Summary
代谢组学的档案
Abstract
结核分枝杆菌是在全球范围内人类死亡的一个重要原因。两个多（MDR）和广泛耐药（XDR）株的出现，威胁要破坏当前疾病控制工作。因此，迫切需要开发比现有的，更有效的药物和疫苗。 分枝杆菌的基因组肺结核已超过10年，但在我们的基因的功能和重要性的认识有重要的差距。许多研究都因为基因表达的转录组和蛋白质组水平的分析，以确定影响的药物，氧化剂，对全球基因表达模式和生长条件。最终，这些变化的最终响应反映在代谢的细菌组合物，包括几千小分子量的化学品。比较野生型和突变株的代谢概况，无论是未经处理或者tr与一个特定的药物eated，可以有效地允许的目标识别和可能导致具有反结核活性的新型抑制剂的发展。同样地，对代谢组中的两个或多个条件的影响也可以被评估。核磁共振（NMR）是一个功能强大的技术，用于识别和量化的中间代谢产物。在这个协议中，程序编制M.结核病细胞提取物的NMR代谢组学分析进行了阐述。在适当条件下，所需的生物安全级别3遏制，1收获细胞培养物生长，并进行机械裂解，同时保持冷的温度，以最大限度地提高保存的代谢物。细胞裂解物中回收，过滤灭菌，并存储在超低温度下。从这些细胞提取物的等分试样镀米德尔7H9琼脂集落形成单位验证没有存活的细胞上。后两个月的孵育在37℃下，如果没有㈥能够观察到菌落，取出样品，从包容设施用于下游处理。萃取液冷冻干燥，再悬浮在氘化缓冲液中喷射的NMR仪器，捕获分光数据，然后将其进行统计分析。所描述的方法可以应用于两个一维（1D）的1 H NMR和二维（2D）的1 H-13 C-NMR分析。这种方法提供了更可靠的小分子量代谢物鉴定和色谱法比更可靠，更敏感的细胞提取液代谢成分的定量分析。描述的过程中的变化之后的细胞裂解步骤也可以适于并行蛋白质组学分析。
Protocol
1。协议文本
该协议强调的NMR方法，以适应M.肺结核 （III级代理）。因此，必须遵循生物安全3级（BSL3）的做法时，M.肺结核在每年认证的实验室研究。暴露于实验室产生的气溶胶是最重要的工作人员与这些微生物所遇到的危险。下面的过程是在我们的机构中进行的变化可能存在生物安全委员会的建议的基础上。常见的个人防护设备包括特卫强服，圆帽，鞋，N95呼吸器，保护眼睛，袖子，和双对丁腈手套。有关的工作，M.肺结核文化和/或打开操作与M.肺结核容器的类型A2或B2生物安全柜。被放置在塑料覆盖的吸收纸的w工作会有的表面上。将予出售或从设备中移除所有材料/耗材必须放置在两个生物危害袋和消毒的高压灭菌。与的1％Amphyl（结核菌，杀菌，杀菌和杀病毒剂），每个工作结束后，工作台面及机柜内的设备使用（FastPrep-24溶解均质机，分光光度计，桶与冰等）必须进行消毒。M.肺结核文化必须放置在双遏制运输的生物安全柜，冷冻箱，孵化器，离心机，冰箱等以外的更大的设备。离心进行封闭安全杯和O形圈螺旋盖的管。外BSL3实验室作进一步的分析，无细胞提取物被过滤通过0.2微米的过滤器或微生物在95℃下15分钟的加热杀死的。2样品均镀以验证的菌落形成单位的情况下除去遏制之前。
- 转移米德尔7H9完整的媒体，含有聚山梨酯80（吐温80，以防止结块）的110毫升肉汤（MADC-TW）或一个合适的培养基中的250毫升的锥形烧瓶中。一式三份的文化常规种植每条件时，使用13个 C-代谢物，10个相同的文化生长的一维1 H-NMR分析。两个条件（ 例如 ，不加药物），双量均的文化，每重复可以生长并分裂成两个相同的文化。所有的试剂和溶液的配方中所提供结束时的协议。
- 接种到肉汤0.150毫升M.结核病 50％的甘油（允许在冰上解冻）。请参阅下面的注意事项1。
- 让文化成长在37°C，100rpm振荡约6天（OD 600 0.6-0.8）。请参阅下文附注2。
- 如果没有抗生素，替代增加或其他治疗是必要的，文化是随时可以收获。如果用于治疗，继续直接执行步骤5。从每个烧瓶中取出0.5毫升样品，转移到离心管中，在4°C文化滴定和质量控制污染检测，表型分析，PCR检测。请参阅下文附注3。在这一点上，继续进行第6步。
- 将瓶中删除振动筛和执行所需的处理（ 如添加药物或代谢物）。地点烧瓶，振动筛，并培育一个额外的周期（ 如 6-18小时）。在这段时间结束后，另取1.0毫升，并确定OD 600。从每个烧瓶中取出0.5毫升样品，转移到离心管中，在4°C的文化滴定和质量控制。
- 地点文化在冰上5分钟。在此步骤之后，留下细胞在冰上在整个的其它协议。通过离心收获培养在2,000 xg和4℃下15分钟在50毫升的试管，使用台式离心机。每个文化将需要用25毫升每个（共1的四根管00毫升是必需的，以获得足够的信号与噪声的用于2D 1 H-13 C NMR实验，其中只有50毫升每培养所需的1D 1 H NMR的实验）。
- 每个细胞沉淀洗净两次与冰冷的DDH 2 O（大约15毫升的第一次和10毫升的第二次），如上所述通过离心参数。对于第二次洗涤，结合到相同的管中的10毫升等分试样纺丝前。在终体积为1.0ml，DDH 2 O（需要调整为细胞沉淀体积）中重悬细胞沉淀。如果在此步骤中，所需的单细胞悬浮液，无结块细胞可以简要地超声处理和/或通过一个27号针头的三倍。另外，将细胞沉淀可以在-80℃下冷冻直至进一步处理和存储。在后者的情况下，冷冻粒料之前，再悬浮于冰上解冻。重悬细胞沉淀，在最终体积为1.0毫升DDH 2 O，如上所述。
- 内部转移r为1.0毫升细胞悬浮液至2.0ml含有溶胞矩阵B（0.1毫米的二氧化硅微球）的螺旋盖管。将FastPrep-24裂解匀浆内的生物安全柜。然后将材料放入的样本保持器，固定保持辐板在管的顶部。设定为6米/秒的速度，在均化器中处理样品60秒。
- 在微型旋转样品在15,000 xg和4℃下进行10分钟以沉淀细胞碎片和完整细胞。
- 到无菌管中取出上清液和通样品通过注射器过滤器（0.2μm）。板0.1毫升MADC琼脂上的样品（或有代表性的部分，例如10％）的样品，以验证是否存在没有存活的细胞。侦查人员也可以进行一个以上的过滤步骤，和/或验证的存在下存活的细胞提取物中使用活死的染色程序，以便防止或识别的任何潜在的生物安全顾虑。冷冻样品中的乙醇 - 干冰浴存储在-80℃下，直到他们准备要冷冻干燥和处理中的NMR设施。
- 2个月后，检查板来验证的情况下的菌落形成单位。如果没有CFU被发现，样本可能采取的BSL3实验室。进行进一步的分析，在标准的NMR的设施，这通常提供多用户和下运作没有具体的遏制要求。
- 样品冷冻干燥至干，然后重新悬浮在0.7毫升的NMR缓冲区，并转移到一个离心管中。在13000×g下离心3分钟。取出0.6毫升和转移到一个5毫米的NMR管中。另外，冻干样品邮寄给非的生物危害性定期样本的外部设备。
- NMR数据立即被收集。尽管所有的预防措施，活性酶可能仍存在，样品通常并不稳定，很长一段时间。的NMR谱中的变化是引人注目的，当样品被排除为m，在室温或在4℃下矿石超过1周。此外，NMR数据收集未经治疗和药物治疗的文化，从每个类别中随机抽取的样品之间交替。这可以防止不必要的偏见，因为收集的NMR谱是之前，一个特定的类别有一个较长的延迟。如果所有未处理的样品的NMR光谱首先收集，然后依次由药物处理过的样品中的数据会发生甲偏置。如果样本不能被立即通过NMR分析，样品应在-80℃下储存在1毫升Eppendorf管中
- BACS-120样品更换，仪器校准，这涉及到几个常规的措施，如锁，垫片，调整和优化的90°脉冲长度，插入样品后，需要最高质量的结果。单一样本是用来校准的90°脉冲的长度和对剩余的样品调整仪器。锁定，匀场，对每个样品的NMR数据采集的自动化全光照克ICONNMR和gradshim。
- 甲1D 1 H NMR谱是使用布鲁克zgesgp脉冲序列收集与水抑制使用激发雕刻。一个32k的数据点用扫描宽度5482.5Hz，128扫描，和16个虚拟扫描。 A 2D 1 H-13 C HSQC谱的收集，使用的布鲁克hsqcetgp的脉冲序列。共2048个数据点与扫描宽度5000.0赫兹一起被采集的直接1 H尺寸，和64个数据点，沿间接13 C尺寸的扫描宽度18864.9赫兹。收集具有128扫描和16个虚拟扫描的频谱，以获得良好的信号噪声。
图1，一种实验程序的流程图被描述。
NMR缓冲
原液的50mM磷酸钾的buff呃50μM第三次会议：
- 2.17克K 2 HPO 4（磷酸氢二钾）
- 1.70克KH 2 PO 4（磷酸二氢钾）
- 7.86毫克钠3 -三甲基甲硅烷基丙（TMSP-2 ,2,3,3-D 4（D，98％））
- “100％”D 2 O溶解于500毫升
- 最终的解决方案应该是在pH 7.2的（未校正的）
MADC-TW或MOADC的TW（1L）
- 4.7克米德尔7H9肉汤基础
- 900 ML DDH 2 O
- 2 mL甘油
- 混合组分和25分钟的高压釜。清凉的液体接触，并添加以下解决方案：
- 百毫升ADC在准备MADC或100毫升OADC的在准备MOADC时
- 2.5毫升20％的吐温80（可选地，1毫升的20％的非代谢泰洛沙泊）
- 10毫升1％的放线菌酮
ADC（1L）中
- 20克D（+） - 葡萄糖
- BSA分数50克V
- 8.5克氯化钠
- 800 ML DDH 2 O
- 溶解在一起，调整音量至1 L与0.2微米的过滤器和消毒。存放于4℃
另外，准备OADC（1L），添加1％的油酸（配方下面，使250毫升的批次）加50毫升以上列出的所有组件。溶解在一起，调整音量至1 L与0.2微米的过滤器和消毒。瓶需要被包装在铝箔和商店在4°C。
- 2.5克油酸
- 250毫升0.2M的NaOH
- 解冻油酸（固化制冷时）通过加热在55℃下10分钟，并在搅拌下进行60分钟，加至NaOH溶液中和热。储存，包裹在铝箔中的无菌玻璃瓶。密封瓶的封口膜和存储在4°C。
如果愿意，您可以购买商业BD BBL米德尔的ADC或OADC与过氧化氢酶的富集。
1％的放线菌酮（100ml）中
- 1克放线菌酮
- 100 ML DDH 2 O
溶解和消毒用0.2微米的过滤器。存放于4℃注意：放线菌酮是有毒的，所以格外小心处理。
20％（体积/体积）吐温80（100毫升）
- 20毫升吐温80
- 80 ML DDH 2 O
另外，称量20克吐温80（约18.9毫升，密度1.06克/毫升），以制备20％w / v溶液。热到55°C，30分钟至完全溶解，混合。消毒液体，用0.2微米的过滤器。存储最终的溶液在室温下。
泰洛沙泊（100毫升）20％（体积/体积）的
- 20毫升四丁酚醛
- 80 ML DDH 2 O
或者，称重20克泰洛沙泊（约18.2毫升，密度1.1克/毫升），以制备20％w / v溶液。 30分钟，到二55°C的热解决方案ssolve，完全混合。消毒液体，用0.2微米的过滤器。存储最终的溶液在室温下。
注1：甘油股票M.结核制备使用下面的协议。
放养M.肺结核
- 成长M.在50毫升MADC 肺结核饱和度（OD 600 = 1.5到2.0），在37℃下的振荡条件下（100转）。根据上的应变，这将花费7-14天。
- 附带样品在4℃以2,000 xg离心15分钟以沉淀文化。除去上清液。
- 重悬在无菌的50％甘油的6毫升。
- 分装1.5毫升到4康宁的低温瓶和标签适当。
- 立即闪光冻结于乙醇/干冰浴和存储的瓶在-80°C。
注2：接种菌株H37Rv（-80°C股票上涨1.5岁）为70毫升的MADC媒体产生的OD 600 </ sub>的约0.6后5天的生长在37℃下在振荡条件下（100转），在一个伊诺40摇床。
注3：为了测试文化的污染，研究人员可以到标准营养丰富的培养基接种文化等分，并确认没有过夜培养后的增长。按常规，文化上都镀MADC琼脂相衬显微镜观察菌落形态和检查。如果需要，文化可以验证6110引物通过PCR方法。
2。代表性的成果
一个样品已做好充分准备，将产生一个如图2所示的NMR光谱相似。这个频谱是表示在M.肺结核野生型代谢池。所识别的代谢产物被直接或间接相关联的D-丙氨酸的通路。另外，峰强度的大小是代谢物的浓度成比例呈现的细胞提取物中。因此，在处理培养物，药物治疗，和突变株之间的峰强度的变化可以指示的代谢产物和代谢途径中的扰动。该M.结核 1D 1 H NMR谱是在Bruker Avance 500兆赫光谱仪配备三重谐振，Z轴梯度冷冻探针收集。的频谱包含约。 400峰，它是可能的，以确定和量化40-50代谢产物，包括氨基酸，核苷酸前体，以及糖酵解和柠檬酸中间体的。一个BACS-120自动进样器与布鲁克图标软件用于自动NMR数据采集。 1D 1 H NMR谱，收集使用激发雕刻4有效地除去溶剂，并保持平坦的基线，消除了任何需要收集基线可能引起工件在随后的主成分分析（PCA）或正交偏最小二乘判别分析（OPLS- DA）。 A 1D 1 H NMR谱是在25℃下收集与5482.5 Hz和32K数据点的频谱宽度。总共有16个虚拟扫描和128扫描被用来以获得频谱。 ACD实验室1D NMR处理软件，用于半会自动处理所有1D 1 H-NMR谱。光谱傅立叶变换，分阶段实施，并参照第三次会议的峰值（0.0 PPM）。 NMRpipe软件包用于单独处理2D的1 H-13 C NMR光谱，并分析NMRDraw。布鲁克FID数据文件首先被转换为一个文件格式识别的NMRpipe格式和然后光谱进行傅立叶变换，相位校正，填充零。在一维的1 H NMR谱和2D 1 H-13 C NMR谱中所观察到的NMR峰被分配到特定的代谢物，用1 H和13 C化学位移分别为0.05和0.50 ppm时，公差，和麦迪逊代谢组学联合体数据库（MMCD ）
图2。1D 1 H NMR谱的结核分枝杆菌的细胞提取物。具有代表性的代谢产物的NMR峰标记。缩写如下：AMP，腺苷单磷酸，α-，α-酮戊二酸千克，谷氨酸，谷氨酸，丙氨酸和Ala。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
一个相当多的研究分析，转录组和蛋白质组的配置文件的M.在体外和体内条件下各种肺结核 11-16最终，在基因表达和酶活性的变化导致在分子量小的分子的浓度的变化。的完整描述，这些化合物构成的代谢组。因此，药物和不同生长条件对代谢途径的影响可能其次是代谢组学分析。17,18很少有研究利用这种方法，研究代谢途径中的M.结核 （见下文）和其他的分枝杆菌属，或分析与M.感染小鼠的代谢变化肺结核19
这种方法是一个潜在的陷阱，一些样品中的微生物可能无法完全溶解。如有必要，裂解步骤可以重复一个或两次以上。裂解效率可以通过执行一个标准的蛋白检测（ 例如 ，BioRad公司DC蛋白测定）监测。代谢物在低浓度存在为了增加检测的灵敏度，几个相同的样品（在步骤8收集的）可以被汇集，冷冻干燥，并重新悬浮在一个较低的体积。
替代分枝杆菌代谢组学研究中的样品制备过程进行了描述。例子包括，超声细胞破碎珠跳动，10,20，20和氧化锆21珠同质化。同样，提取程序的变化，用于酸化的乙腈和/或其它有机溶剂。20,22-24代谢物鉴定方面也取得了由不同的分析程序，包括气相色谱-质谱（GC-MS），24液相色谱质谱联用（LC-MS），21,23和反相高效液相色谱（RP-HPLC）法进行。25 A的代谢物数量有限也被识别和量化的直接酶法测定。26虽然总的数量预计在胞浆提取物分枝杆菌的代谢产物仍是未知，22指出，1,692 芽孢杆菌的代谢产物枯草芽孢杆菌提取物的毛细管电泳和MS 27。
重要的问题，有关分析的定性和定量程序Metz 等人已经由28 NMR技术的优点包括样品制备的难易程度和非破坏性的性质的过程。但是，数据库的可用光谱化合物的鉴定，虽然不断扩大，仍不足以完全代谢物鉴定。 GC-MS和LC-MS的方法可能需要更精细的样品制备程序，并具有更大的可变性，使其难以比较resulTS从不同的实验室。此外，GC-MS代谢物衍生的材料与相应的损失，导致不准确的量化。的方法来提高分离和消除电离抑制LC-MS的承诺，以克服这些问题。然而，在我们看来，这个缺点将在不久的将来仍然是一个重要的问题。 NMR和LC-MS此外，NMR诸如2D HSQC，2D日本解决和STOCSY实验的方法已经导致增加代谢物的鉴定中的效率和准确性。29然而，程序是互补的程序，并可能以被集成在一个组合的分析系统代谢组28
这里描述的样品的制备程序，用适当的修改的缓冲系统和步骤后FastPrep-24裂解，可适于蛋白质组分析，别处所描述的。30，因此，肺结核researchers可能从野生型和突变型菌株生长在各种不同的条件下使用的程序，包括综合系统生物学的方法分析样品31这些技术被证明是不可缺少的解剖中央代谢途径M.肺结核，32的理解可能有必要进一步阐明的延迟，并开发出更好的疫苗和抗分支杆菌药物。这是迫切需要的，尤其是耐多药和广泛耐药结核病控制和治疗的情况下。33,34
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
没有利益冲突的声明。
Acknowledgments
作者想感谢所有成员的博士巴列塔，博士的实验室权力的有益的意见而开发的协议。我们温迪奥斯汀的有益讨论和校对的稿子。这个手稿中描述的工作是由种子试点补助金每个上面列出大学内布拉斯加 - 林肯氧化还原生物学研究中心（母公司授予＃的NCRR 2P20RR 017675，D.贝克尔，PI）的研究者。此外，我们感谢奥费利娅查孔博士的研究用品和先生Halouska的部分工资支持，以规范本出版物中包含的NMR技术从她的R21授予（1R21AI087561-01A1）提供资金。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| ADC Enrichment | BD BBL Middlebrook | 212352 | |
| BACS-120 Sample Changer | Bruker | ||
| Bruker Avance NMR | Bruker | 500 MHz | |
| Bovine Serum Albumin | Fisher Scientific | BP1600-100 | Fraction V |
| Centrifuge | Beckman Coulter | Allegra X-15R | Benchtop |
| Centrifuge Tubes | Corning | 430291 | 50 ml sterile polypropylene |
| Cryogenic Vials | Corning | 430488 | 2.0 ml sterile polypropylene |
| Cycloheximide | A.G. Scientific | C-1189 | Toxic |
| D(+) - Glucose | ACROS | 41095-0010 | |
| Deuterium Oxide | Sigma Aldrich | 617385 | |
| Erlenmeyer Flask | VWR | 89095-266 | Sterile, flat base, polycarbonate, 0.22 μm PTFE membrane vented cap |
| Flash Freeze Flask | VWR | 82018-226 | 750 ml |
| Freeze Dryer | VWR | 82019-038 | 4.5 L Benchtop |
| Glycerol | GibcoBRL | 15514-029 | |
| Incubator | New Brunswick | Innova 40 | Benchtop shaker |
| Lysing Matrix B | MP Biomedicals | 6911-100 | |
| Lysis Machine | MP Biomedicals | FastPrep-24 | |
| Microcentrifuge | Eppendorf | 5415D | Benchtop |
| Microcentrifuge | Beckman Coulter | Microfuge 22R | Benchtop |
| Middlebrook 7H9 Broth | Difco | 271310 | |
| NMR tubes | Norell | ST500-7 | 5mM |
| OADC Enrichment | BD BBL Middlebrook | 212351 | |
| Oleic Acid | Sigma | O1008 | |
| Potassium Phosphate Dibasic | VWR | BDH0266 | |
| Potassium Phosphate Monobasic | VWR | BDH0268 | |
| Rotor - Microfuge 22R | Beckman Coulter | F241.5P | Sealed and polypropylene |
| Rotor - Allegra X-15R | Beckman Coulter | SX4750 | With bio-certified covers |
| Sodium Chloride | Fisher Scientific | S271-3 | |
| Sodium-3-trimethylsilylpropionate-2,2,3,3-D4 | Cambridge Isotope | DLM-48 | |
| Spectrophotometer | Beckman Coulter | DU-530 | |
| Spectrophotometer Cuvettes | LifeLINE | LS-2410 | 1.5 ml polystyrene, 2 clear sides |
| Syringe | Becton Dickinson | 309585 | Sterile, 3 ml Luer-Lok |
| Syringe Filter | Nalgene | 190-2520 | 0.2 μm sterile cellulose acetate |
| Tween 80 | Fisher Scientific | BP338-500 |
References
- Larsen, M. H., Biermann, K., Tandberg, S., Hsu, T., Jacobs, W. R. Genetic Manipulation of Mycobacterium tuberculosis. Curr. Protoc. Microbiol. Chapter 10, 2 (2007).
- Larsen, M. H., Biermann, K., Jacobs, W. R. Laboratory Maintenance of Mycobacterium tuberculosis. Curr. Protoc. Microbiol. Chapter 10, 1 (2007).
- Clarridge, J. E. 3rd, Shawar, R. M., Shinnick, T. M., Plikaytis, B. B. Large-scale use of polymerase chain reaction for detection of Mycobacterium tuberculosis in a routine mycobacteriology laboratory. J. Clin. Microbiol. 31, 2049-2056 (1993).
- Nguyen, B. D., Meng, X., Donovan, K. J., Shaka, A. J. SOGGY: solvent-optimized double gradient spectroscopy for water suppression. A comparison with some existing techniques. J. Magn. Reson. 184, 263-274 (2007).
- Cui, Q. Metabolite identification via the Madison Metabolomics Consortium Database. Nat. Biotechnol. 26, 162-164 (2008).
- Ulrich, E. L. BioMagResBank. Nucleic Acids Res. 36, 402-408 (2008).
- Wishart, D. S. HMDB: the Human Metabolome Database. Nucleic Acids Res. 35, 521-526 (2007).
- Kanehisa, M. KEGG for linking genomes to life and the environment. Nucleic Acids Res. 36, 480-484 (2008).
- Karp, P. D. Expansion of the BioCyc collection of pathway/genome databases to 160 genomes. Nucleic Acids Res. 33, 6083-6089 (2005).
- Halouska, S. Use of NMR metabolomics to analyze the targets of D-cycloserine in mycobacteria: role of D-alanine racemase. J. Proteome. Res. 6, 4608-4614 (2007).
- Boshoff, H. I. The transcriptional responses of Mycobacterium tuberculosis to inhibitors of metabolism: novel insights into drug mechanisms of action. J. Biol. Chem. 279, 40174-40184 (2004).
- Mehaffy, C. Descriptive proteomic analysis shows protein variability between closely related clinical isolates of Mycobacterium tuberculosis. Proteomics. 10, 1966-1984 (2010).
- Schnappinger, D. Transcriptional Adaptation of Mycobacterium tuberculosis within Macrophages: Insights into the Phagosomal Environment. J. Exp. Med. 198, 693-704 (2003).
- Schnappinger, D., Schoolnik, G. K., Ehrt, S. Expression profiling of host pathogen interactions: how Mycobacterium tuberculosis and the macrophage adapt to one another. Microbes. Infect. 8, 1132-1140 (2006).
- Shui, W. Quantitative proteomic profiling of host-pathogen interactions: the macrophage response to Mycobacterium tuberculosis lipids. J. Proteome. Res. 8, 282-289 (2009).
- Talaat, A. M., Lyons, R., Howard, S. T., Johnston, S. A. The temporal expression profile of Mycobacterium tuberculosis infection in mice. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 101, 4602-4607 (2004).
- Forgue, P. NMR metabolic profiling of Aspergillus nidulans to monitor drug and protein activity. J. Proteome Res. 5, 1916-1923 (2006).
- Goodacre, R., Vaidyanathan, S., Dunn, W. B., Harrigan, G. G., Kell, D. B. Metabolomics by numbers: acquiring and understanding global metabolite data. Trends Biotechnol. 22, 245-252 (2004).
- Shin, J. H. NMR-based Metabolomic Profiling in Mice Infected with Mycobacterium tuberculosis. J. Proteome Res. 10, 2238-2247 (2011).
- Jaki, B. U., Franzblau, S. G., Cho, S. H., Pauli, G. F. Development of an extraction method for mycobacterial metabolome analysis. J. Pharm. Biomed. Anal. 41, 196-200 (2006).
- de Carvalho, L. P. Metabolomics of Mycobacterium tuberculosis reveals compartmentalized co-catabolism of carbon substrates. Chem. Biol. 17, 1122-1131 (2010).
- de Carvalho, L. P. Activity-based metabolomic profiling of enzymatic function: identification of Rv1248c as a mycobacterial 2-hydroxy-3-oxoadipate synthase. Chem. Biol. 17, 323-332 (2010).
- Marrero, J., Rhee, K. Y., Schnappinger, D., Pethe, K., Ehrt, S. Gluconeogenic carbon flow of tricarboxylic acid cycle intermediates is critical for Mycobacterium tuberculosis to establish and maintain infection. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 9819-9824 (2010).
- Tang, Y. J. Central metabolism in Mycobacterium smegmatis during the transition from O2-rich to O2-poor conditions as studied by isotopomer-assisted metabolite analysis. Biotechnol. Lett. 31, 1233-1240 (2009).
- Kweon, O. A polyomic approach to elucidate the fluoranthene-degradative pathway in Mycobacterium vanbaalenii PYR-1. J. Bacteriol. 189, 4635-4647 (2007).
- Hasan, M. R., Rahman, M., Jaques, S., Purwantini, E., Daniels, L. Glucose 6-phosphate accumulation in mycobacteria: implications for a novel F420-dependent anti-oxidant defense system. J. Biol. Chem. 285, 19135-19144 (2010).
- Soga, T. Quantitative metabolome analysis using capillary electrophoresis mass spectrometry. J. Proteome Res. 2, 488-494 (2003).
- Metz, T. O. The future of liquid chromatography-mass spectrometry (LC-MS) in metabolic profiling and metabolomic studies for biomarker discovery. Biomark Med. 1, 159-185 (2007).
- Ludwig, C., Viant, M. R. Two-dimensional J-resolved NMR spectroscopy: review of a key methodology in the metabolomics toolbox. Phytochem. Anal. 21, 22-32 (2010).
- Simpson, R. J. Proteins and Proteomics: A Laboratory Manual. Inglis, J. , Cold Spring Laboratory Press. 425-595 (2003).
- Beste, D. J., McFadden, J. System-level strategies for studying the metabolism of Mycobacterium tuberculosis. Mol. Biosyst. 6, 2363-2372 (2010).
- Rhee, K. Y. Central carbon metabolism in Mycobacterium tuberculosis: an unexpected frontier. Trends Microbiol. , (2011).
- Who. Health Organization. Anti-tuberculosis Drug Resistance in the World: Report No. 4. , (2008).
- Jassal, M., Bishai, W. R. Extensively drug-resistant tuberculosis. Lancet Infect Dis. 9, 19-30 (2009).
