Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove

Bioengineering

Подготовка 3D фибрина лесов для стволовых Приложения культуре клеток

doi: 10.3791/3641 Published: March 2, 2012

Summary

Эта работа подробно подготовки 3D фибрина лесов для культивирования и дифференциации plutipotent стволовых клеток. Такие леса могут быть использованы для скрининга влияние различных биологических соединений на поведение стволовых клеток, а также изменение содержать систем доставки лекарств.

Abstract

Стволовые клетки находятся в естественных 3D микросреды в естественных условиях, которые часто называют ниши стволовых клеток 1. Культивирование стволовых клеток в 3D-биоматериала лесов дает возможность точно имитировать эти микросреды, обеспечивающие преимущество по сравнению с традиционными методами 2D культуры с помощью полистирола, а также метод для инженерных замена ткани 2. В то время как 2D polystrene культуры ткани была использована для большинства экспериментов клеточных культур, 3D биоматериала лесов может более тесно повторить микросреды обнаружены в естественных условиях, обеспечивая более точное создание клеточной полярности в окружающей среде и обладающих биохимической и механическим свойствам похож на мягкую ткань. 3 различных естественно получены и синтетические леса биоматериал был исследован в качестве 3D-среды для поддержки роста стволовых клеток. В то время как синтетические строительные леса могут быть синтезированы иметь большее тАнж механических и химических свойств, и часто имеют большую воспроизводимость, природных биоматериалов часто состоят из белков и полисахаридов найден в матрице extracelluar и, как следствие содержат сайты связывания для клеточной адгезии и легко поддерживать культуру клеток. Фибрин леса, производится путем полимеризации белка фибриногена полученных из плазмы, были широко исследованы различные ткани инженерных приложений, как в пробирке и в естественных 4. Такие леса могут быть изменены с помощью различных методов включения управляемых систем выпуска для доставки лечебных факторов 5. Предыдущие исследования показали, что такие леса могут быть использованы для успешной культуры эмбриональных стволовых клеток, и это леса на основе культуры система может быть использована для скрининга влияния различных факторов роста на дифференциацию стволовых клеток высевали в 6,7.

Этот протокол детали процесса polymerizinг фибрина из фибриногена леса решений с использованием ферментативной активности тромбина. Процесс занимает от 2 дней до завершения, в том числе ночью шаг диализа для фибриногена решение удалить цитраты, которые препятствуют полимеризации. Эти подробные методы основаны на концентрации фибриногена установлено, что оптимальным для эмбриональных и индуцированных плюрипотентных стволовых клеток культуры. Другие группы дальнейшего изучения фибрина лесов для широкого спектра типов клеток и приложений - демонстрация универсальности этого подхода 8-12.

Protocol

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Примечание Перед началом протокола: фибриноген является производным крови белка и, следовательно, соответствующее обучение технике безопасности должны быть завершены до обращения. Этот протокол требует 2 дней, чтобы завершить так что время желаемой культур стволовых надлежащим образом гарантировать, что они готовы для посева. С точки зрения расчета, сколько фибриногена в отвешивать, три 35 мм чашки Петри трис буферном растворе (TBS, рН 7,4), содержащем 110-130 мг фибриногена растворяют в 3 мл TBS будет достаточно для производства 1 24-луночный планшет, содержащий 400 мкл леса фибрина в каждую лунку.

1. День первый: Создание решений фибриногена и ночь диализа

  1. Возьмите лиофилизированный фибриногена из холодильника и оставьте на 20 минут, чтобы позволить ему до комнатной температуры.
  2. Добавьте 3 мл Трис-буферного раствора (TBS) каждой 35 мм чашке Петри. Каждая пластина фибриногена дает от 2 до 3 мл фибриногена решение в диапазоне концентрации от 12 до 20мг / мл, а общее количество фибриногена необходимости может быть вычислена на основе этих приближений.
  3. Взвесить примерно 100-130 мг фибриногена (Fg) и посыпать на поверхность настоящей TBS в каждом блюде. Подождите 5 минут, фибриноген, чтобы начать переходят в раствор. Обложка Петри с крышкой.
  4. Инкубировать чашки Петри при 37 ° С в течение 2 часов, чтобы позволить фибриногена в полной мере войти в решении TBS.
  5. Мокрый трубы диализа (7000 МВт отрезана) с TBS. Сложите нижний конец на конец трубы и зажим закрыт с диализом зажимом.
  6. Пипетировать фибриногена решения от блюд в диализной трубки. Сложите на верхнем конце и закрыть зажим с зажимом диализа.
  7. Трубы Место диализа содержащие фибриноген решение в 4-литровый контейнер TBS. Mix решения с использованием мешалки установлен в низкой скорости (100 оборотов в минуту).
  8. Диализировать решение ночь на движение пластины, по крайней мере 12 часов. Решение TBS не должны быть изменены в течение этого периода времени.
  9. 2. День 2: полимеризация фибрина леса и посева стволовых клеток в лесах

    Все действия, описанные в этом процессе должны быть выполнены в стерильной капот культуры тканей, как эти леса будут засеяны культуры стволовых клеток.

    1. Удалить фибриногена решение от трубы диализа и поместить в подходящие по размеру коническую трубку (или 15 мл или 50 мл).
    2. Фильтры решение фибриногена с 5,0 мкм шприц фильтр для удаления крупных примесей в растворе. В зависимости от объема раствора, использование нескольких фильтров могут быть необходимы для обработки всего решения.
    3. Стерильные фильтры фибриногена решение с 0,22 мкм фильтр в 50 мл коническую трубку. Используя соответствующий размер пипетки, определить объем отфильтрованной фибриногена решение для использования в дальнейшем при выполнении вычислений. В зависимости от объема раствора, использование нескольких фильтров могут быть необходимы для обработки ЛОРГнев решение.
    4. Измерьте оптическую плотность фибриногена решение при 280 нм, используя спектрофотометр. Разведения в 50 раз часто бывает необходимо получить поглощение до 1.
    5. Рассчитайте концентрацию белка присутствуют в фибриногена решение по следующей формуле: [фибриногена в мг / мл] = (280 × коэффициент разбавления) ÷ 1,55, где 1,55 коэффициент экстинкции при 280 человека фибриногена 13. Затем подсчитать количество TBS необходимо, чтобы разбавить концентрацию раствора до 11,1 мг / мл фибриногена на основе первоначального объема. Конечная концентрация белка фибрина лесов составляет 10 мг / мл после полимеризации.
    6. Получить стерильной тромбина и решения хлорида кальция. Во-первых, добавить 15 мкл раствора тромбина (концентрация: 40 Ед / мл - конечная концентрация в леса будет 2 Ед / мл) на правой стороне каждой скважины в первом ряду 24-луночный планшет. Затем добавить 15 мкл 50 мМ кальция хлoride решение левой стороны каждой скважины. Наконец, добавьте 270 мкл фибриногена решение пластины. Встряхнуть пластины из стороны в сторону, затем качая задом наперед, чтобы обеспечить смешивания растворов.
    7. Пусть строка, содержащая смесь полимеризуется в течение 5 минут при комнатной температуре. Леса становятся более непрозрачными, как они полимеризуются.
    8. Повторите шаги 2.6 и 2.7, пока необходимое количество леса фибрина были полимеризуется.
    9. После того, как последние 5 минут инкубации поместите пластин внутри 37 ° C инкубатор для обеспечения полной полимеризации леса.
    10. После одного часа инкубации завершен, следующим шагом будет семя на эшафот с эмбриоидных органов. С помощью 20 мкл pipettemen выберите единоличным эмбриоидных и место в центре фибрина эшафот. Проконсультируйтесь с микроскопом, что каждый хорошо содержит одно тело эмбриоидных.
    11. Добавьте 5 мкл раствора тромбина (концентрация: 40 Ед / мл) и 5 ​​мкл 50 мМ хлористого кальцияРешение друг на эмбриоидных тела следуют на 90 мкл фибриногена раствора в каждую лунку. Решение должно сформировать пузырь инкапсуляции эмбриоидных органов.
    12. Место пластина еще в 37 ° C инкубатор для дополнительного часа, чтобы обеспечить полимеризации.
    13. После инкубации добавляют 1 мл соответствующий носитель культуры клеток в каждую лунку и место пластину назад на 37 ° C инкубатора.

    3. Представитель Результаты

    На рисунке 1 показана схема вид сбоку отдельных скважин содержащих 3D фибрина леса системе культуры посеяны с эмбриоидных тела. Рисунок 2А показывает, представитель изображений мыши индуцированных плюрипотентных стволовых клеток время культивировали на мышиных эмбриональных фибробластов слоев подачи. Эти клетки затем вынужден сформировать эмбриоидных органов, агрегатов клеток, содержащих нейронных предшественников, используя 8-й день ретиноевой кислоты протоколом лечения (рис. 2В), а previouslу описанных 14, а 3 показаны внешний вид IPS-, полученных эмбриоидных тела после 3 дней культуры в 3D-фибрин леса. Аналогичные результаты были получены ранее с помощью мыши эмбриональные стволовые клетки 7. Кроме того, этот метод был использован для IPS-культуры, полученные эмбриоидные тела, полученные с использованием различных протоколов с участием ретиноевой кислоты и purmorphamine 15 внутри 3D леса фибрина, демонстрируя универсальность этой системе культуры.

    Рисунок 1.
    Рисунок 1. Схематическое изображение сбоку отдельных скважин содержащих 3D фибрина лесов семенами с эмбриоидных тела.

    Рисунок 2.
    Рисунок 2. Мышь индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (IPS), культура и дифференцировки клеток. Для дифференциации этих клеток в neurдр. фенотипов, ИПС клетки культивировали в суспензии для производства агрегатов клеток, называемых эмбриоидные тела (ЭТ). Эти ЭТ затем обрабатывают с ретиноевой кислотой, чтобы вызвать нервный дифференциации и этот протокол был ранее использован, чтобы вызвать нервный дифференциации эмбриональных стволовых клеток. А) Недифференцированная мыши иПК клетки колонии культивировали на мышиных эмбриональных фибробластов слой подачи. B) эмбриоидных органов, полученных от мышиных клеток иПК в суспензионной культуре принято на 8-й день после лечения с ретиноевой кислотой, чтобы вызвать нервный дифференциации. Шкала бар составляет 100 мкм.

    Рисунок 3.
    Рисунок 3. Пример результатов мыши иПК эмбриоидных тела после 3 дней культуры в 3D-фибрин эшафот. Клетки начали мигрировать и дифференцироваться внутри фибрина эшафот. Масштаб панели составляет 500 мкм.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Этот протокол обеспечивает описанные выше метод для создания 3D леса фибрин для плюрипотентных стволовых клеток культуры, в частности, для мышиных эмбриональных и индуцированных плюрипотентных стволовых клеток. Эта 3D биоматериала на основе системы культуры более точно имитирует ниша стволовых клеток содержится в естественных условиях и, как следствие, оно может быть использовано для отбора биологических сигналов, чтобы определить их влияние на дифференциацию стволовых клеток 6. Наши наблюдения показали, что эти леса, когда засевали с стволовых клеток, полученных эмбриоидные тела остается в течение 2 недель в пробирке, прежде чем стать полностью деградировали. Чтобы повысить устойчивость этих лесов, апротинин (ингибиторов протеазы) может быть использован для замедления деградации через дополнение к средствам массовой информации культуре клеток. 7,16 Эти леса также успешно используется для нервной ткани инженерных приложений, в частности, генерацию тканей аналогичные тем, которые имеются в центральной нервной системе 17. В то время как другие грНУ-НС объединились иПК клеток с фибринового клея для лечения ишемического инсульта 18, эта работа представляет собой первый известный отчет объединения иПК клеток леса фибрин для нейронных применения тканевой инженерии. Эта работа также служит отправной точкой для объединения различных типах стволовых клеток с лесов фибрин для других приложений тканевой инженерии.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Авторы не имеют ничего раскрывать.

Acknowledgments

Авторы хотели бы выразить признательность NSERC Discovery Грант 402462 "Tissue инженерных леса для управления индуцированных плюрипотентных стволовых клеток поведение".

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Equipment needed:
Analytical balance
pH meter
Tissue culture incubator (37°C, 5% CO2)
Stir plate
Spectrophotometer
Sterile tissue culture hood
Tris buffered saline (pH 7.4) (Need 4 L plus enough for dissolving fibrinogen)
50 mM calcium chloride solution
Sterile conical tubes (15 or 50 mL)
35 mm Petri dishes
Dialysis tubing (7,000 MW cutoff)
Dialysis clips
5.0 μm syringe filters
Individually wrapped sterile 0.22 μm syringe filters
Syringe
24 well tissue culture plates
Fibrinogen (human) Calbiochem 341578
Thrombin (human) Sigma-Aldrich T7009

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Keung, A. J., Healy, K. E., Kumar, S., Schaffer, D. V. Biophysics and dynamics of natural and engineered stem cell microenvironments. Wiley Interdiscip. Rev. Syst. Biol. Med. 2, 49-64 (2010).
  2. Willerth, S. M., Sakiyama-Elbert, S. E. Combining stem cells and biomaterial scaffolds for constructing tissues and cell delivery. StemBook. (2008).
  3. Lee, J., Cuddihy, M. J., Kotov, N. A. Three-dimensional cell culture matrices: state of the art. Tissue Eng. Part B Rev. 14, 61-86 (2008).
  4. Ahmed, T. A., Dare, E. V., Hincke, M. Fibrin: a versatile scaffold for tissue engineering applications. Tissue Eng. Part B Rev. 14, 199-215 (2008).
  5. Breen, A., O'Brien, T., Pandit, A. Fibrin as a delivery system for therapeutic drugs and biomolecules. Tissue Eng. Part B Rev. 15, 201-214 (2009).
  6. Willerth, S. M., Faxel, T. E., Gottlieb, D. I., Sakiyama-Elbert, S. E. The effects of soluble growth factors on embryonic stem cell differentiation inside of fibrin scaffolds. Stem Cells. 25, 2235-2244 (2007).
  7. Willerth, S. M., Arendas, K. J., Gottlieb, D. I., Sakiyama-Elbert, S. E. Optimization of fibrin scaffolds for differentiation of murine embryonic stem cells into neural lineage cells. Biomaterials. 27, 5990-6003 (2006).
  8. Gorodetsky, R. Fibrin Microbeads Loaded with Mesenchymal Cells Support Their Long-Term Survival While Sealed at Room Temperature. Tissue Eng. Part C Methods. (2011).
  9. Barsotti, M. C. Fibrin acts as biomimetic niche inducing both differentiation and stem cell marker expression of early human endothelial progenitor cells. Cell Prolif. 44, 33-48 (2011).
  10. Park, J. S., Yang, H. N., Woo, D. G., Jeon, S. Y., Park, K. H. Chondrogenesis of human mesenchymal stem cells in fibrin constructs evaluated in vitro and in nude mouse and rabbit defects models. Biomaterials. 32, 1495-1507 (2011).
  11. Mooney, R., Tawil, B., Mahoney, M. Specific fibrinogen and thrombin concentrations promote neuronal rather than glial growth when primary neural cells are seeded within plasma-derived fibrin gels. Tissue Eng. Part A. 16, 1607-1619 (2010).
  12. Liu, H., Collins, S. F., Suggs, L. J. Three-dimensional culture for expansion and differentiation of mouse embryonic stem cells. Biomaterials. 27, 6004-6014 (2006).
  13. Dellenback, R. J., Chien, S. The extinction coefficient of fibrinogen from man, dog, elephant, sheep, and goat at 280 mmu. Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 134, 353-355 (1970).
  14. Bain, G., Kitchens, D., Yao, M., Huettner, J. E., Gottlieb, D. I. Embryonic stem cells express neuronal properties in vitro. Dev. Biol. 168, 342-357 (1995).
  15. Li, X. J. Directed differentiation of ventral spinal progenitors and motor neurons from human embryonic stem cells by small molecules. Stem Cells. 26, 886-893 (2008).
  16. Lorentz, K. M., Kontos, S., Frey, P., Hubbell, J. A. Engineered aprotinin for improved stability of fibrin biomaterials. Biomaterials. 32, 430-438 (2011).
  17. Willerth, S. M., Rader, A., Sakiyama-Elbert, S. E. The effect of controlled growth factor delivery on embryonic stem cell differentiation inside fibrin scaffolds. Stem Cell Res. 1, 205-218 (2008).
  18. Chen, S. J. Functional improvement of focal cerebral ischemia injury by subdural transplantation of induced pluripotent stem cells with fibrin glue. Stem Cells Dev. 19, 1757-1767 (2010).
Подготовка 3D фибрина лесов для стволовых Приложения культуре клеток
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Kolehmainen, K., Willerth, S. M. Preparation of 3D Fibrin Scaffolds for Stem Cell Culture Applications. J. Vis. Exp. (61), e3641, doi:10.3791/3641 (2012).More

Kolehmainen, K., Willerth, S. M. Preparation of 3D Fibrin Scaffolds for Stem Cell Culture Applications. J. Vis. Exp. (61), e3641, doi:10.3791/3641 (2012).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
simple hit counter