Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Biology

Visualisering av Vascular Ca 2 + Signalering Triggade av parakrina Härledda ROS

doi: 10.3791/3511 Published: December 21, 2011

Summary

En effektiv metod för att få insikt i att visualisera parakrina-derived ROS induktion av endotel Ca2 +-signalering beskrivs. Denna metod tar fördel av att mäta parakrina härrör ROS utlöste Ca2 + mobilisering i vaskulära endotelceller i en co-kultur-modellen.

Abstract

Oxidativ stress har varit inblandad i ett antal patologisk tillstånd inklusive ischemi / reperfusion skador och sepsis. Begreppet oxidativ stress hänvisar till avvikande bildningen av ROS (reaktivt syre arter), som inkluderar O 2 • -, H 2 O 2, och hydroxylradikaler. Reaktiva syreradikaler påverkar en mängd olika cellulära processer, inklusive signaltransduktion, celltillväxt och celldöd 1-6. ROS har potential att skada kärl och celler orgel direkt, och kan initiera sekundära kemiska reaktioner och genetiska förändringar som i slutändan leder till en förstärkning av den initiala ROS-medierad vävnadsskada. En viktig del av förstärkningen kaskad som förvärrar irreversibla vävnadsskador är rekrytering och aktivering av cirkulerande inflammatoriska celler. Under inflammation, inflammatoriska celler producerar cytokiner såsom tumörnekrosfaktor-α (TNF) och IL-1 somaktivera endotelceller (EG) och epitelceller och ytterligare förstärka det inflammatoriska svaret 7. Vascular endothelial dysfunktion är ett etablerat inslag av akut inflammation. Makrofager bidra till endoteldysfunktion vid inflammation av mekanismer som fortfarande oklara. Aktivering av makrofager resulterar i det extracellulära utsläpp av O 2 • - och olika pro-inflammatoriska cytokiner, som triggar patologiska signalering i angränsande celler 8. NADPH oxidases är de stora och primära källan för ROS i de flesta celltyper. Nyligen visas det av oss och andra 9,10 som ROS produceras av NADPH oxidases förmå mitokondriella ROS-produktion under många patofysiologiska förhållanden. Därför mätning av mitokondriella ROS-produktionen är lika viktigt Förutom att mäta cytosoliska ROS. Makrofager producerar ROS av flavoprotein enzymet NADPH-oxidas som spelar en central roll i inflammation. När den är aktiveradfagocytiska NADPH-oxidas producerar stora mängder av O 2 • - som är viktiga i den mottagande försvarsmekanism 11,12. Även parakrina-derived O 2 • - spelar en viktig roll i patogenesen av vaskulära sjukdomar, visualisering av parakrina ROS-inducerad intracellulär signalering inklusive Ca 2 + mobilisering är fortfarande hypotes. Vi har utvecklat en modell där aktiverade makrofager används som en källa till O 2 • - att transduce en signal till angränsande endotelceller. Med hjälp av denna modell visar vi att makrofager som härrör O 2 • - leda till kalcium signalering i angränsande endotelceller.

Protocol

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Reaktiva syreradikaler kan mätas i levande celler med oxidation känsliga färgämnen (1 & 2) eller med hjälp av plasmid sensorer (3 & 4) genom konfokalmikroskopi.

1. Visualisering av cytosolic ROS i J774 celler

  1. Väx J774.1 mus monocyte-derived makrofager (10 6 celler / ml) på glas botten 35 mm-rätter (Harvard apparater) för 48 h.
  2. Utmana celler med TLR-agonister (2 mikrogram / ml, Lipo-teichoic syra-TLR2 agonist, 10μg/ml, Poly (I: C)-TLR3 agonist, 1 mikrogram / ml LPS-TLR4 agonist) i 6 timmar vid 37 ° C.
    Obs: Makrofager behandlas på liknande villkor har använts för samarbete kultur modell Ca 2 + mobilisering.
  3. Lägg till oxidation känsliga färg H 2 DCF-DA (Invitrogen) för att ge en slutlig koncentration på 10 nm i ECM (extracellulära mediet: 121 mM NaCl, 5 mm NaHCO 3, 10 mM Na-HEPES, 4,7 mM KCl, 1,2 mm KH 2 PO 4, 1,2 mm MgSO 4, 2 mm CaCl 2, 10mM glukos och 2,0% dextran, pH 7,4, alla från Sigma) innehållande 2% BSA till rätter och inkubera celler i 20 minuter innan visualisering i konfokalmikroskopi.
  4. Efter färgämne lastning, visualisera celler placeras på en temperaturstyrd skede av en lämplig bildhanteringssystem. Vi använder Carl Zeiss LSM 510 Meta konfokala Imaging System tillsammans med Argon-jon-laserkälla på en excitation av 488 nm för DCF fluorescens med 40x olja mål 13 (Fig. 1A och D).
  5. Analysera bilder med ImageJ programvara (1,44), fritt tillgänglig programvara från National Institutes of Health Rasband (, var ImageJ, US National Institutes of Health, Bethesda, Maryland, USA, http://rsb.info.nih.gov/ij / , 1997-2009).

2. Visualisering av nerna i J774 celler

  1. Väx J774.1 mus monocyte-derived makrofager (10 6 celler / ml) på glas botten 35 mm-rätter (Harvard apparater) för 48 h.
  2. Utmana cellerna med TLR ligander att framkalla nerna produktion (2 mikrogram / ml, Lipo-teichoic syra-TLR2, 10μg/ml, Poly (I: C)-TLR3, 1 mikrogram / ml LPS-TLR4) för 6 h vid 37 ° C.
  3. Lägg till mitokondrie-superoxid indikator MitoSOX Röd (Invitrogen) för att ge en slutlig koncentration på 5 mikrometer i ECM innehållande 2% BSA till rätter och inkubera celler för 30 min vid 37 ° C för att möjliggöra lastning av MitoSOX Röd.
  4. Efter färgämne lastning, visualisera celler på en temperaturstyrd skede av ett Carl Zeiss LSM 510 Meta konfokala bildsystem par med Argon-jon-laserkälla på en excitation av 561 nm för MitoSOX Red fluorescens med 40x olja mål (Fig. 1B och E).
  5. För styrning experiment, efter färgen lastning lägga PBS eller DMSO (negativ kontroll) eller 2μM Antimycin A (som mitokondriell superoxid generator-positiv kontroll) till celler innan bilden provet som beskrivs i 2,4 (fig 1c).
  6. Analysera bilder med ImageJ programvara (1,44).

3. Visualizatiom i cytosoliskt ROS i stabila Hyper-cyto MPMVECs

  1. Vi använder pHyPer-CYTO (Evrogen) ett däggdjur uttryck vektor kodar en fluorescerande sensor Hyper som lokaliserar i cytoplasman och specifikt sinnen submicromolar koncentrationen av H 2 O 2 14.
  2. Transfektera Murine Pulmonell endotelceller i små kärl (MPMVECs) med pHyPer-CYTO vektor med antingen elektroporation eller reagenser transfektion. Vi använder 10 x 10 6 celler och transfektera med 10 mikrog pHyPer-CYTO via elektroporation med BioRad Gene PULSER electroporator system (250V, 500 uF). Kultur MPMVECs i DMEM mediet kompletteras med 10% FBS, oväsentliga aminosyror, endothelial growth komplettera och antibiotika.
    OBS: Efter transfektion, tallrik celler vid låg densitet för att underlätta koloni tillväxt.
  3. Byt medium med komplett odlingsmedium kompletteras med 500 mikrogram / ml G418, 48 timmar efter transfektion. Skärm för kloner som har högst andel H yPer positiva celler och passage Hyper positiva kloner för att öka antalet Hyper positiva celler (Fig. 2).
    Observera: Vi använder seriell spädning av celler för klonurvalet av enstaka celler och skärm för stabila celler högt uttrycka Hyper.
  4. Grow stabil Hyper-CYTO MPMVECs på 0,2% gelatin bestruket täckglas (80% sammanflödet). Nästa dag utmaning celler med TLR ligander (2 mikrogram / ml, Lipoteichoic syra-TLR2, 10μg/ml, Poly (I: C)-TLR3, 1 mikrogram / ml LPS-TLR4) för 6 tim vid 37 ° C. Obehandlade celler fungerar som kontroll.
  5. Efter behandling, montera täckglas på Attofluor cell kammare (Invitrogen). Tillsätt 1 ml före värmde Hanks balanserad saltlösning (HBSS) till kammaren och placera kammare på en temperaturstyrd skede av Carl Zeiss LSM 510 Meta konfokala Imaging System. Visualisera och bild fluorescens förändring vid en excitation av 488 nm med 40x olja mål (Fig. 3A och D).
  6. Analysera bilder med ImageJ programvara (1,44) (se avsnitt 6).
Avdelning "> 4. Visualisering av mitokondriell ROS i stabila Hyper-dMito MPMVECs

  1. Vi använder pHyPer-dMito (Evrogen) ett däggdjur uttryck vektor kodning mitokondrier riktade Hyper som lokaliserar i mitokondrierna och i synnerhet sinnen submicromolar koncentrationen av H 2 O 2.
  2. Transfektera MPMVECs med pHyPer-dMito och genererar stabila Hyper-dMito MPMVECs följande steg beskrivs i avsnitt 3.2-3.3.
  3. Grow stabil Hyper-dMito MPMVECs på 0,2% gelatin bestruket täckglas (80% sammanflödet).
  4. Nästa dag utmaning celler med TLR ligander (2 mikrogram / ml, Lipoteichoic syra-TLR2, 10μg/ml, Poly (I: C)-TLR3, 1 mikrogram / ml LPS-TLR4) för 6 tim vid 37 ° C. Obehandlade celler fungerar som negativ kontroll. Lägg 2μM Antimycin A (mitokondriellt superoxid inducerare-positiv kontroll) innan visualisera prov.
  5. Efter behandling, montera täckglas på Attofluor cell kammare (Invitrogen). Tillsätt 1 ml förvärmda Hanks balanserad saltlösning (HBSS) till kammarenoch placera kammare på en temperaturstyrd skede av Carl Zeiss LSM 510 Meta konfokala Imaging System. Visualisera och bild fluorescens förändring vid en excitation av 488 nm med 40x olja mål (Fig. 3B, C och E).
  6. Analysera bilder med ImageJ programvara (1,44) (se avsnitt 6).

5. Co-kultur modell för visualisering av parakrina-derived ROS utlöst Ca 2 + signalering i endotelceller

För visualisering och mätning av [Ca2 +] i förändringar vi använder en Ca 2 + känsliga fluorescerande färg fluo-4 AM (Invitrogen).

  1. Odla MPMVECs på 0,2% gelatin belagt 25mm glas täckglas (80% sammanflödet).
  2. Inkubera cellerna odlas på täckglas i rumstemperatur i 30 min i ECM innehållande 2% BSA och 0,003% pluronic syra med 5 mikroM fluo-4 AM (Invitrogen) slutlig koncentration för att möjliggöra lastning av fluo-4 AM. Efter lastning, tvätta cellerna med experimentella imaging-lösning (ECM innehåller 0.25% BSA) som innehåller sulfinpyrazon för att minimera färgning av förlust.
  3. Efter lastning fluo-4, montera täckglas på Attofluor cell kammare (Invitrogen). Tillsätt 800μl före värmde experimentella avbildning lösning på kammaren och placera den på en temperaturstyrd skede av Carl Zeiss LSM 510 Meta konfokala Imaging System.
  4. I ett separat rör märka nonactivated eller aktiverade makrofager isolerade från antingen vildtyp eller gp91 phox-/ - möss (behandlade med LPS för 6 tim) med cell tracker röd CMTPX (500ng/ml) (Invitrogen) i ECM innehållande 2% BSA och 0,003% pluronic syra. Tvätta och resuspendera cellerna med 200μl av experimentell avbildning lösning.
  5. Lägg märkta makrofager till fluo-4:00 laddad MPMVECs i kammaren församlingen.
  6. Spela in de gröna och röda fluorescens alla 3s i 10-20 minuter med hjälp av Carl Zeiss LSM510 Meta konfokala imaging-system med en Argon-jon-laserkälla med excitation vid 488 och 561 nm för fluo-4 AM och cell-tracker röd fluorescens respectively (Fig.4 AC).
    Obs: Alternativt kan J774.1 cellinje skall användas för att framkalla MPMVECs Ca 2 + mobilisering.
  7. Analysera fluo-4 fluorescensintensiteten ändringar med ImageJ programvara (1,44) (se avsnitt 6).

6. Dataanalys med ImageJ programvara

Överföra bilderna från den konfokala systemet som en. LSM-fil för dataanalys. ZEN 2009 och ZEN 2010 programvara som levereras med LSM 510 Meta konfokalmikroskop eller LSM 710 multiphoton konfokalmikroskop sparar respektive filer i. LSM-format. Vi rekommenderar att använda den här personen. LSM filer för bildanalys som original kvalitet bibehålls. Detta filformat kan direkt öppnas i bildanalys programmet Bild J. Följande steg ger ett exempel på kvantitativ analys av en bild. Inga ytterligare insticksmoduler krävs för denna dataanalys.

  1. Öppna. LSM eller. TIFF-fil i Image J programmet med Arkiv> Öppna
  2. Klicka på fliken BILD> COLOR> Split kanaler och dela den gröna och DIC kanaler. Använd bilden från den gröna kanalen för senare analys.
  3. Dubbelklicka och välj "Elliptical borsten val"-fliken och ställ in pixelvärde till 20.
  4. För Hyper-CYTO bilder, klicka på en enda cell för att definiera den cirkulära området mätning. Tryck sedan på "M" för att mäta graden av det markerade området. Värdena är kvar i ett nytt resultat fönster.
  5. Nästa genom att hålla "Shift" tangenten klicka på en annan cell för att välja ett annat område, följt av att trycka på "M". Intensiteten registreras i resultatfönstret. Upprepa steg 4-5 på 50 olika celler.
  6. För Hyper d-mito bilder som pixelvärdet till 10 i den elliptiska pensel valet. Regionen av intresse (ROI) måste manuellt spåras bland annat mitokondrier av särskilda celler.
  7. Använda frihand, spår regionen runt mitokondrierna och tryck sedan på "M". Upprepa steg 6-7 på 50 olika celler.
  8. Kopiera mig ett värde av resultaten fönstret och klistra in i ett Excel-ark eller någon programvara för att rita resultaten. Vi använder antingen SigmaPlot eller Graphpad PRISM att plotta data som diagrammet.

7. Representativa resultat

Figur 1 visar cytosoliskt och mitokondrie ROS-produktionen på utmaning med TLR ligander. Representant konfokala bilder visar ökning med DCF (cytosolic) och MitoSOX Röd (mitokondrier) fluorescens efter 6 h av stimulering. Fluorescens förändringar normaliserades och uttrycks som faldig förändring.

Figur 2 visar generering av stabila Hyper-cyto och Hyper-dMito endotelceller. Mus endotelceller var transfekterade med pHyPer-CYTO eller pHyPer-dMito plasmid konstruktioner via elektroporation. Celler stabilt uttrycka plasmider valdes med G418 i två veckor. Efter valet var utspädd celler seedade i 96 brunnar. Individuella kolonier var isolerade och avbildat för homogena uttryck.

e_content "> Figur 3 visar mätningen av endotelceller cytosolic och mitokondrie H 2 O 2 nivåer. representant konfokala bilder visar ökning med Hyper-CYTO (cytosoliskt) och Hyper-dMito (mitokondrier) fluorescens efter 6 h på stimulans. fluorescensintensiteten förändringar normaliserades och uttryckt som faldig förändring.

Figur 4 visar bedömningen av makrofager som härrör ROS inducerad endothelial cytosoliskt Ca 2 + mobilisering. LPS-stimulerade makrofager lades in på lungorna mikrovaskulära endotelceller (PMVEC) som tidigare hade varit laddad med den intracellulära Ca 2 + ([Ca 2 +] i) indikator dye Fluo-4. Tillämpning av vild typ LPS-aktiverade makrofager framkallat en [Ca 2 +] i stigande PMVECs som var försvagad genom knockout av funktionella NADPH-oxidas (gp91 phox-/ -).

Figur 1
Figur 1. Visualizatiom av makrofag genereras cellulära ROS och mitokondriella superoxid. J774.1 celler utmanas med TLR2, 3 och 4 ligander (2 mikrogram / ​​ml, Lipoteichoic syra-TLR2, 10μg/ml, Poly (I: C)-TLR3, 1 mikrogram / ​​ml LPS-TLR4). För 6 h vid 37 ° C. Efter behandling celler var lastade med (A) cellulär ROS indikator (H 2 DCF-DA, grön fluorescens) eller (B) mitokondriell superoxid indikator (MitoSOX Röd, röd fluorescens). (C) Antimycin En användes som positiv kontroll för mitokondriell ROS produktion. Fluorescensintensitet förändringar bedömdes med hjälp konfokalmikroskopi. (D) och (E) Kvantifiering av Medel Fluorescens förändring.

Figur 2
Figur 2. Schematisk bild för att generera stabila uttryck av endotelceller cytosolic och mitokondrie ROS indikatorer.

Figur 3
Figur 3. V. isualization av endotelceller cytosolic och mitokondrie H 2 O 2 nivåer MPMVECs stabilt uttryck (A) Hyper-CYTO eller (B) Hyper-dMito var utmanade med TLR2, 3 och 4 ligander (2 mikrogram / ​​ml, Lipoteichoic syra-TLR2, 10 mikrogram / ml, Poly (I: C)-TLR3, 1 mikrogram / ml LPS-TLR4) för 6 tim vid 37 ° C. (C) Antimycin En användes som positiv kontroll för mitokondriell ROS produktion. Efter behandlingen var fluorescensintensiteten förändringar utvärderas med hjälp av konfokalmikroskopi. (D) och (E) Kvantifiering av Medel Fluorescens förändring.

Figur 4
Figur 4. Makrofager som härrör ROS framkalla nedsatt endotel Ca 2 + mobilisering. (A) Schematisk representation av endotelceller / makrofager co-kultur-modellen studie. (B) Färskt isolerade murin makrofager från både WT och gp91phox null möss (The Jackson Laboratory) har aktiverats med 1 mikrogram / ​​ml LPS i 6 h. Macrophages var märkta med cell-tracker Red (röd) och läggas in på Fluo-4 laddad PMVECs (grön) för att bedöma parakrina O 2 • -. signalering (C) LPS-aktiverade makrofager isolerade från WT möss utlöste stora och snabba Ca 2 + mobilisering i PMVECs jämfört med makrofager från gp91phox null möss. Validering av makrofag aktivering har visats tidigare.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Den metod som beskrivs här tillåter snabb och kvantitativ mätning av reaktiva syreradikaler i levande celler, antingen med hjälp av oxidation känsliga färgämnen eller plasmid sensorer. Agonister av TLRs (Toll-liknande receptorer) är föreningar som stimulerar cellerna via TLRs som finns på cellytan och utlösa nedströms signalvägar 15. I vårt protokoll, använde vi tre olika TLR-agonister nämligen, Lipo-teichoic syra-TLR2 agonist, Poly (I: C).-TLR3 agonist, LPS-TLR4 agonist som rapporteras att inducera ROS som modellsystem för att demonstrera ROS mätning . Mätning av ROS med oxidanter känslig färg är snabb och kan användas för att mäta olika ROS arter. Användningen av plasmid baserad sensor Hyper upptäcker selektivt H 2 O 2 nivåer. H 2 O 2 är mer stabil oxidationsmedel och även användning av Hyper CYTO och Hyper-dMito i en stabil cell inställning ger den fördelen framför foto-autooxidation av ROS känsliga fluorescerande färger.Hyper orsakar inte artefaktuella ROS generation och kan användas för detektion av snabba förändringar av H 2 O 2-koncentration i olika cell fack under olika fysiologiska och patologiska tillstånd. Celler stabilt uttrycka Hyper sensorer används för klonurvalet av befolkningen som ger mer tillförlitliga och korrekta mätningar av H 2 O 2 nivåer. Viktigt beskriver metoden också att upptäcka och kvantitativ mätning av Ca 2 + mobilisering i levande celler som utlöses av parakrina härrör ROS från närliggande celler, såsom medfödda immunceller. Denna experimentella procedur kombineras med konfokalmikroskopi kan vara mycket användbara för att avslöja viktig tid och rum förändringar i transduktion cell signal händelser i synnerhet i fall där två olika celltyper är inblandade. Men företrädaren experiment som beskrivs i detta dokument är bara ett exempel på den typ av studerade interaktion kan denna teknik lätt endapted att studera cellulära interaktioner mellan flera levande cell typer.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Inga intressekonflikter deklareras.

Acknowledgments

Detta arbete stöddes av National Institutes of Health bidrag (R01 HL086699, HL086699-01A2S1, 1S10RR027327-01) till MM. Vår artikel är delvis stöds av Carl Zeiss mikrovisualisering LLC.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Attofluor cell chamber Invitrogen A7816
Antimycin A Sigma-Aldrich A8674
DMEM low glucose medium Invitrogen 10567-014
Endothelial growth factor supplement (ECGS) Upstate, Millipore 02-102
Fetal Bovine Serum Invitrogen 12662011
G418 Invitrogen 10131-027
Gelatin Sigma-Aldrich G1393
H2DCFDA Invitrogen D-399
LPS Sigma-Aldrich L4516
LTA Sigma-Aldrich L2515
MitoSOX Red Invitrogen M36008
Opti-MEM I Reduced Serum Medium Invitrogen 51985091
Pen/Strep (10x) Invitrogen 15140163
pHyPer-cyto Evrogen FP941
pHyPer-dMito Evrogen FP942
Poly(I:C) Sigma-Aldrich P0913
Prism software 5.0 GraphPad Software Inc.
SigmaPlot 11.0 Systat software, Inc.
Trypsin-EDTA (10x) Invitrogen 15400054
T-25 Flasks Corning 430639
T-75 Flasks BD Biosciences 353136
96-well TC micro well plate BD Biosciences 353072
Zen 2009 software Carl Zeiss, Inc.

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Madesh, M. Selective role for superoxide in InsP3 receptor-mediated mitochondrial dysfunction and endothelial apoptosis. J. Cell. Biol. 170, 1079-1090 (2005).
  2. Droge, W. Free radicals in the physiological control of cell function. Physiol. Rev. 82, 47-95 (2002).
  3. Hamanaka, R. B., Chandel, N. S. Mitochondrial reactive oxygen species regulate cellular signaling and dictate biological outcomes. Trends Biochem. Sci. 35, 505-513 Forthcoming.
  4. Hawkins, B. J. S-glutathionylation activates STIM1 and alters mitochondrial homeostasis. J. Cell. Biol. 190, 391-405 (2010).
  5. Madesh, M., Hajnoczky, G. VDAC-dependent permeabilization of the outer mitochondrial membrane by superoxide induces rapid and massive cytochrome c release. J. Cell Biol. 155, 1003-1015 (2001).
  6. Finkel, T., Holbrook, N. J. Oxidants oxidative stress and the biology of ageing. Nature. 408, 239-247 (2000).
  7. Rittirsch, D., Flierl, M. A., Ward, P. A. Harmful molecular mechanisms in sepsis. Nat. Rev. Immunol. 8, 776-787 (2008).
  8. Sanlioglu, S. Lipopolysaccharide induces Rac1-dependent reactive oxygen species formation and coordinates tumor necrosis factor-alpha secretion through IKK regulation of NF-kappa. 276, 30188-30198 (2001).
  9. Hawkins, B. J., Madesh, M., Kirkpatrick, C. J., Fisher, A. B. Superoxide flux in endothelial cells via the chloride channel-3 mediates intracellular signaling. Mol. Biol. Cell. 18, 2002-2012 (2007).
  10. Vliet, A. vander NADPH oxidases in lung biology and pathology: host defense enzymes and more. Free Radic. Biol. Med. 44, 938-955 (2008).
  11. Babior, B. M., Kipnes, R. S., Curnutte, J. T. Biological defense mechanisms. The production by leukocytes of superoxide, a potential bactericidal agent. J. Clin. Invest. 52, 741-744 (1973).
  12. Lambeth, J. D. NOX enzymes and the biology of reactive oxygen. Nat. Rev. Immunol. 4, 181-189 (2004).
  13. Mukhopadhyay, P. Simultaneous detection of apoptosis and mitochondrial superoxide production in live cells by flow cytometry and confocal microscopy. Nat. Protoc. 2, 2295-2301 (2007).
  14. Niethammer, P., Grabher, C., Look, A. T., Mitchison, T. J. A tissue-scale gradient of hydrogen peroxide mediates rapid wound detection in zebrafish. Nature. 459, 996-999 (2009).
  15. Medzhitov, R. Toll-like receptors and innate immunity. Nat. Rev. Immunol. 1, 135-145 (2001).
Visualisering av Vascular Ca<sup> 2 +</sup> Signalering Triggade av parakrina Härledda ROS
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Mallilankaraman, K., Gandhirajan, R. K., Hawkins, B. J., Madesh, M. Visualization of Vascular Ca2+ Signaling Triggered by Paracrine Derived ROS. J. Vis. Exp. (58), e3511, doi:10.3791/3511 (2011).More

Mallilankaraman, K., Gandhirajan, R. K., Hawkins, B. J., Madesh, M. Visualization of Vascular Ca2+ Signaling Triggered by Paracrine Derived ROS. J. Vis. Exp. (58), e3511, doi:10.3791/3511 (2011).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
simple hit counter