Summary
Descrevemos os métodos de larga escala de gravação de várias unidades e potencial de campo local, comportando roedores com sondas de silício. Unidade de fabricação, o apego sonda para a unidade e os processos de implantação de teste são ilustrados em detalhes suficientes para a replicação fácil.
Abstract
Um dos grandes desafios da neurociência está ligando para o comportamento da atividade coletiva de montagens neurais. Entendimento de input-output relações de neurônios e circuitos requer métodos com a seletividade espacial e resolução temporal adequada para a análise mecanicista de conjuntos neurais em que o animal se comportar, ou seja, gravação de amostras representativas de grandes isolados neurônios individuais. Monitoramento conjunto da atividade neuronal tem progredido significativamente na última década em animais pequenos e grandes cérebros, incluindo seres humanos 1-11. De vários sites de gravação com dispositivos baseados em silício são particularmente eficazes graças à sua escalabilidade, volume pequeno e desenho geométrico.
Aqui, descrevemos métodos para gravar vários neurônios individuais e potenciais de campo locais em comportar-se de roedores, usando comercialmente disponíveis sondas micro-usinados de silicone com componentes feitos sob encomenda de acessórios. Existem duas opções de base fou interface sondas de silício para pré-amplificadores: placas de circuito impresso e cabos flexíveis. Empresas Sonda Abastecimento ( http://www.neuronexustech.com/ ; http://www.sbmicrosystems.com/ ; http://www.acreo.se/ ) geralmente oferecem o serviço de ligação e entregar sondas ligados a placas de circuito impresso ou cabos flexíveis. Aqui, nós descrevemos a implantação de uma haste 4, sonda 32-site ligado ao cabo de poliimida flexível, e montado sobre um microdrive móvel. Cada passo da preparação da sonda, microdrive construção e cirurgia é ilustrado de modo a que o utilizador final pode replicar facilmente o processo.
Protocol
1. Construção do microdrive
Todas as unidades são feitos dos mesmos elementos básicos: uma parte móvel, que leva o eletrodo e uma parte fixa, que está ancorado ao crânio. Um microdrive ideal permite lisa mas longo de viagem suficiente do eléctrodo em múltiplos pequenos passos, é suficientemente robusta para impedir o movimento acidental do eléctrodo, fácil de manipular pelo experimentador, sem interferir com o comportamento do animal, de tamanho pequeno e um peso leve. Como um resultado destes requisitos concorrentes, Suite unidades diferentes aplicações diferentes.
Apenas 4 peças são necessárias para construir a nossa unidade básica: a de bronze parafuso de cabeça plana, uma porca de correspondência, uma ponte de plástico preparado a partir de um único cabeçalho linha pinos e duas placas de corte de metal personalizado.
- Quebre um pedaço de 3 pinos do cabeçalho
- Puxe o pino do meio.
- Ampliar o buraco perfurando-o com um tamanho de broca # 55.
- Corte um dialer usando a torneira 00-90.
- Corte dois pedaços da placa de bronze.
- Arquivar os bordos das placas com uma dremmel.
- Perfurar um furo no meio de ambas as peças, utilizando um tamanho de broca # 65.
- Monte as peças de unidade, para que as placas de latão estão tocando os pinos. Para conseguir isso, inserir o parafuso de bronze através, sucessivamente, a placa de latão, o furo roscado cabeçalho pino, a placa de latão segundo, ea porca. Aperte o parafuso com cuidado para que o conjunto se torna estável.
- O pino de solda termina às placas de latão.
- Ficheiro a extremidade saliente do parafuso.
- Solda a porca para o parafuso. Tenha cuidado para não soldar a porca para a placa de bronze.
- Testar o movimento da unidade: girar o parafuso dos ponteiros do relógio para elevar a ponte de plástico.
2. Preparação da sonda de silício
Antes de fixar a sonda para a unidade, adicionar isolamento extra para a área de ligação da sonda para evitar cerebrospinal fluido (CSF) ou umidade de produzir curto-circuitos:
- Pesar e misturar os componentes elastoméricos Sylgard numa proporção de 10:1.
- Usando um aplicador de algodão afiada, aplicar o Sylgard até a extremidade superior da sonda.
- Deixar secar num forno pré-aquecido a 60 ° C durante 2 horas.
Para garantir que os locais de gravação são desprovidos de quaisquer detritos, as pontas de prova necessitam de ser limpos:
- Prepara-se uma diluição de 4% de detergente Contrad.
- Deixe a sonda embeber no detergente a 63 ° C durante pelo menos 2 horas.
- Lavar o detergente fora por meio de imersão a sonda repetidamente em água destilada.
Antes de fixar a sonda para a unidade, a impedância de cada local de gravação devem ser verificados:
- Mergulhe a sonda em solução salina 0,9%, e conectá-lo a uma impedância metros. Se os sites de gravação muitos têm impedância incorreta, repita os passos de 2,4-2,6 ou considere o uso de uma sonda diferente.Aqui usamos um módulo de condicionamento de Impedância de Frederick Haer, Co. (FHC), combinado com um seletor de canais caseiro. Alternativamente, um niPOD por NeuroNexus, Inc. ou NanoZ por Neuralynx, Inc. permite a monitorização da impedância de todos os canais sonda simultaneamente.
3. Aposição da sonda para o microdrive
- Usando uma lâmina de barbear, cortar sulcos múltiplas na ponte para criar uma superfície áspera.
- Appose a sonda para a ponte da unidade. Este procedimento é melhor realizada sob um microscópio de operação, mantendo a unidade com uma pinça e ajustando a sonda por um micromanipulador de modo que as hastes são perfeitamente paralelo com o parafuso de accionamento. Isso garante que durante o avanço, a sonda movimento hastes no tecido do cérebro sem "cortar" por ele. A profundidade exacta das pontas de sonda em relação à base de a unidade deve ser determinada nesta fase, tendo em consideração a profundidade da estrutura de destino a partir da superfície docrânio.
- A sonda é então fixado à ponte com cimento aderência.
- Opcional: para a visualização da faixa sonda no cérebro, DiI solução (1-2% diluído em etanol) pode ser aplicado à parte de trás da sonda nesta fase.
4. Preparando o crânio
Antes da cirurgia, os eletrodos de referência e terra, e as partes da gaiola de Faraday head-on são preparados:
- Corte dois pedaços 2 "de comprimento de fio de cobre, e terminar uma solda de cada fio de cobre isolado por cerca de 1 mm.
- Utilizando uma agulha, raspar a cabeça de um 00-90, 1/8 "parafuso de aço inoxidável e solda um pedaço de fio de cobre a ele. Solda tais aço inoxidável de terra de parafuso-eléctrodos requer um fluxo adequado (por exemplo, N-3 Todas as finalidades fluxo de La-Co) e elevadas temperaturas ponta de solda. cuidadosamente evitar qualquer solda de fluir para dentro da ranhura do parafuso. Isto irá ser utilizado como o eléctrodo de terra. Repita com outro parafuso e um fio de cobre para prepararo eletrodo de referência.
- Corte pedaços trapeziodal de malha de cobre. Estas peças serão montados para proteger o headstage.
Os instrumentos cirúrgicos e preparação são o mesmo que o utilizado em muitas cirurgias de pequenos animais. Toda a cirurgia é feita sob anestesia isoflurano profunda, usando condições assépticas, de acordo com as diretrizes do NIH aprovados. Por favor, note que a cirurgia (falso) mostrado neste vídeo é apenas para demonstração. Para fins apropriados visibilidade e filmagem, várias etapas preparatórias, precauções e procedimentos cirúrgicos de pós-operatório não são mostradas / visível ou discutido.
Antes da cirurgia, todos os componentes e materiais devem ser esterilizados, seguindo procedimentos adequados (consulte Diretrizes para Cirurgia Rodent sobrevivência; http://oacu.od.nih.gov/ARAC/surguide.pdf~~HEAD=NNS). Durante a cirurgia, um campo esterilizado no crânio é preparado e isolado por cortinas estéreis. No final da cirurgia, um antibiótico de largo espectro é umapplied localmente e um analgésico de longa acção é administrado por via intramuscular (por exemplo, a buprenorfina, [Buprenex] 0,05 mg / kg). Além disso, analgésico (por exemplo, ibuprofeno) é fornecido na água de beber em cerca de 60 mg/kg/24 h durante 5 dias. Para próprios procedimentos cirúrgicos e de anestesia, consultar fontes adequadas 12.
- Instale o animal no aparelho estereotáxico, fazer a barba e limpar o couro cabeludo 13.
- Corte a pele ao longo da linha média e afastar o couro cabeludo. Retire o periósteo, limpar e secar o crânio.
- Medir a localização ea distância entre bregma e lambda, e determinar as coordenadas x e y do local de implantação da sonda de acordo com um atlas estereotáxico 14. Marcar o local raspando uma cruz no crânio com um bisturi.
- Perfurar o crânio com uma broca de cabeça redonda (tamanho ¼) e parafusos de apoio da unidade (de aço inoxidável, 000-120, 1/16 ") na metade do osso, em diferentes placas ósseas na parte superior umnd no lado do crânio. Os parafusos irá fornecer âncoras com segurança vínculo chapelaria até o crânio.
- Faça furos acima do cerebelo e inserir no chão e eletrodos de referência preparada no passo 4.2. Para a gravação locais potenciais de campo (LFP), a escolha do local de referência é crítica. Este site é escolhido porque LFP cerebelar é a menor de todas as regiões corticais e artefatos musculares são mínimas neste local na linha média.
- Aplicar dentina activador (Metabond kit) usando uma escova pequena sobre toda a superfície do crânio. Lavar com soro fisiológico a 0,9%.
- Aplique o cimento dental (Metabond kit; siga as instruções do fabricante para a mistura) no crânio, cobrindo cuidadosamente os parafusos de fixação e de terra e eletrodos de referência, mas deixando o local de implantação da sonda claro.
- Garantir as abas de cobre quatro malhas (preparado na Fase 4.3) para o crânio. Para isso, cimentar a estreita base de cada um deles para as anteriores, lados esquerdo, direito, e posterior do crânio. Thcobre e nunca deve estar em contacto directo com o osso, mas sempre separados por uma camada de cimento.
5. Preparação da superfície do cérebro
- Usando um pouco de cabeça redonda broca, perfure ao redor do local de implantação em múltiplos estágios, enquanto frequentemente o osso irrigando com soro fisiológico.
- Retire cuidadosamente o retalho ósseo e irrigar a superfície do cérebro.
- Para a inserção de uma sonda de haste múltipla, uma tira larga de dura é removido. Duas ferramentas são necessários para remover a dura-máter: um bisturi e um gancho preparado a partir de uma agulha de insectos (alternativamente, um microeléctrodo de tungsténio padrão). Dobre a ponta da agulha empurrando contra uma superfície dura (lâmina de microscópio por exemplo, vidro), e anexá-lo a uma alça (aqui, um pedaço de madeira Q-tip, alternativamente, um porta-agulha microdissecting).
- Levante a dura com o gancho, e cortá-lo com um bisturi. Cuidado especial é tomado para evitar danificar o pia, os vasos ea superfície do neocórtex. Pequeno sangramento pode ser resolvidopor irrigação salina. Se o sangramento ocorre maior ou o neocórtex é comprometida de qualquer forma, deve-se considerar terminar a cirurgia e preparando outro animal.
6. Implantar a sonda
Nesta fase, a densidade ea orientação dos vasos superfície cortical são cuidadosamente avaliada. Coordenadas estereotáxicas deve ser ajustada, porque a sonda tem de penetrar no cérebro em uma área livre de vasos maiores.
Para a implantação, a montagem da unidade pode ser realizada com um jacaré ligada ao titular estereotáxica. Visibilidade ininterrupta da superfície do cérebro e as pontas de sonda são críticos para a penetração de sucesso.
- Lentamente inferior a sonda para baixo a cerca de 1 mm acima do alvo pretendido, enquanto constantemente irrigando a craniotomia com solução salina. Para gravação neocortical, as pontas de prova são reduzidos para o córtex de aproximadamente 0,5 mm e levantada para trás perto da superfície. Selar a craniotomia pela aplicação de uma mistura quente fundida de óleo de cera de parafina e através de uma agulha (10-20g de cera em óleo de parafina 10 mL, aquecida a 65 ° C). Antes da aplicação, arrefecer a mistura para 30 ° C e testar a densidade. Ele deve ser suave o suficiente para permitir o movimento da sonda fácil). Para facilitar a cobertura completa, a mistura pode ser derretido in situ por se aproximar a cera endurecido com a ponta de uma micro-cauterizer.
- Fixe a parte inferior da unidade para o crânio com cimento aperto, tendo o cuidado de deixar a porca livre para girar. É de extrema importância para evitar qualquer "colisão" acidental da unidade, nesta fase, caso contrário, a sonda irá danificar o córtex. Depois que a unidade é fixada ao crânio, o movimento suave da sonda deve ser verificada.
- Cimentar a parte do conector da sonda ao crânio.
7. Construindo o cabeça-de gaiola de Faraday
- Puxe para cima e montar os retalhos de malha de cobre em um cilindro de proteção em torno da sonda e drive. O cilindro também serve como um escudo elétrico contra o ruído ambiente e os artefatos de ondas lentas produzidas pelos bigodes carregadas em que o animal se comportar.
- Ajustar a altura do cilindro cortando-se o excesso de material de modo a malha de cobre está nivelada com a parte superior do conector da sonda.
- Soldar os fios a partir da referência de terra e os parafusos aos pinos apropriados do conector. Também solda retalhos de malha de cobre adjacentes em conjunto para garantir a sua continuidade elétrica e solda o fio terra para a malha de cobre.
- Aplicar uma camada de cimento aderência à malha de cobre de o reforçar e para evitar qualquer contacto directo entre o metal ea pele do animal. Opcionalmente, aplicar uma camada de resina epóxi para reforçar ainda mais o arnês.
- Testar o movimento do parafuso de accionamento.
- Cobrir o topo do arnês com um corte peça a partir de uma luva de borracha.
8. Gravação no animal movimentando-se livremente
- Depois de aprocomeu cuidados pós-operatórios, conectar o animal ao sistema de gravação usando um headstage alta impedância e um leve, ultraflexible cabo multi-strand. Contrabalançar o peso do capacete.
- Teste a qualidade de gravação de cada dia na homecage. A posição dos sítios de gravação é julgado por ambos os padrões de unidade de queima ea forma dos locais potenciais de campo. Diminuir gradualmente a sonda, rodando o parafuso por pequenos incrementos (tipicamente 1/8 a 1/4 de volta por dia, isto é, 35-70 micrómetros) até que a estrutura alvo é atingido.
9. Os resultados representativos
Sinais electrofisiológicos (potencial de campo local e actividade da unidade) variam dependendo da estrutura gravada eo comportamento actual do animal. A Figura 1 mostra exemplos de gravações CA1 do hipocampo de 32 canais, enquanto o rato está explorando um campo aberto. Observe o proeminente 8 Hz oscilação (theta banda) do potencial de campo local durante a exploração, com apoioerimposed spiking em hastes múltiplas e Sítios (exemplos de pontos indicados por setas). Para analisar a atividade neuronal unidade, os picos são detectados e classificados em unidades individuais, utilizando análise de cluster da sua onda 15-16.
Figura 1. CA1 do hipocampo gravações no rato comportando usando um 4 hastes x 8 sítios de sonda de silício. As gravações são de banda larga e amostrados a 20 000 Hz, o que permite estudar as duas oscilações de campo locais potenciais (por exemplo, "teta" banda 8 ritmo Hz) e atividade spiking neuronal.
Tabela 1. Alternativas para reagentes e equipamento utilizados.
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Discussion
Este filme ilustra o procedimento de implante de silicone de sondas para doenças crônicas de larga escala gravações no rato comportar. Passos essenciais para garantir qualidade gravações de atividade neuronal surgem a partir da fragilidade de ambos biológico (tecido cerebral) e silício (sonda) técnicas de materiais. Cuidados especiais devem ser tomados ao manusear a sonda para evitar qualquer contato de hastes com qualquer superfície remotamente "hard" (por exemplo, as canelas iria quebrar se alguém tentar implantá-las no cérebro sem remover a dura-máter). Do mesmo modo, qualquer prejuízo para o tecido cerebral (durante a preparação da superfície do cérebro para o implante, ou a partir de esbarrar a sonda ou a unidade uma vez que é implantado) resultaria em danificar as células e pondo em risco a gravação da actividade unidade. Além disso, o caminho eléctrico da terra deve ser controlada, tal como qualquer interrupção do circuito entre o fluido cerebrospinal, o parafuso de chão, o fio de cobre, as abas de malha de cobre e do pino terra sobre o CONNECTOr, resultaria em um grande artefatos de movimento e / ou ruído de linha (50 Hz ou 60 Hz). Se a gaiola de Faraday não é suficientemente elevada, o saliente micro-drive pode actuar como uma antena. O efeito da antena pode ser prevenida por ligação à terra da unidade, bem como (solda um outro fio de cobre entre a unidade eo cobre de malha). O caminho do sinal de referência deve também ser verificadas.
Nós ilustrado a implantação de uma sonda de silício único, mas gravações de vários sites que utilizam sondas e unidades múltiplas podem ser facilmente conseguida depois de alguma prática. Além disso, estamos usando unidades similares, mas menores para a implantação de sondas de silício no cérebro do rato. As sondas de silício comercialmente disponíveis e sonda-flex cabo conector-componentes, juntamente com o pequeno tamanho de pré-amplificadores de multicanal drasticamente simplificado o processo de preparação em relação às técnicas anteriores. Hoje, é tão fácil de gravar a partir de 64 para 128 locais, simultaneamente, em um roedor se comportar a partir de 2 sites comeletrodos de fio apenas uma década atrás.
Silicon sonda tecnologia está em rápido desenvolvimento e 17 de uso generalizado. Amplificadores podem ser integrados com as sondas de 18 e menores headstages, multiplexadores ou sistemas de telemetria estão sendo fabricados comercialmente, empurrando os limites fisiológicos de gravações para outros limites.
Recentes estudos teóricos e experimentais com sondas de silício 17,19 indicam que, com métodos refinados corretamente em larga escala de gravação, combinada com novos insights matemáticos e estudos de modelagem, um será capaz de gravar a partir de uma fração representativa grande ou talvez cada neurônio do volume do cérebro supervisionado por um múltiplo sonda haste de silício (milhares de células em mM ~ 1 3; 5-17). No entanto, dada a natureza correlacional dessas medidas, a relação causa-efeito entre os padrões de atividade neuronal permanece inevitavelmente ambígua. Um completo entendimentocomo actividade conjunto coordenada emerge a partir dos seus componentes neuronais requer pelo menos dois passos adicionais. O primeiro é a identificação dos vários tipos de células neuronais, cada um dos quais unicamente contribui para o comportamento de montagem - literalmente como membros de uma orquestra. O segundo passo, e complementares, é uma manipulação de princípios da actividade das células identificadas spiking ou grupos de células, em poucos engenheiros maneira interrogar circuitos electrónicos 20. Os recentemente desenvolvidas ferramentas moleculares optogenetic pode ser usado para manipular as populações de células específicas por estimulação local luz 20-22. Os métodos eficientes gravações combinação de grande escala e ópticos com sondas de silício 23 proporciona os meios para tanto a identificação e selectivamente condução populações de células específicas, permitindo assim que para tratar as relações causais em redes cerebrais.
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Disclosures
Não há conflitos de interesse declarados.
Acknowledgments
Marie Curie Fellowship International Outgoing (acordos da União Europeia FP/2007-2013 Grant # 221834 e 254780), JD McDonnell Foundation, NSF Grant SBE 0542013, National Institutes of Health Grant NS034994, National Institute of Mental Health Grant MH5467 e do Howard Hughes Medical Institute (Janelia Research Farm Campus de subvenção).
Materials
| Name | Type | Company | Catalog Number | Comments |
| Silicon probe Buzsaki32, 4 shanks x 8 sites. Packaging: flexible polyamide cable | Material | NeuroNexus Technologies | Probe: buzsaki32 Packaging: HC32 | Recording probe |
| Round Brass Screw, 00-90 x 1/2 Round Brass Screws | Material | JIMorris | R0090B500 | Drive part |
| Brass Hex Nut, 00-90 | Material | JIMorris | N0090B | Drive part |
| Brass C260 Strip, ASTM-B36 Thickness: 0.025", Length: 12", Width: 1/2" | Material | Small Parts, Inc. | B000FMYU72 | Drive part |
| Connector Header, pitch 2mm, male, single row, straigt, 36 positions | Material | Digi-Key | 2163S-36-ND | Drive part |
| 2-part Sylgard silicon Elastomer | Material | World Precision Instruments, Inc. | SYLG184 | To extra-insulate the probe |
| Decon Contrad 70 Liquid Detergent | Reagent | Fisher Scientific | 04-355 Decon Laboratories No.:1002 | To clean the recording sites |
| Impedance Conditioning Module | Equipment | FHC, Inc. | 55-70-0 | Impedance meter |
| niPOD - 32 channels | Equipment | NeuroNexus Technologies | niPOD -32 | Impedance meter |
| Grip Cement Industrial Grade | Material | Caulk Dentsply | 675571 (powder) 675572 (solvent) | Grip cement |
| 1,1’-dioctadecyl-3,3,3’,3’-tetramethylindocarbocyanine perchlorate (’DiI’; DiIC18(3)) | Reagent | Invitrogen | D282 | To stain the probe track in the brain |
| Stainless Steel Machine Screw, Binding Head, Slotted Drive, #00-90, 1/8" | Material | Small Parts, Inc. | MX-0090-02B | Ground and reference screws |
| Magnet wire, 20G, nylon-polyurethane coating, MW80 | Material | Small Parts, Inc. | B000IJYRP2 | Ground and reference wire |
| Stainless Steel Machine Screw, Binding Head Slotted Drive, #000-120, 1/16" | Material | Small Parts, Inc. | MX-000120-01B | Anchor screws |
| N-3 All purpose Flux Liquid | Reagent | La-Co (Markal) | 23512 | Allows to solder stainless-steel |
| MicroGrid Precision Expanded Copper | Material | Dexmet | 3 CU6-050 FA | Copper mesh for on-head Faraday cage |
| C&B-METABOND Quick! Cement System - Dentin Activator | Material | Parkell | S380 | |
| C&B-METABOND Quick! Cement System - Dental cement | Material | Parkell | S380 | |
| Sharp point tungsten needle and holder | Tool | Roboz Surgical Instruments Co. | RS-6064 and RS-6061 | To make the hook to lift the dura |
| Carbide Bur HP 1/4 | Tool | Henry Schein | 9990013 | |
| Paraffin (Granules) | Material | Fisher Scientific | P31-500 | |
| Mineral Oil, Light (NF/FCC) | Material | Fisher Scientific | O121-1 | |
| GC ELECTRONICS 10-114 2-Part Epoxy Adhesive | Material | Newark Inc | 00Z416 | |
| Type 1 LITZ 21 AWG 40/36 Red Single Polyurethane-Nylon (MW80-C) TO 0.041"+/-0.002" OD | Material | New England Biolabs | N28-36E-400-2 | To make the cable between the headstage and the amplifier |
| 32-channel Very Large Scale Integration headstage, 20x gain | Equipment | Plexon | HST/32V-G20 | Headstage |
References
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