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Immunology and Infection

Uso de un medio artificial de esputo para probar la eficacia de antibióticos contra la doi: 10.3791/3857 Published: June 5, 2012

Summary

Las pruebas de diagnóstico actual sensibilidad a los antimicrobianos se basa en el crecimiento de plancton de las cepas en condiciones de nutrientes ricos y aeróbicas. En este caso, contamos con un medio alternativo de esputo artificiales para estudiar la susceptibilidad antimicrobiana de las biopelículas de Pseudomonas aeruginosa, tanto en condiciones aeróbicas y microaerófilos más representativos de la fibrosis quística pulmonar.

Abstract

Existe una preocupación creciente acerca de la pertinencia de las pruebas in vitro sensibilidad a los antimicrobianos cuando se aplica a los aislamientos de P. aeruginosa en la fibrosis quística (FQ). Los métodos existentes se basan en una sola o unas pocas cepas cultivadas aeróbicamente y planktonically. Predeterminados valores de corte se utilizan para definir si las bacterias son sensibles o resistentes a cualquier antibiótico que se administra 1. Sin embargo, durante las infecciones crónicas de los pulmones en pacientes con FQ, P. poblaciones aeruginosa existen en biopelículas y existe evidencia de que el medio ambiente es en gran parte microaerofílico 2. La gran diferencia en las condiciones entre las bacterias en el pulmón y los que durante las pruebas de diagnóstico ha puesto en duda la pertinencia fiabilidad e incluso una de estas 3 pruebas.

Medio artificial de esputo (ASM) es un medio de cultivo que contiene los componentes de esputo de pacientes con FQ, incluyendo aminoácidos y el ADN, la mucina libre. P. aeruginosa </ Em> crecimiento en el crecimiento de imitadores ASM durante las infecciones CF, con la formación de estructuras de auto-agregación de biofilm y la divergencia de la población 4,5,6. El objetivo de este estudio fue desarrollar un ensayo de microtitulación de placa para estudiar la susceptibilidad antimicrobiana de P. aeruginosa basado en el crecimiento en ASM, que es aplicable a ambas condiciones microaerófilas y aeróbica.

Un ensayo ASM se desarrolló en un formato de placa de microtitulación. P biopelículas aeruginosa se ​​dejaron desarrollar durante 3 días antes de la incubación con los agentes antimicrobianos a diferentes concentraciones durante 24 horas. Después de la interrupción del biofilm, la viabilidad celular se midió mediante la tinción con resazurina. Este ensayo se utilizó para determinar la concentración de células mínima inhibitoria sésiles (SMIC) de tobramicina por 15 diferentes P. aeruginosa bajo condiciones aeróbicas y microaerófilos y valores SMIC se compararon con los obtenidos con el crecimiento caldo estándar. Si bien no fuealguna evidencia de aumento de los valores de CIM para aislamientos cultivados en ASM, en comparación con sus homólogos planctónicas, las mayores diferencias se encontraron con las bacterias ensayadas en condiciones de microaerofilia, que mostraron una resistencia mucho mayor, hasta un> 128 veces, hacia la tobramicina en el sistema de ASM, cuando en comparación con los ensayos llevados a cabo en condiciones aerobias.

La falta de asociación entre los actuales métodos de ensayo de la susceptibilidad y la evolución clínica ha puesto en duda la validez de los métodos actuales 3. Varios modelos in vitro se han utilizado previamente para estudiar P. biopelículas aeruginosa 7, 8. Sin embargo, estos métodos se basan en las biopelículas superficie adjuntos, mientras que las biopelículas ASM se asemejan a los observados en el pulmón CF 9. Además, la concentración de oxígeno reducida en el moco se ha demostrado que altera el comportamiento de P. aeruginosa 2 y afectar a la susceptibilidad antibiótica 10. Por lo tanto using ASM en condiciones de microaerofilia puede proporcionar un entorno más realista en el que el estudio de susceptibilidad antimicrobiana.

Protocol

1. Preparación del medio de esputo Artificial (ASM)

  1. Añadir 4 g de ADN de esperma de pescado a 250 ml de agua estéril muy lentamente durante un período de varias horas. El ADN lleva varias horas para disolver completamente y se puede agitó durante la noche a temperatura ambiente.
  2. Añadir 5 g de mucina de estómago porcino (tipo II) lentamente a 250 ml de agua estéril hasta que la mucina se haya disuelto completamente. La solución puede ser agitada durante la noche a 4 ° C.
  3. Disolver 0,25 g de cada esenciales y no esenciales-L-aminoácido, con la excepción de la L-tirosina y L-cisteína, en 100 ml de agua estéril. Disolver 0,25 g de L-cisteína en 25 ml de hidróxido de potasio 0,5 M (M r 56,11 g / mol) y 0,25 g de L-tirosina en 25 ml de agua estéril.
  4. Disolver 5,9 mg de ácido dietilentriaminopentaacético (DTPA), 5 g de NaCl y 2,2 g de KCl en 100 ml de agua estéril.
  5. Combinar el ADN, la mucina, L-aminoácidos, DTPA, NaCl y KCl en una botella de 1 litro.
  6. Añadir 5 ml de yema de huevo emulsion y relleno de aproximadamente 850 ml con agua estéril.
  7. Ajustar el pH a 6,9 con Tris 1 M (pH 8,5; Mr 121.14) y llevar el volumen a 1 litro con agua estéril.
  8. Esterilizar la ASM por filtración utilizando un ME Vacuubrand 2 bomba de vacío Millipore diafragma y unidades Steritop filtro con un tamaño de poro y el cuello de 0,22 micras y 45 mm, respectivamente. Cada unidad Steritop filtro puede ser re-utilizada inmediatamente hasta tres veces, sin embargo, los filtros deben ser lavadas dos veces con agua estéril antes de su reutilización. El proceso de filtración es lenta y se puede realizar durante 2 días. Otras versiones de ASM se han desarrollado para usar la adición de antibióticos en lugar de la filtración de 11 Sin embargo, debido a posibles interacciones medicamentosas, no se recomienda el método de esta aplicación en particular.
  9. Sin filtrar y se filtró ASM debe almacenarse a 4 ° C en la oscuridad. Usando fresco ASM se recomienda sin embargo, se puede mantener bajo estas condiciones durante un máximo de un mes.

    2. Determinación de la concentración mínima planctónicas sésiles célula inhibitoria metabólico (PSMIC)

    1. Para determinar la concentración mínima inhibitoria metabólico (PSMIC) Los valores para el 15 de planktonically crecido P. aeruginosa, el método de microdilución se debe realizar, como se describe en las directrices de la Sociedad Británica de Quimioterapia Antimicrobiana BSAC 12. El antibiótico de elección, en este caso sulfato de tobramicina, se diluyen en serie en medio Luria-Bertani (LB) en una placa de microtitulación de 96 pocillos para proporcionar una gama apropiada de concentraciones de antibiótico.
    2. Diluir cultivos de una noche de P. aeruginosa en LB a una OD 600 de 0,05 (± 0,01) y añadir 100 volúmenes l a los pocillos de la placa de microtitulación de 96 pocillos que contenía 100 l del antibiótico diluyen en serie. En este caso, las concentraciones finales de tobramicina sulfato osciló entre 512 a 0,5 g / ml. Ocho repeticiones de cada ANTIBconcentración iotic debe ser realizada.
    3. Pozos de control negativo para cada aislamiento se debe establecer, en el que ningún antibiótico, se añade. Además, ocho pozos debe contener LB sólo para su uso como un blanco durante el análisis de aguas abajo (Sección 2,6).
    4. Incubar las placas de 96 pocillos de microtitulación durante 1 - 2 días a 37 ° C sin agitación en condiciones aeróbicas o microaerófilos (5% O 2, 10% de CO 2, y 85% N 2). Condiciones microaerófilas se obtienen utilizando CampyGen paquetes de generación de gas en grandes jarras anaeróbicas.
    5. Después de la incubación, el crecimiento bacteriano se determina midiendo la absorbancia del cultivo bacteriano en cada pocillo a una longitud de onda de 600 nm utilizando un lector de microplacas Fluostar Omega y el software de análisis de datos MARS.
    6. La absorción de los cultivos planctónicos tratados con antibióticos (un antibiótico tratadas las células planctónicas) y la absorción de los controles negativos (un control negativo) deben ser corregidos por restarión de la absorbancia de fondo obtenido a partir de la LB pocillos que contienen sólo (un blanco). El porcentaje de inhibición de la viabilidad posteriormente se calcula como (media ± antibióticos células tratadas planctónicos / media Un control negativo) x 100%. El PSMIC 90 se define como la concentración de antibiótico que causa 90% de inhibición del crecimiento bacteriano planctónicos.
    7. Para determinar la viabilidad bacteriana después del tratamiento con el antibiótico de elección, 10 l de 0,02% (v / v) resazurina (diluido en agua destilada) se añade a cada pocillo y las placas se incuban en condiciones aerobias durante 1 - 2 horas a 37 ° C, mientras se agitaba a 150 rpm. Las células viables se reducirá el colorante azul de resazurina a la forma resorufina rosa fluorescente.
    8. Después de la incubación con resazurina, controlar la fluorescencia de cada pocillo utilizando una longitud de onda de excitación de 540 nm y una longitud de onda de emisión de 590 nm en un lector de microplacas Fluostar Omega. Los datos deben ser analizados como se describe a serbajo.

    3. Determinación de la concentración celular de biopelículas albar mínima inhibitoria (BSMIC)

    1. Cultivos de una noche de P. aeruginosa (en este caso, 15 cepas de P. aeruginosa se ​​utilizan) debe ser diluido en LB a una OD 600 de 0,05 (± 0,01), 1:100 continuación volver a diluir en agua dulce ASM (volumen total 1,8 ml).
    2. Los cultivos diluidas (1,8 ml) debe ser añadido a cada pocillo de una placa de tejido de 24 pocillos cultivo tratado. Tres pocillos debe contener ASM sólo para su uso como un blanco durante el análisis de aguas abajo (Sección 3,9).
    3. Fijar las placas de 24 pocillos con laboratorio Parafilm y se incuba durante 3 días en condiciones aeróbicas o microaerofílico a 37 ° C, mientras se agita a 75 rpm. Condiciones microaerófilas deben obtenerse utilizando CampyGen paquetes de generación de gas en grandes jarras anaeróbicas.
    4. Diluir el antibiótico de elección, en este caso sulfato de tobramicina, para proporcionar un intervalo de concentración apropiada en frescoASM. En este ejemplo, las concentraciones finales oscilaron entre 512 a 1 mg / ml. Añadir cada concentración del antibiótico, en volúmenes de 200 l, a los pocillos apropiados de las placas de 24 pocillos. Cuatro réplicas de cada concentración de antibiótico se debe realizar. Las biopelículas no expuestas al antibiótico de elección se utilizaron como control negativo.
    5. Fijar las placas de 24 pocillos con laboratorio Parafilm y se incuba en condiciones aerobias o microaerofílico durante 24 horas a 37 ° C, mientras se agita a 75 rpm.
    6. Después de la incubación en presencia del antibiótico de elección, interrumpir las biopelículas bacterianas utilizando 100 l de 100 mg / ml de celulasa (diluido en tampón citrato 0,05 M [9,6 g / l Citrate.H 2 0 en el agua y el pH a 4,6 con NaOH] ) e incubar las placas de 24 pocillos en condiciones aerobias a 37 ° C, mientras se agitaba a 150 rpm durante 1 h. Si es necesario, las biopelículas podría ser más interrumpido por pipeteado manual en esta etapa.
    7. Para determinar las actividades metabólicasde las células bacterianas liberados de las biopelículas interrumpidas, 100 l de 0,02% (v / v) resazurina (diluido en agua destilada) se añadió a cada pocillo de las placas de 24 pocillos y se incubaron durante 1 a 2 horas a 37 ° C , mientras se agitaba a 150 rpm.
    8. Después de la incubación con resazurina, medir la fluorescencia de cada pocillo utilizando una longitud de onda de excitación de 540 nm y una longitud de onda de emisión de 590 nm en un lector de microplacas Fluostar Omega y el software de análisis de datos MARS.
    9. Fluorescencia de las biopelículas tratados con antibióticos (F tratados con antibióticos biopelículas) y la fluorescencia de los controles negativos (control negativo F) debe ser corregida por sustracción de la fluorescencia de fondo obtenido a partir de los pocillos que contienen sólo ASM (F en blanco). El porcentaje de inhibición de la viabilidad posteriormente se calcula como (media de F biopelículas antibióticos tratados / F: control negativo) x 100%. El BSMIC 90 se define como la antibioticoterapiaconcentración tic causando 90% de inhibición de la actividad metabólica.

    4. Los resultados representativos

    La formación de biopelículas ASM es posible en pequeñas (2 ml) y los volúmenes de las biopelículas están completamente formadas dentro de 3 días (Figura 1A). Esto se puede demostrar por pipeteado rigurosamente la biopelícula, que debe ser difícil de alterar. Las microcolonias son comparables a los que se cultivan en grandes volúmenes 4 (Figura 1B). Figura 2 muestra las principales diferencias entre las células cultivadas planktonically y en una biopelícula como se detectó por análisis de imagen microscópica de electrones. Biofilm culturas muestran claramente niveles considerables de la matriz extracelular que rodea las células y estructuras individuales dentro del biofilm son difíciles de identificar.

    Varios estudios sugieren que el estilo de vida de biopelículas pueden afectar la susceptibilidad antimicrobiana 13, 14. Nuestro pequeño ensayo de ASM a escala se puede utilizar para determine la BSMIC de múltiples antibióticos para aislamientos múltiples al mismo tiempo. El flujo de trabajo del ensayo se muestra en la Figura 3. El efecto de los antibióticos sobre la viabilidad celular bacteriana se puede medir utilizando el ensayo de resazurina. Los antibióticos, en este caso tobramicina, se puede añadir a la biopelícula establecido y se incubaron durante 24 h. Después de esta biopelícula se interrumpe y la resazurina se añade.

    Células metabólicamente activas pueden reducir el colorante resazurina resultando en un cambio de color de azul (resazurina) a rosa (resorufina) 15. Figura 4A muestra un ensayo de ejemplo en el que p aeruginosa se ​​incubó con diferentes concentraciones de tobramicina antes de la interrupción del biofilm y la adición de resazurina en una placa de microtitulación. El azul no fluorescente de color indica células no viables, mientras que las células viables reducir el colorante a la forma rosa fluorescente, resorufina. El SMIC entonces puede calcularse mediante la conversión de fluorescencia en porcentajerestante viabilidad bacteriana. Figura 4B muestra el cambio en la viabilidad% con la concentración creciente de tobramicina. 10% de viabilidad fue elegido como un punto de corte a fin de calcular el SMIC 90.

    En condiciones aeróbicas, los tobramicina SMIC 90 valores son más altos para las células cultivadas como un biofilm que las de los cultivos planctónicos. La Tabla 1 muestra la variación en PSMIC 90 y 90 BSMIC para todos los aislados ensayados. Tabla 2 muestra que bajo condiciones aeróbicas, un aumento espectacular en la resistencia a la tobramicina (2 a> 32 veces mayor en SMIC) se observó para la mayoría de los aislados cuando se cultiva en ASM (biopelícula modo) en comparación con LB (modo planctónicos). Además, las biopelículas que crecen bajo condiciones microaerófilas exhibió un aumento de SMIC entre 2 y> 128 plegable cuando se compara con las biopelículas que crecen bajo condiciones aeróbicas.

    Figura 1
    Figura1. La formación de biopelículas de P. aeruginosa en ASM P. Aeruginosa cepa PAO1 forma grumos visibles macroscópicamente (microcolonias) cuando se cultivan en ASM. A, la formación de biopelículas en 30 ml culturas ASM (gran escala), después de 7 días de crecimiento en el tornillo de la tapa de vidrio Duran frascos. B, La formación de biopelículas en los cultivos de 2 ml ASM ( pequeña escala) después de 3 días de crecimiento en placas de poliestireno de 24 pocillos.

    Figura 2
    Figura 2. Las micrografías TEM de biopelículas ASM A / C TEM micrografía (x; 27.000) de la PAO1 crecido planktonically y en ASM, respectivamente, B / D TEM micrografía (x57, 000) de plancton PAO1grown y en ASM, respectivamente. Las bacterias que crecen planktonically se cultivó durante la noche en caldo LB. Las biopelículas se cultivaron durante 7 días en 30 ml de cultivos de ASM. Las flechas negras se refieren a las células dentro de la biopelícula y las estrellas se refieren a los espacios extracelulares. Las barras de escala = 1micras.

    Figura 3
    Figura 3. Flujo de trabajo de la prueba de susceptibilidad antimicrobiana ASM biofilm.

    Figura 4
    Figura 4. El uso de resazurina para la determinación de la susceptibilidad a antibióticos células bacterianas fueron incubadas con diferentes concentraciones del antibiótico y la actividad metabólica restante se determinó utilizando resazurina. A, el azul no fluorescente forma oxidada de resazurina indica células no viables y se reduce por metabólico células activas a rosa fluorescente resorufina. B, la intensidad de fluorescencia se convierte en porcentaje de viabilidad bacteriana restante. 10% de viabilidad fue elegido como punto de corte con el fin de calcular el MSMIC90. Haga clic aquí para ver la LARger figura.

    Las cepas PSMIC 90 (g / ml) 1 BSMIC 90 (g / ml) 1
    Aerobio Microaerofílico 2 Aerobio Microaerofílico 2
    PAO1 4 4 8 > 512
    Liverpool cepa epidémica (LES) de los aislamientos
    LESB58 21 8 64 64 128
    LES400 22 32 128 8 256
    LESB25 16 32 256 512
    LESB55 16 64 64 > 512
    LESB64 16 64 > 512 > 512
    LES431 22 4 8 32 > 512
    LESB49 16 64 64 256
    LES109 32 128 32 > 512
    No LES aislados
    49461 16 32 16 > 512
    59032 0.5 2 4 > 512
    59073 > 512 > 512 > 512 > 512
    59076 16 32 32 > 512 </ Td>
    27 8 16 4 > 512
    45 16 32 4 > 512

    Tabla 1. La susceptibilidad de P. aeruginosa a la tobramicina.

    1 Para la determinación de PSMICs y tobramicina BSMICs fue utilizado en dos diluciones dobles
    que van desde 512 hasta 0,5 g / ml (n = 8 para cada concentración) y 512 a 1 mg / ml (n = 4 para cada
    concentración), respectivamente;; PSMICs se determinaron utilizando el estándar
    microdilución método 1.

    2 condiciones de microaerofilia fueron del 5% de O 2, 10% de CO 2, y el 85% de N 2.

    Tensión PSMIC 90 / BSMIC 90 veces el cambio 1
    PSMIC aeróbico
    PSMIC microaerófilos
    BSMIC aeróbico
    BSMIC microaerófilos
    PSMIC aeróbico
    BSMIC aeróbica
    PSMIC microaerófilos
    BSMIC microaerófilos
    PAO1 0 > 64 2 128
    LES aísla
    LESB58 8 2 8 2
    LES400 4 32 0,25 2
    LESB25 2 2 16 16
    LESB55 4 > 8 4 > 8
    LESB64 4 ND > 32 > 8
    LES431 2 > 16 8 > 64
    LESB49 4 4 4 4
    LES109 4 16 0 > 4
    No LES aislados
    49461 2 > 32 0 > 16
    59032 4 > 128 8 > 256
    59073 ND ND ND ND
    59076 2 > 16 2 > 16
    27 2 > 128 0.5 > 32
    45 2 > 128 0,25 > 16

    Tabla 2. Veces el cambio de PSMICs y BSMICs a la tobramicina.

    1 ND, no determinado, los valores en negrita indican SMIC cambios veces más de 10.

Discussion

En este estudio se utilizó un novedoso modelo in vitro sobre la base de ASM para replicar P. condiciones aeruginosa biofilm en el pulmón de la FQ 4. El modelo se ha modificado correctamente a pequeña escala, de alto rendimiento de las pruebas de los agentes antimicrobianos.

Los pasos críticos de este ensayo son:

  1. La preparación consistente de los medios de comunicación ASM y el mantenimiento de la esterilidad. Se ha dedicado largas horas para optimizar la forma en que se añade cada componente para obtener resultados reproducibles en todo momento. La filtración de la ASM es lento, pero es preferible a tratamiento en autoclave, lo cual puede dañar el componente de mucina. No recomendamos la adición de antibióticos, según lo sugerido por otros 11, porque esto puede imponer considerables presiones selectivas, las mutaciones de unidad, inducir la lisis profago 16 y altera significativamente la expresión de múltiples genes bacterianos.
  2. El ensayo debe ser optimizado en función del volumen de Of ASM utilizado. Velocidades de agitación se aumentó para los pequeños volúmenes y un biofilm más corto ciclo de vida se observa.

Una aplicación obvia del modelo de biofilm a pequeña escala ASM es la determinación más realista de las susceptibilidades a los antimicrobianos (biofilm BSMIC 90). Nichos anaeróbicos y microaerófilos están presentes en el pulmón CF y existe evidencia de que el oxígeno se limita profundamente dentro maduro biopelículas 2, 17. Aquí demostramos que el 10/14 P. clínica aeruginosa aisladas de pacientes con FQ presentan una considerable esputos (4 - ≥ 128 veces) disminución de la sensibilidad a la tobramicina en condiciones de microaerofilia en ASM. Los resultados de este estudio sugieren que los antibióticos, como la tobramicina, podría ser menos eficaz frente a P. infecciones aeruginosa en el pulmón con FQ que los indicados por los métodos convencionales de las pruebas de sensibilidad. Estos resultados reflejan los estudios previos sobre la susceptibilidad antimicrobiana de las biopelículas 10. Pequeñaescala de ensayos ASM por lo tanto ofrecer una plataforma sencilla de alto rendimiento para generar datos significativos de sensibilidad a los antibióticos para informar mejor a las decisiones terapéuticas. El ensayo se limita en la misma forma que las pruebas convencionales de susceptibilidad a los antibióticos en que las colonias individuales se recogen para la detección de que puede no ser representativa de toda la población. Sin embargo, creemos que un enfoque (i) que no se usen de la superficie del crecimiento del biofilm adjunto y (ii) aplicable a las condiciones de microaerofilia, representa una alternativa clara y una mejora potencial de los métodos existentes. Llegamos a la conclusión de que este ensayo es un modelo adecuado para estudiar P. poblaciones aeruginosa biofilm. La prueba adicional en el ámbito clínico que se dilucide si la susceptibilidad a antibióticos sobre la base de biofilm crecido P. aeruginosa podría dar lugar a diferentes opciones de antibióticos con potencial mejora de los resultados microbiológicos y clínicos. Investigaciones similares que utilizan los modelos clásicos de biofilm han demostrado que los valores BSMIC conducirdiferentes a las recomendaciones para el tratamiento con antibióticos 5,17.

Además de las pruebas para la efectividad de los agentes anti-infecciosos, el sistema ASM representa una alternativa barata, simple y reproducible a los modelos animales para estudios tales como los destinados a la comprensión de la diversificación de la P. poblaciones aeruginosa. Hemos observado amplia heterogeneidad en las poblaciones naturales de P. aeruginosa recuperado de pacientes con CF esputos 18, 19. La diversificación fenotípica y genotípica similar se puede observar durante el crecimiento en ASM 4 (y nuestros datos no publicados), por lo que es un atractivo modelo in vitro de las enfermedades de los pulmones CF. La relativa simplicidad del modelo ASM facilita el diseño de experimentos a largo plazo de adaptación destinados, por ejemplo, en el seguimiento de los efectos de los antibióticos u otros estreses de la P. aeruginosa divergencia de la población. Además, otros patógenos bacterianos se puede cultivar enASM. Por ejemplo, Fouhy et al. 2007 han utilizado ASM para estudiar la formación del biofilm de S. maltophillia 20.

Disclosures

No hay conflictos de interés declarado.

Acknowledgments

Queremos agradecer el apoyo del Reino Unido, el Instituto Nacional de Investigación en Salud, el Dr. Hadwen Fideicomiso para la Investigación Humana, la principal de financiación médica del Reino Unido organización benéfica de investigación exclusivamente técnicas sin animales de investigación para sustituir los experimentos con animales, y el Wellcome Trust (089.215 de subvención). También agradecemos a Novartis Pharmaceuticals UK Ltd (beca educativa sin restricciones).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
DNA from fish sperm Sigma-Aldrich 74782
Mucin from porcine stomach, type II Sigma-Aldrich M2378
L-Alanine Acros Organics 102830250
L-Arginine Sigma-Aldrich A5006
L(+)-Asparagine monohydrate Acros Organics 175271000
L(+)-Aspartic acid Acros Organics 105041000
L-Cysteine Sigma-Adrich 168149
L(+)-Glutamic acid Acros Organics 156211000
L-Glutamine Sigma-Aldrich G3126
Glycine Acros Organics 220911000
L-Histidine Sigma-Adrich H8000
L-Isoleucine Sigma-Aldrich I2752
L-Leucine Sigma-Aldrich L8000
L(+)-Lysine monohydrochloride Acros Organics 125222500
L-Methionine Sigma-Aldrich M9625
L-Phenylalanine Acros Organics 130310250
L-Proline Sigma-Aldrich P0380
L-Serine Acros Organics 132660250
L-Threonine Acros Organics 138930250
L(-)-Tryptophan Acros Organics 140590250
L-Tyrosine Acros Organics 140641000
L-Valine Sigma-Aldrich V0500
Diethylenetriaminepentaacetic acid Sigma-Aldrich 32318
NaCl Fisher Scientific S/3160/60
KCl VWR BDH0258
KOH VWR BDH0262
Egg yolk emulsion Sigma-Aldrich 17148
ME 2 diaphragm vacuum pump Vacuubrand 696126
Steritop filters (Pore size: 0.22 μm, Neck size: 45 mm) EMD Millipore SCGPT10RE
Luria-Bertani medium Sigma-Aldrich L2897
96-well microtitre plates Sarstedt Ltd 82.1581
24-well tissue culture-treated plates Iwaki, Asahi Techno Glass Corp. 3820-024
CampyGen gas generation packs Oxford Labware CN0025
Microaerophilic chamber Oxford Labware HP0011
Tobramycin sulphate Sigma-Aldrich T1783
Cellulase, from Aspergillus niger Sigma-Aldrich 22178
Resazurin Sigma-Aldrich 199303
Citrate.H20 VWR BDH0288
Fluostar omega microplate reader BMG-Labtech SPECTROstar Omega

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

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Uso de un medio artificial de esputo para probar la eficacia de antibióticos contra la<em&gt; Pseudomonas aeruginosa</em&gt; En condiciones más pertinentes a la fibrosis quística pulmonar
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Kirchner, S., Fothergill, J. L., Wright, E. A., James, C. E., Mowat, E., Winstanley, C. Use of Artificial Sputum Medium to Test Antibiotic Efficacy Against Pseudomonas aeruginosa in Conditions More Relevant to the Cystic Fibrosis Lung. J. Vis. Exp. (64), e3857, doi:10.3791/3857 (2012).More

Kirchner, S., Fothergill, J. L., Wright, E. A., James, C. E., Mowat, E., Winstanley, C. Use of Artificial Sputum Medium to Test Antibiotic Efficacy Against Pseudomonas aeruginosa in Conditions More Relevant to the Cystic Fibrosis Lung. J. Vis. Exp. (64), e3857, doi:10.3791/3857 (2012).

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