Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

Свиной Модель новорожденных Асфиксия

Published: October 11, 2011 doi: 10.3791/3166

Summary

Большие животные модели имеют хорошую поступательного значения при рассмотрении физиологии и фармакологии новорожденных асфиксии. Использование новорожденных поросят, мы разрабатываем экспериментальный протокол для имитации неонатальной асфиксии который имеет преимущества изучения системной и регионарной гемодинамики, транспорта кислорода с биохимических и патологических путей и корреляции.

Abstract

Ежегодно более 1 миллиона новорожденных умирают по всему миру в связи с асфиксией. Асфиксии новорожденных обычно имеют полиорганной недостаточностью, включая гипотензию, перфузии дефицита, гипоксически-ишемическая энцефалопатия, легочная гипертензия, vasculopathic энтероколит, почечной недостаточности и тромбоэмболических осложнений. Животные модели разработаны, чтобы помочь нам понять, пато-физиологии и фармакологии новорожденных асфиксии. По сравнению с грызунами и новорожденных ягнят, поросят новорожденных было доказано, чтобы быть ценным модели. Новорожденных поросят имеет ряд преимуществ, включая подобное развитие, как и 36-38 недель человеческий плод с сопоставимыми системами тела, большие размеры тела (~ 1,5-2 кг при рождении), что позволяет приборов и мониторинга животного и контролирует смешанных переменных гипоксию и гемодинамические расстройства.

Мы опишем здесь экспериментальный протокол для имитации неонатальной асфиксии и позволит нам изучить системикрофоном и региональные изменения гемодинамики в удушающих и реоксигенации процесса, а также соответствующими последствиями вмешательства. Кроме того, модель имеет преимущество в изучении полиорганной недостаточностью или дисфункцией одновременно и взаимодействие с различными системами организма. Экспериментальная модель не является выживание процедура, которая включает хирургические приборы новорожденных поросят (1-3 дневных и 1,5-2,5 кг веса, смешанной породы), чтобы позволить создание искусственной вентиляции легких, сосудов (артериальное и центральное венозное) доступа и размещение катетеров и датчиков потока (Transonic Inc) для непрерывного мониторинга внутри-сосудистое давление и кровоток в разных артериях, включая основные легочные, общей сонной артерии, верхней брыжеечной и левой почечной артерии. Используя эти хирургическим путем инструментальной поросят, после стабилизации в течение 30-60 минут, как это определено Z <10% изменения гемодинамики и нормальных газов крови, мы начинаем экспериментальный протоколтяжелой гипоксемией, индуцированный с помощью normocapnic альвеолярной гипоксии. Поросенок вентилируется с 10-15% кислорода за счет увеличения ингаляционных концентрации азота в течение 2 часов, направленные на насыщение кислородом артериальной 30-40%. Эта степень гипоксемии будет производить клинический с тяжелой асфиксией метаболический ацидоз, системная гипотензия и кардиогенный шок с гипоперфузии жизненно важных органов. Гипоксия сопровождается реоксигенации со 100% кислорода для 0,5 ч, а затем 21% кислорода для 3.5h. Фармакологические вмешательства могут быть введены в установленном порядке и их последствия исследованы в слепом рандомизированном блок-моды.

Protocol

1. Анестезия

  1. Установить расход наркозный аппарат в 2L/min. Подключить вытяжку для вакуумного отсоса.
  2. Charge маска с анестетиком газа (Isoflurane) на 5% (~ 3 мин).
  3. Новорожденные поросята будут наводиться с вдыхаемым Isoflurane 5% в 100% кислорода (~ 3 мин).
  4. Поддержание анестезии на 2-3% Isoflurane. Точная настройка Isoflurane на 0,5%, в соответствующих случаях, однако, она может варьироваться от 0,5 до 5% в зависимости от состояния поросят.
  5. После сосудистого доступа была установлена, ингаляционного наркоза может быть включен в внутривенной анестезии использовании фентанила (5-50 мкг / кг / ч) и мидазолам (200-500 мкг / кг / ч) инфузии. Панкурония (50-100 мкг / кг / ч) может потребоваться для управления чрезмерными движениями мышц во время операции, в то время как способность наблюдать состояние животного сохраняется для регулировки препараты анестезии.
  6. Поросенок контролируется пульсоксиметрии (чрескожная кислорода сaturation на 95-100%) и ЭКГ (ЧСС в 130-170 уд / мин).
  7. Ректальной температуры поросят поддерживается на уровне 38-40 ° C с одеялом отопления и лучистого тепла.
  8. Государство анестетика поросят в настоящее время регулярно оценивать протяжении экспериментального периода использования неврологические (размер зрачка, слезотечение, движения тела), поведенческий (агитация), сердечно-сосудистых (тахикардия и артериальная гипертензия) и органов дыхания (тахипноэ) параметры по мере необходимости. Минимальная паралич дано. Предыдущий опыт анестезии у поросят и без паралича было бы полезно для оценки.
  9. Протокол не является выживание процедуры с euthanization животного в конце эксперимента при передозировке фенобарбитала (100 мг / кг) внутривенно.

2. Хирургическое размещения сосудистого катетера в паху (рис. 1)

  1. Сделать длинный 2-3см разрез в правой паховой области.
  2. Проанализируйте 1 см правой бедренной венозной и 1 см Рогт бедренной артерии. Поместите две 3-0 строк вокруг каждого судна.
  3. Правой бедренной катетеризации: Лигируют дистальных вен. Вставьте катетер Argyle (3,5 или 5 французских, двойной просвет) (Covidien, Mansfield, MA) до 15 см, и это будет поместить в правое предсердие. Свяжите обе строки, чтобы обеспечить катетер. Катетер может быть использован для жидкостей технического обслуживания и лекарств инфузии (вторичный порт) и центральное венозное / правого предсердия измерения давления (основной порт).
  4. Право бедренной артерии катетеризации: Лигируют дистальной артерии. Поднимите проксимального строки, чтобы остановить поток крови. Вставьте катетер Argyle (3,5 или 5 французских, одного просвета) до 5см. Это позволит разместить артериального катетера в инфра-почечная аорты для непрерывного измерения среднего артериального давления и забор крови. Свяжите обе строки, чтобы обеспечить катетер.
  5. Закрыть кожи.

3. Создание искусственной вентиляции легких (рис. 2)

  1. Сделать длинный 2-3см горизонтальнойразрез в области шеи.
  2. Анализировать и подвергать 1см трахеи. Поместите две строки 1-0 вокруг трахеи.
  3. Вставьте эндотрахеальной трубки (3,0 или 3,5) на 1 см в трахею. Подключите к аппарату искусственной вентиляции легких и приступить к искусственной вентиляции легких. Закрепить эндотрахеальной трубки.
  4. Анализировать и подвергать общей сонной артерии. Обхватите сосуд с ультразвуковым транзитного потока времени зонд (2SB или 2RB, Transonic Systems, Inc, Ithica, Нью-Йорк) для непрерывного измерения кровотока.

4. Размещение датчиков потока на верхней брыжеечной (рис. 3) и левой почечной (рис. 4) артерий

  1. Дополнительные дозы фентанила (5-10 мкг / кг) и Ацепромазин (0,01-0,02 мг / кг) необходимо перед разрезом кожи.
  2. Сделайте долгий подреберье-фланга разреза и тщательно анализировать мышечные слои.
  3. Expose брюшной аорты.
  4. Свернуть сосудистой обработки (спазм сосудов) и лимфатической травмы.
  5. Проанализируйте 0,5-1см брыжеечной артерии иположить Transonic зонд потока (3SB) вокруг него.
  6. Проанализируйте 0,5-1см левой почечной артерии и положить Transonic зонд потока (2SB) вокруг него.
  7. Закрыть кожу и обеспечить поток зонда.

5. Размещение катетера легочной артерии (рис. 5) и поток зонда (рис. 6)

  1. Дополнительные дозы фентанила (5-10 мкг / кг) и Ацепромазин (0,01-0,02 мг / кг) необходимо перед разрезом кожи.
  2. Ли животных в правом боковом положении.
  3. Торакотомия на левом четвёртому межреберье.
  4. Следите за внутренней грудной артерии и вены, перевязывать, если необходимо.
  5. Используйте зубную тампон, чтобы нажать на левую легких и увеличить кислород по мере необходимости.
  6. Откройте перикарда.
  7. Определение артериального протока, которая идет от легочной артерии в аорту.
  8. Открытый артериальный проток может быть лигировали путем размещения клипа или толстым "3-O шелка" галстук на его происхождение.
  9. Бесплатные основной легочной артерии и проходят пр.ascular стропы помощью толстых "0" галстук.
  10. Выполните кошелек строк (5-0 проленовой) шва на базу для размещения катетера легочной артерии.
  11. Вставьте 20G Angiocath (с 3 боковыми отверстиями на менее 1 см от кончика катетера) через кошелек строку максимум 1 см.
  12. Проверьте свободный поток венозной крови.
  13. Подключение к датчику давления, проверить давление в легочной артерии и формы.
  14. Затянуть кошелек строку и закрепить легочной катетер.
  15. Поместите Transonic зонд потока (6SB) вокруг главной легочной артерии.
  16. Место ультразвукового геля между зондом поток и артерии, чтобы обеспечить оптимальную передачу сигнала.
  17. Накройте рану влажной солевой марлю.

6. Гипоксия и реоксигенации протокола

  1. Снижение концентрации кислорода вдохновенные до 10% за счет увеличения концентрации вдыхаемого газа азота вызывают гипоксемии.
  2. Отрегулируйте вдыхаемого кислородаконцентрации между 10% и 15%, чтобы получить PaO 2 на 20-40 мм рт.ст. или SaO 2 на 30-40% в течение 2 часов.
  3. Выполните артериальной анализ крови для оценки PaCO 2 и отрегулируйте вентилятор скорости соответственно.
  4. С индукцией гипоксемии, первый час посвящен постоянно вызывая тахикардия (и сердечного выброса) ответ.
  5. Продолжайте следить за изменениями кровотока в общей сонной артерии, верхней брыжеечной и левой почечной артерии.
  6. Во втором часу гипоксии, гипоксического стресса увеличивается устойчиво ниже сердечного выброса на 30-40% от исходного уровня, среднее артериальное давление на 30-35 мм рт.ст. и артериальной рН 6.95-7.05.
  7. Гипоксического стресса может быть досрочно расторгнут или продлен на 15 мин соответственно.
  8. Увеличение концентрации кислорода вдохновенные резко до 100% скачком на прекращение азота, продолжая при этом чистый кислород.
  9. Монитор сердечного выброса, среднего артериального давления и других гемодинамических пунктметров для быстрого восстановления.
  10. Реанимация со 100% кислорода может быть продолжено в течение 0,5 ч. После этого периода времени, снижения концентрации кислорода вдохновенные быстрее до 21%.
  11. Продолжить реоксигенации с 21% кислорода в течение оставшегося срока эксперимента. Вдыхаемой концентрации кислорода можно титровать до 25%, если это необходимо.
  12. Жидкость болюсов из 10 лактата раствор мл / кг Рингера может быть необходимо по мере необходимости в течение экспериментального периода. Его использование должно быть protocolized.

7. Представитель Результаты:

Индукции гипоксии у новорожденных поросят в течение первого часа гипоксии следует увеличить сердечный выброс (легочная артериальная потока) до 120% -130% от исходного уровня (рис. 7а) и частоты сердечных сокращений (рис. 7В). Как правило, сердечный выброс должен достичь своего пика компенсации между первым 0.5h и 1ч гипоксии. Кроме того, приток крови должно стать централизованное что приводит к снижению меняsenteric и почечной перфузии, но сохраняются или увеличиваются общей сонной артериального кровотока (рис. 8). Во втором часу гипоксии, есть устойчивое снижение сердечного выброса, развитие гипотензии (рис. 9А), замедление частоты сердечных сокращений с или без аритмии произошло. Гипоксия должна вызывать легочная гипертензия с повышением давления в легочной артерии (рис. 9Б), которые иногда могут опустить в заключительные 30 минут гипоксии сердечной уменьшается выход.

После реанимации, все гемодинамики сразу же восстановиться до нормоксических базовых, за исключением почечного кровотока, которая постепенно восстанавливается в течение первого часа реоксигенации. Тем не менее, гемодинамики, особенно для сердечного выброса и среднее артериальное давление постепенно снижается, за первые 2 часа реоксигенации около 70-75% нормоксических базовой и 35-45 мм рт.ст., соответственно. Это сердечно-сосудистые dysfunctiпо крайней мере в части развития инфаркта и гарантирует потрясающий сердечно-сосудистой поддерживающей терапии, такие как вазоактивных и инотропных препаратов.

Рисунок 1
Рисунок 1: паха разрез с размещением бедренных артериальных и венозных катетеров

Рисунок 2
Рисунок 2: Шея разрез с размещением эндотрахеальной трубки и поток зонда вокруг общей сонной артерии

Рисунок 3
Рисунок 3: Бочка разрез с выделением брыжеечной артерии

Рисунок 4
Рисунок 4: Пашина разрез с изоляцией из левой почечной артерии

Рисунок 5 Рисунок 5: торакотомия с размещением катетеризации легочной артерии

Рисунок 6
Рисунок 6: торакотомия с размещением Transonic зонд обтекания основной легочной артерии

Рисунок 7
Рисунок 7: Временные изменения в (A) сердечного выброса (легочная артериальная потока) и (B) частота сердечных сокращений при гипоксии и реоксигенации

Рисунок 8
Рисунок 8: Временные изменения кровотока в (А) общей сонной, (B) и верхней брыжеечной (C) левой почечной артерии при гипоксии и реоксигенации

Рисунок 9
Рисунок 9: Временнаяизменения в (A) среднее артериальное давление и (B) давление в легочной артерии при гипоксии и реоксигенации

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

В настоящее время экспериментальный протокол имеет преимущества для изучения системной и регионарной гемодинамики изменений в неонатальном субъектов в процессе гипоксии и реоксигенации. Мы также можем рассмотреть соответствующее влияние вмешательства используются для улучшения сердечно-сосудистой системы во время восстановления. Мы и другие сообщили, опыт и выводы, содержащиеся в исследовании новорожденных асфиксии в связи с воздействием на сердечно-сосудистую 1, 2 легочные, неврологические 3, 4 желудочно-кишечного тракта, печени 5, почечная 6, 7 и надпочечников гематологических 8 систем. Хотя важно понимать, сердечно-сосудистую функцию с информацией на основе непрерывного измерения данных, это технически сложно, если не невозможно хирургическим инструментом небольшого размера животных, таких как грызуны или морских свинок. Последние достижения в технологии, такие как УЗИ и изображений в реальном времени, однако, может преодолеть некоторые из этих чаllenges. Тем не менее, крупных животных также позволяют одновременный сбор биологических образцов, включая плазму и образцы тканей в течение экспериментального периода. Этот дополнительный биологический отбор проб позволит биохимических анализов и гистологического исследования, которые помогают пониманию патофизиологии и фармакологии гипоксии и реоксигенации. Хотя основная цель в моделях естественных условиях животное может быть изучение пато-физиологические функции одной системы организма, очень важно, чтобы понять это в контексте органа-орган взаимодействия. Например, взаимодействие между функцию сердца и легочной гипертензии или печеночной дисфункции играет важную роль в полиорганной дисфункции, что и неонатальной асфиксии 9. Новорожденный ягненок является альтернативой свиней в общих моделей на животных для изучения неонатальной асфиксии. Преждевременное развитие и ограниченный размер помета новорожденных ягнят, однако, может ограничиться более широкого использования, чем новорожденные свиньиДопустим, которая соответствует тому, что из 38 недель беременности человеческий плод и есть примерно 10 в помете 10,11. Тем не менее, новорожденных поросят являются наиболее часто используемыми животных после грызунов в исследовании новорожденных асфиксии.

Однако, есть ограничения этой свиньи модель неонатальной асфиксии, в дополнение к проблеме, связанной с переводом результатов, полученных из исследований на животных к человеку. Эффект анестезии и хирургического стресса, как в остром может быть сведено к минимуму с соответствующим периодом стабилизацию, соответствующих лекарственных препаратов анестезии, изысканная хирургические методы, а также включение ложнооперированных контрольных животных для сравнения. Продление экспериментального периода после дня необходимо для расследования, если любая острая гемодинамический эффект будет сохраняться в долгосрочной перспективе. В самом деле, мы были успешными в изменении экспериментальный протокол расширенной подострый (например, 48-72 часов) 12, выживаемость (5-7 дней) 13 14, прекращение искусственной вентиляции легких 15 и добавление сонной артерии для ишемии головного мозга. Мы пытаемся сделатьгипоксии и реоксигенации клинически значимым. Эксперимент включает в себя 2 часа гипоксии которая приближается к продолжительности, необходимой для чрезвычайных кесарева сечения для плода без клинических кровотечения на основе личных наблюдений. Реанимации начинается со 100% кислородом в течение 30 минут, вместо 60 минут в наших предыдущих исследований. Это ограничивает гипероксии, которая остается распространенной практикой во многих больницах сообщества до прибытия новорожденных команды транспорта. Начальная реоксигенации с 21% кислорода будет следовать недавно обновила руководство по использованию дополнительного кислорода в реанимации новорожденных 16.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Нет конфликта интересов объявлены.

Acknowledgments

Авторы хотели бы поблагодарить Канадский институт исследований в области здравоохранения (MOP53116) и Alberta Heritage Foundation медицинских исследований для предоставления работы и создание фонда, соответственно, поддержать развитие этой экспериментальной модели.

References

  1. Borke, W. B. Increased myocardial matrix metalloproteinases in hypoxic newborn pigs during resuscitation: effects of oxygen and carbon dioxide. Eur. J. Clin. Invest. 34, 459-466 (2004).
  2. Munkeby, B. H. Resuscitation of hypoxic piglets with 100% O2 increases pulmonary metalloproteinases and IL-8. Pediatr. Res. 58, 542-548 (2005).
  3. Haaland, K. Posthypoxic hypothermia in newborn piglets. Pediatr. Res. 41, 505-512 (1997).
  4. Haase, E. Resuscitation with 100% oxygen causes intestinal glutathione oxidation and reoxygenation injury in asphyxiated newborn piglets. Ann. Surg. 240, 364-373 (2004).
  5. Stevens, J. Resuscitation with 21% or 100% oxygen is equally effective in restoring perfusion and oxygen metabolism in hypoxic newborn piglet liver. Shock. 27, 657-662 (2007).
  6. Johnson, S. T. N-acetylcysteine improves the hemodynamics and oxidative stress in hypoxic newborn pigs reoxygenated with 100% oxygen. Shock. 28, 484-490 (2007).
  7. Chapados, I. Plasma cortisol response to ACTH challenge in hypoxic newborn piglets resuscitated with 21% and 100% oxygen. Shock. 33, 519-525 (2010).
  8. Cheung, P. Y. Platelet dysfunction in asphyxiated newborn piglets resuscitated with 21% and 100% oxygen. Pediatr. Res. 59, 636-640 (2006).
  9. Martin-Ancel, A. Multiple organ involvement in perinatal asphyxia. J. Pediatr. 127, 786-793 (1995).
  10. Swindle, M. M., Smith, A. C. Comparative anatomy and physiology of the pig. Scan. J. Lab. Anim. Sci. Suppl. 25, 11-22 (1998).
  11. Chapados, I., Cheung, P. Y. Not all models are created equal: Animal models to study hypoxic-ischemic encephalopathy of the newborn. Neonatology. 94, 300-303 (2008).
  12. Liu, J. Q. Effects of post-resuscitation treatment with N-acetylcysteine on cardiac recovery in hypoxia-injured newborn pigs. PLoS ONE. 5, e15322-e15322 (2010).
  13. Cheung, P. Y. Cardio-renal recovery of hypoxic newborn pigs after 18%, 21% and 100% reoxygenation. Intensive Care Med. 34, 1114-1121 (2008).
  14. Temesvari, P. Modulation of the blood-brain barrier permeability in neonatal cytotoxic brain edema: laboratory and morphological findings obtained on newborn piglets with experimental pneumothorax. Biol. Neonate. 46, 198-208 (1984).
  15. Domoki, F. Reventilation with room air or 100% oxygen after asphyxia differentially affects cerebral neuropathology in newborn pigs. Acta. Paediatr. 95, 1109-1115 (2006).
  16. Part 15: Neonatal resuscitation: 2010 American Heart Association guidelines for cardiopulmonary resuscitation and emergency cardiovascular care. Circulation. 122, S909-S919 (2010).

Tags

Медицина выпуск 56 биологии развития свиней новорожденные гипоксия асфиксия реоксигенации
Свиной Модель новорожденных Асфиксия
Play Video
PDF DOI

Cite this Article

Cheung, P., Gill, R. S., Bigam, D.More

Cheung, P., Gill, R. S., Bigam, D. L. A Swine Model of Neonatal Asphyxia. J. Vis. Exp. (56), e3166, doi:10.3791/3166 (2011).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter