counting Grid-plate, when needed.
PBS Buffer
HBSS Buffer
Isolation soln. Buffer HBSS containing 10 mM of HEPES, 1 mM of MgCl2, 5 mM of Glucose, pH 7.4
Wash soln. Buffer Isolation buffer containing 1mM CaCl2
Collagenase P Boehringer Ingeheim 1213873
Dissection tools Hemostat clamp (n=2), Forceps (n=2), Scissors (for skin incision an for taking out pancreas from adjacent tissue)
Syringe sterile, 5ml, 1/mouse.
30 G needles sterile, 1/syringe
siliconized glass vials w/Teflon cap Fisher Scientific 213-018-54 sterile, 1/mouse
large sink strainer sterile
1000 ml Beaker sterile
Gauze pads 4x4, 2/mouse
plastic eye dropper sterile
Mice Animal

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Tags

Numero 7 Immunologia isole pancreatiche coltura cellulare il diabete gradiente Ficoll
Murino pancreatica isolamento Islet
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Szot, G. L., Koudria, P., Bluestone, More

Szot, G. L., Koudria, P., Bluestone, J. A. Murine Pancreatic Islet Isolation. J. Vis. Exp. (7), e255, doi:10.3791/255 (2007).

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