Summary
在这里，我们描述的方法建设，可视化和量化的萤火虫和Renilla荧光素酶表达的转移性乳腺癌细胞的生长和转移的生物发光反应
Abstract
我们的理解和乳腺癌细胞从原发肿瘤转移部位过境时增加了一个特殊的速度问世以来， 在体内生物发光成像技术1-3。事实上，能够在一个单一的队列的动物，而不是牺牲个人组动物在特定的试验时间，已经彻底改变了研究人员研究乳腺癌转移的研究完成的纵向定位和量化肿瘤的生长。不幸的是，目前的方法排除蒸发乳腺癌细胞（I）内原发肿瘤发展，（二）传播的整个身体，及（iii）重新开始增生性节目的网站在细胞信号传导系统发生重大变化，实时评估转移性病变。然而，最近的进步，生物发光成像现在使人们有可能同时量化特定spatiotempor人的基因表达的变化作为一个功能通过使用双衬底发光反应的肿瘤的发展和转移进展。要做到这一点，研究人员利用从萤火虫（Photinus pyralis）和海三色堇（ 海肾肾形肾状 ），这两种反应以前促进了它们的广泛使用在体外细胞的相互排斥的基板分离的两个光产生的荧光素酶的酶基于报告基因检测4。在这里，我们证明了这两种酶，使得一个发光反应具体的显影的肿瘤的大小和位置的标记，而所述第二发光反应作为一种手段来可视化特定的信令系统的激活状态，在不同的阶段，肿瘤在体内效用和转移的发展。因此，本研究的目标是2倍。首先，我们将介绍必要的步骤来构建双生物发光记者细胞系，以及那些需要，以便使用在特定的步骤转移级联的可视化的基因表达调控的时空。使用4T1乳癌转移模型中，我们表明Smad蛋白绑定元素的合成（SBE） 的体内活性的启动子急剧下降相比，在原发肿瘤4-6测量肺转移。最近，被证明是调控乳腺癌转移在原发肿瘤微环境和反应性间质的变化，包括那些发生在成纤维细胞和免疫细胞浸润7-9。因此，我们的第二个目标将是证明在监测的增长和本地化两个独特的细胞群窝藏在一个单一的动物在乳腺癌的生长和转移的的双生物发光技术的效用。
Protocol
1。稳定CMV启动子驱动的Renilla荧光素酶的表达
- 转染和一个稳定的无性系种群的选择是首选的方法为本海肾荧光素酶报告基因的表达。这种方法获得更加一致和统一的海肾荧光素酶的表达，随后推出的额外的辅助记者的结构（ 例如 ，萤火虫荧光素酶或荧光蛋白）。
- 转染编码海肾荧光素酶的表达载体，如质粒pcDNA3.1-温湿度计或另一个质粒转染的可选择标记感兴趣的恶性细胞。
- 转染后，将下一个优化的抗生素浓度的转染几天周，以便隔离的单个菌落，它们随后分离单独和传代培养。
- 选择≥10个人Renilla荧光素酶表达的殖民地监测的海肾表达的程度。
- 一旦获得稳定的转染子中分离和验证，可以删除的选择压力，并放心，海肾荧光素酶的表达将在延长的时间的长度，无论是在体外和体内的保持不变。
2。诱导型启动子驱动的萤火虫荧光素酶的表达，筛选和功能验证
- 成pGL4荧光素酶报告质粒转染的选择标记（ 例如 ，购买亚克隆启动子的兴趣霉素），选择稳定的海肾表达（ 例如 ，潮霉素）是不同的。
- 恶性细胞转染的步骤我，随后选择一个稳定的的多克隆人口的萤火虫荧光素酶表达的细胞。由于报告基因整合到基因组中的位置可以引起错误的表达和调控的影响，我们强烈建议，而不是选择为的多克隆人口的萤火虫荧光素酶表达细胞无性系种群，以确保（i）报告基因的表达更准确地反映在亲代细胞中的内源基因，及（ii）对基因表达的平均积分效应和减少跨异构细胞种群。
- 设计，以稳定地同时表达海肾和萤火虫荧光素酶的恶性细胞统称为双的生物发光记者细胞，或DBR细胞。
- 使用传统的<em>的体外细胞为基础的荧光素酶报告基因检测，验证，DBR细胞调节萤火虫荧光素酶的表达，无论是正面或负面的，一致的，用这些载体转染的亲本细胞中观察到的方式。同样，验证CMV启动子驱动表达的海肾受各种细胞刺激或处理条件。
- 这样做，文化DBR和亲代细胞在24孔板中，并与原来的CMV-海肾和启动子-萤火虫其后瞬时共转染亲代细胞构造用于生成DBR细胞。
- 随后，治疗DBR和转染的亲本细胞被称为调节启动子的兴趣，随后定量使用Promega公司的双荧光素酶检测试剂盒的萤火虫和海肾发光的因素或药物制剂。
3。 ，建立4T1原发性乳腺肿瘤
- 转移性乳腺癌细胞，4T1我们重新发现缺乏外膜啮齿动物病原体的设计，稳定地表达了CMV启动子驱动的海肾荧光素酶（转染CMV-Renilla荧光素酶HYGRO）和SBE-驱动的萤火虫荧光素酶（pGL4.2-SBE-萤火虫荧光素酶PURO）如上所述。这些乳腺癌细胞的查询结果自发转移，主要在肺部形成原位植入。
- 不应该被允许4T1细胞达到汇合在他们的传统的2 -维组织培养系统中的传播，和他们应传代他们在体内接种的前一天。
- 4T1细胞，通过胰蛋白酶消化分离，充分洗涤后，在生长培养基中，并在PBS中稀释至2×10 5个细胞/ ml的浓度，并立即在冰上储存。
- 应该是带有感应剂量的3％异氟醚和剂量为1％异氟烷维持麻醉下在麻醉的雌性Balb / C小鼠（4-6周龄）。准备注射部位的擦拭，70％的异丙醇。使用钳子，轻轻抓住并提起第4腹股沟的乳垫。小心地将27.5号针头斜面的一面朝上，并直接注入乳腺脂肪垫下的乳头，特别注意不要推针进入腹腔。松开密封压盖和慢慢注入50微升的细胞悬浮液（1×10 4个细胞）到乳腺脂肪垫。
4。最初的双发光成像
- 后立即嫁接到乳腺脂肪垫的4T1细胞，而小鼠仍麻醉，成横向的尾静脉注入100μl的RediJect腔肠素。这是最适底物浓度的供应商和耐受性的动物。
- 立即将鼠标异氟醚鼻锥内的IVIS 200成像系统，获得一个0.5分钟的荧光图像。注入和图像采集之间的效率是非常重要的，因为信号Renilla荧光素酶急剧下降约30秒后注射。将鼠标到它的笼子里，让它恢复≥1小时，以确保任何残留Renilla荧光素酶信号已经消失，鼠标已经完全从麻醉中恢复过来。
- 管理通过 IP注射150毫克/公斤，D-荧光素钾盐，并等待5分钟。这是最佳的浓度，D-荧光素，它提供了一个稳定的发光信号为5-15分钟后，注入试验动物。麻醉在IVIS-200鼠标采用isoflourane和替换，照顾的动物的位置在一个非常相似的位置，相对于原来的海肾收购。整体强度本萤火虫信号的依赖的启动子的活性的利益，因此，可视化萤火虫荧光素酶的活性可能会延长收购时间。
- 使用的IVIS生活图片软件设置为“光子”模式，建立有价值ES Renilla的和萤火虫收购的作为一种手段来建立基线的相对发光率（RLR）。
5。纵向发光成像
- 4T1细胞是高度侵略性的，例如，1×10 4个细胞接种通常会导致扪肿瘤形成，1星期内，并在4-5周的动物的杀伤力。 4T1肿瘤有一种内在的倾向溃烂第4周。溃疡肿瘤的生长和维持的可能需要单独的IACUC批准。本文所示的4T1肿瘤的研究已批准的IACUC在凯斯西储大学。
- 如上所述，被注入小鼠应每周RediJect腔肠素监测一般肿瘤的生长和转移，以及与D-荧光素，肿瘤的发展的各个阶段期间监测路径特定的信令。小心，以确保每次Renilla荧光素酶信号已完全消退之前收购萤火虫荧光素酶信号。
- 由于4T1肿瘤发展和进步，海肾荧光素酶的收购应被归一化到在作为一种手段正常化和跟踪初级肿瘤生长的肿瘤细胞接种的时间的测量值的初始海肾。更重要的是，计算RLR值随着时间的推移，将建立单独信令系统相对于肿瘤的生长和发展的时间调节。
- 在3-4周后，的4T1细胞移植到乳腺脂肪垫明显肺转移明显。比较计算原发肿瘤的肺RLR值与建立个人相对于肿瘤的生长和转移的信号系统调节的空间。
6。双生物发光成像的两个独特的细胞类型中的一种动物
- 工程师1乳腺癌细胞系中稳定表达的CMV启动子驱动的海肾荧光素酶作为如上所述。重复此工程过程使用CMV启动子驱动的第二不同的乳腺癌细胞株上的萤火虫荧光素酶。
- 在此，我们混合Renilla荧光素酶表达的4T1细胞的转移性和同源的萤火虫荧光素酶的表达4T07同行10，11。这些混合的乳腺癌细胞群的不同比例的如上述那样的乳腺脂肪垫随后注入。
- 立即获得萤火虫和海肾荧光素酶的图像，到建立初始RLRs，代表一个给定的接种细胞混合物。
- 纵向双生物发光成像将可视化和跟踪变化的原发肿瘤内的细胞的组合物，以及每个乳腺癌衍生物相对于肿瘤的生长和发展的时空转移的。
- 可选地，个体乳腺癌细胞种群可以在小鼠接种到不同的位置（ 即左，右腹部乳腺脂肪垫）评估的系统性影响这两个群体表现出了彼此在各阶段的肿瘤生长和转移的。
7。代表性的成果：
双生物发光成像的主要优势在于一个事实，即每幅图像是内部一致的控制，如持续信号来自原发肿瘤的功能作为一个重要的指标来衡量整体成功或失败的每个海肾和萤火虫收购。这方面的摄像程序的过程中是特别重要的收购海肾荧光素酶的活性，其腔肠素的基板是高度敏感的氧化，在其标注自动致发光的结果。图1A示出了该副作用的一个例子，它立即表现作为非特异性的荧光信号是来自于肠道中，不是既定的原发肿瘤。通常情况下，这些非特异性的腔肠素信号transpirË下列失败静脉注射本海肾荧光素酶底物。然而，一旦健壮原发性肿瘤衍生的海肾信号已经获得（图1B中， 左图像 ），它是安全的，继续进行在捕获来自成像萤火虫荧光素酶（图1B中， 右面板 ），其D-荧光素的特定的信令通路测量IP注射后的基板是高度稳定的，并产生背景自动发光的可以忽略不计的水平。
图1。，获取海肾和萤火虫-衍生的生物发光图像计算体内 RLRs。（A）的一个例子的一个失败的IV注射腔肠素，导致非特异性信号从肠道。圈和PT表示原发肿瘤的大致位置。（B）鼠标一个成功的海肾收购轴承4T1原发肿瘤和pulmonary转移（左图脂肪垫的植入4周后）。的相应的萤火虫的收购使计算从原发肿瘤和肺转移的RLRs。（C）原发肿瘤和肺转移RLRs的图形表示从小鼠B组（n = 4）计算的。
Discussion
生物发光成像技术的绝对权力在于他们有能力进行量化复杂的纵向研究，这里涉及使用积极的4T1乳腺癌细胞的肿瘤生长和转移的。因为这些程序依赖于两种荧光素酶报告基因构建体的稳定整合，这些技术可以很容易地适应和翻译成其它癌细胞系中的不同肿瘤的潜伏期和转移能力。这里所示的结果相似，算出具体RLRs内缓慢发展的原发性肿瘤和其最终转移允许实时时空识别特定的信令转移性肿瘤进展的，不论它们的持续时间的延迟期间蒸发的事件。经鉴定特异性启动子调控事件，重要的是切除原发肿瘤和转移病灶的性能标准免疫组化和差异升的基因表达分析，以验证的内源基因和/或蛋白质的类似的调节。
从技术上讲，双生物发光分析的主要挑战在于在相对短的时间Renilla荧光素酶信号。因此，这种成像技术需要显着优化的尾静脉注射程序，以及单独注射的动物的直接成像，一个过程是耗费时间和成像的萤火虫荧光素酶的相对有点低效。最近，Promega公司推出“Viviren”，这表示第二代的荧光素酶的基板，其站点通过酯化氧化被阻塞，直到的这种分子增益进入细胞，在该点的分子是迅速脱酯化。总的来说，这种新颖的基板有效地降低自动发光和非特异性的修改和/或耦合到海肾诱导的自动发光12的退化。在这样做时，这种新的renill荧光素酶底物产生更明亮的发光信号，但过高的成本与获取和使用“Viviren”提供必要的研究相对较少，在双生物发光分析，以评估该基板上的整体效用。最后，任何生物发光测定法的灵敏度是关键取决于操作性中获取单个光单元的CCD照相机。事实上，这些技术的提高，我们预计在未来我们的能力，可视化复杂的光介导的生物发光反应，可能会蒸发，有效地自由移动的动物13点。
Disclosures
没有利益冲突的声明。
Acknowledgments
WPS是支持的，部分资金从美国国家卫生研究院（CA129359），为防治基金会（BCTR0706967），国防部（BC084561），和塞德曼癌症中心的Susan G. Komen，而MKW的支持从美国癌症协会的奖学金（PF-09-120-01）。这项工作提供了额外的支持，成像研究中心的案例，案例综合癌症中心（P30 CA43703），囊性纤维化中心（P30 DK027651）。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| pGL4.2-Puro [luc2/Puro] Vector | Promega Corp. | E6751 | |
| Glomax Mult-idection system | Promega Corp. | ||
| IVIS 200 series | Caliper Life Sciences | ||
| Dual luciferase reporter Assay system | Promega Corp. | E1960 | |
| Rediject c–lenterazine-h | Caliper Life Sciences | 760506 | |
| D-Luciferin K-Salt | Caliper Life Sciences | 122796 |
References
- Wetterwald, A. Optical imaging of cancer metastasis to bone marrow: a mouse model of minimal residual disease. Am. J. Pathol. 160, 1143-1153 (2002).
- Wendt, M. K., Drury, L. J., Vongsa, R. A., Dwinell, M. B. Constitutive CXCL12 Expression Induces Anoikis in Colorectal Carcinoma Cells. Gastroenterology. 135, 508-508 (2008).
- Wendt, M., Schiemann, W. Therapeutic targeting of the focal adhesion complex prevents oncogenic TGF-beta signaling and metastasis. Breast Cancer Research. 11, R68-R68 (2009).
- Korpal, M. Imaging transforming growth factor-beta signaling dynamics and therapeutic response in breast cancer bone metastasis. Nat Med. , (2009).
- Giampieri, S. Localized and reversible TGFbeta signalling switches breast cancer cells from cohesive to single cell motility. Nat Cell Biol. 11, 1287-1296 (2009).
- Giampieri, S., Pinner, S., Sahai, E. Intravital imaging illuminates transforming growth factor beta signaling switches during metastasis. Cancer Res. 70, 3435-3439 (2010).
- DeNardo, D. G. CD4(+) T cells regulate pulmonary metastasis of mammary carcinomas by enhancing protumor properties of macrophages. Cancer Cell. 16, 91-102 (2009).
- Wyckoff, J. A Paracrine Loop between Tumor Cells and Macrophages Is Required for Tumor Cell Migration in Mammary Tumors. Cancer Res. 64, 7022-7029 (2004).
- Kim, M. Y. Tumor self-seeding by circulating cancer cells. Cell. 139, 1315-1326 (2009).
- Aslakson, C. J., Miller, F. R. Selective events in the metastatic process defined by analysis of the sequential dissemination of subpopulations of a mouse mammary tumor. Cancer Res. 52, 1399-1405 (1992).
- Wendt, M. K., Smith, J. A., Schiemann, W. P. Transforming growth factor-beta-induced epithelial-mesenchymal transition facilitates epidermal growth factor-dependent breast cancer progression. Oncogene. 29, 6485-6498 (2010).
- Hawkins, E., Unch, J., Murhpy, N., Vidugiriene, J., Scurria, M., Klaubert, D., Wood, K. Bright Light, No Lysis. Measuring Renilla Luciferase Luminescence in Living Cells. , Promega. (2005).
- Roncali, E. New device for real-time bioluminescence imaging in moving rodents. J. Biomed. Opt. 13, 054035-054035 (2008).
