En kvantitativ Fitness analys Workflow

Summary

Kvantitativ Fitness Analys (QFA) är en kompletterande serie experimentella och beräkningsmässiga metoder för att skatta mikrobiella kultur fitnesses. QFA beräknar effekten av genetiska mutationer, läkemedel eller andra behandlingar appliceras på mikrob tillväxt. Experiment skalning från fokuserad analys av en enda kultur tusentals parallella kulturer kan utformas.

Abstract

Kvantitativ Fitness Analys (QFA) är en experimentell och beräkningsvetenskap arbetsflöde för att jämföra fitnesses av mikroorganismkulturer odlade parallellt ^1,2,3,4. QFA kan tillämpas på fokuserade observationer av enskilda kulturer men är mest användbar för Genomvid genetiska interaktion eller skärmar läkemedel utreder upp till tusentals oberoende kulturer. Den centrala experimentella metoden är ympning av oberoende, utspädda flytande mikroorganismkulturer på fasta agarplattor som inkuberas och regelbundet fotograferas. Fotografier från varje tidpunkt analyseras, vilket ger kvantitativa uppskattningar celltäthet, som används för att konstruera tillväxtkurvor, vilket tillåter kvantitativ kondition som skall härledas. Kultur fitnesses kan jämföras för att kvantifiera och rangordna genetiska samspel styrkor eller känsligheter läkemedel. Effekten på kulturen lämplighet eventuella behandlingar tillsätts i underlaget agar (t.ex. små molekyler, antibiotika eller näringsämnen) eller appliceras på plattor externly (t.ex. UV-bestrålning, temperatur) kan kvantifieras genom QFA.

Den QFA arbetsflödet producerar tillväxt beräknar analoga med de som erhållits genom spektrofotometrisk mätning av parallella flytande kulturer i 96-brunns-eller 200-brunnars platta läsare. Viktigare är QFA signifikant högre genomströmning jämfört med sådana metoder. QFA kulturer växa på ett fast agar yta och är därför väl luftas under tillväxt utan behov av omrörning eller skakning.

QFA genomströmningen är inte så hög som den hos vissa syntetiska genetiska Array (SGA) screeningmetoder ^5,6. Eftersom QFA kulturer kraftigt späds innan de ympas på agar, kan QFA fånga mer kompletta tillväxtkurvor, inklusive exponentiell och faser mättnad ^3. Till exempel tillväxtkurva observationer tillåter kultur fördubbling tider uppskattas direkt med hög precision, som diskuterats tidigare ^1.

Här presenterar vi enspecifika QFA protokoll tillämpas på tusentals S. cerevisiae kulturer som automatiskt hanteras av robotar under ympning, inkubation och bildhantering. Alla dessa automatiska steg kan ersättas av en likvärdig, manuell procedur med en tillhörande minskning av kapacitet, och vi presenterar en lägre protokoll genomströmning manual. Samma QFA mjukvaruverktyg kan tillämpas på bilder tagna i någon arbetsflöde.

Vi har lång erfarenhet av att tillämpa QFA till kulturer av den spirande jästen S. cerevisiae men vi förväntar oss att QFA kommer att vara lika användbar för att undersöka kulturer fissionsjäst S. pombe och bakteriekulturer.

Protocol

Manuell QFA Protokoll (för S. cerevisiae stammar)

1. Odling av jäst-stammar

1. Upp till 96 oberoende jäststammar odlades i 200 pl rika flytande media i en 96-brunnars odlingsplatta. Stammarna odlades till mättnad i en temperaturstyrd inkubator.
2. En 96 pin, 1/8 "diameter manuell replik plater (SIGMA R-2508) steriliseras genom att först doppa repliken plater i 100% etanol, flammande och sedan lämnar svalna.
3. 200 | il sterilt vatten är anordnade i en 96-brunnars odlingsplatta. De mättade kulturerna vortexas (Eppendorf MixMate, 30 sek, 750 rpm) och späds genom att doppa steriliserade stiftet verktyget till mättade stammarna tre gånger sedan i plattan som innehåller vatten en gång.
4. Tappen verktyget omsteriliseras enligt 1,2.
5. Den steriliserade PIN verktyget används för att upptäcka den utspädda kulturen på sålda agarplattor genom att doppa i plattan som innehåller den utspädda kulturen tre gångern överför tappen verktyget till en rektangulär fast agarplatta.
6. De rektangulära fasta agarplattor inkuberas vid en lämplig temperatur innan den avbildas manuellt med en S & P Robotics spImager. Alternativa image capture metoder kan också användas som en FujiFilm LAS4000, eller en billigare digital SLR kameran om omsorg vidtas för att säkerställa jämn belysning och konsekvent plattan positionering i förhållande till avbildning kameran.
7. Metoden kan anpassas till ett mindre antal parallella kulturer, såsom 48, vilka kan monteras på runda petri-skålar om man är noga med att säkerställa samma vinkel i förhållande till bildkamera under varje bild.

Helautomatiserad QFA protokoll (för S. cerevisiae-stammarna)

2. Odling av jäst-stammar

1. Starta med en rektangulär gruppering av oberoende jäststammar som växer på fast agar. I detta exempel börjar stammar är resultatet av korsande en temperaturkänsliga fråga mutation med jästen radering Collection (YDC) av Synthetic Genetisk Array (SGA). Slutliga SGA plattor är år 1536-format. Detta är 16 rader gånger 24 kolumner med kolonier / kulturer som representerar fyra replikat av 384 oberoende jäststammar. Se figur 1 för plattan layouter.
2. 384 stammar ut på 1536 överförs robot med en S & P Robotics Inc. BH3-SC robot med en 96 tapp, 1-mm bendiametern steril pintool i fyra 96-brunnars odlingsplattor innehållande 200 | il av selektiva media (figur 1). Pintool renhet och sterilitet åstadkoms genom sekventiell tvättning i sterilt vatten två gånger (en gång med en roterande borste för att avlägsna skräp), 70% etanol (med sonikering) och slutligen 100% etanol.
3. Kulturerna odlades till mättnad (i tre dagar vid 20 ° C i detta exempel, se figur 1).

3. Spotting jästkulturer

1. Med hjälp av en Beckman Biomek FX, mättade kulturerre återsuspenderades genom virvling på en Variomag Teleshake (moturs vid 1000 rpm under 20 sekunder) och späddes ungefär 1:70 genom att fästa in 200 pl sterilt vatten med användning av en steril 96 stift robotliknande stift verktyget (V & P Scientific magnetisk montering pintool, 2 mm bendiametern). Pin verktyget renhet och sterilitet åstadkoms genom tvättning i sterilt vatten, tvättning i 70% etanol (med en borste för att avlägsna skräp) och slutligen doppning i 70% etanol följt av torkning.
2. Utspädda kulturer fläckig på fasta agarplattor i 384-format med samma robot PIN-kod verktyg (se figur 1) efter rengöring och sterilisering.
3. Efter nålning, är plattorna överfördes till en Cytomat temperaturkontrollerad, fuktad inkubator med automatisk karusellen och lucka.

4. Bildinsamling

1. En S & P Robotics automatiska kameran bort upprepade gånger plattorna från Cytomat inkubatorn, avlägsnar plattan locket, lägger dem just under en bifogad, jämnt belyst utrymme under en Canon EOS Rebel Ti 35mm DSLR, fångar en bild vid 5184 x 3456 px upplösning, ersätter plattan locket och returnerar dem till inkubatorn karusellen. En bild har tagits omedelbart efter inledande överföringen till inkubatorn för att möjliggöra en noll tidpunkt tillväxt mätning (bakgrund). Robot hantering och fotografering tar 2 minuter per platta.
2. Med en fullastad karusell, är den maximala uppnåbara plattan bildfångst frekvens en bild var sjätte timme. Plattorna inkuberas i upp till sex dagar (tills kolonitillväxt mättnad. Figur 1 visar tre typiska bilder från en tid-kurs vid 20 ° C.
3. För spårning ändamål plattorna namnges efter inkubator namn, temperatur, unika sekventiella batchnummer och position i inkubatorn. Image namn är en sammansättning av plåt namn och tidsstämpel och automatiskt konstrueras på Bildinsamling (t.ex. K000011_030_010_2011-09-22_09-47-54.jpg, Filtyp FT1, Tabell 1).

5. Infångning av experimentell metadata

De metadata filerna som beskrivs i detta avsnitt är tabbavgränsade textfiler som manuellt genereras (t.ex. med kalkylprogram). Den experimentella Beskrivning filen (FT2, tabell 1) är unik för varje experiment, men biblioteket Beskrivning (FT3, tabell 1) kan återanvändas i stor utsträckning en gång konstruerat.

1. Försöket beskrivs i den experimentella Beskrivning filen (FT2, Tabell 1) med kolumner för streckkod (eller automatiskt genererade platta namn), experimentera start tidsstämpel, plåt behandling, innehållet av fast agar medium, skärmnamn, bibliotek, registreringsnummer (för bibliotek med flera plattor) och en upprepad kvadrant nummer (se figur 1) för att skala ner från 1536-format till 384-format.
2. Den jäststam biblioteket beskrivs med ett bibliotek Beskrivning fil (FT3,
3. En valfri Standard Gene Namn fil (FT4, Tabell 1) som beskriver standarden genen namn (t.ex. RAD9) associeras med varje systematiskt ORF y-nummer (t.ex. YDR217C) identifiera stammar som kontrolleras kan tillhandahållas. Den här filen innehåller två kolumner: ORF & Gene namn.

6. Dataanalys

Den QFA beräkningsmässiga arbetsflödet kräver tillgång till en någorlunda kraftfull multicore datorarbetsplats (t.ex. en Dell Precision T3500 med Xeon quad-core 2,67 GHz-processor och 12 GB RAM) som är installerat Colonyzer bilden verktyget analysmjukvara ^3,4 och QFA R-paketet ⁷ , vilka båda dokumenterade på nätet, är fritt tillgängliga och körs på en rad olika operativsystem.

1. Springa Colonyzer med var och en av de infångade plattan bilder som insignal och genererar en fil Colonyzer utgång (FT5 tabell 1) för varje tagna bilden. Colonyzer utdatafiler ange uppskattningar kultur densitet, kultur område, form och färg för varje 384 platser på den avbildade plattan. Utgång filnamn automatiskt kopieras från källan bilden filnamnet (t.ex. plattan fotografiet K000011_030_010_2011-09-22_09-47-54.jpg (FT1, tabell 1) motsvarar den Colonyzer utdatafilen K000011_030_010_2011-09-22_09-47-54.dat ( FT5, Tabell 1)).
2. Använda QFA R-paketet, ladda experimentell metadata (FT2, tabell 1) och Colonyzer filer utgång (FT5 tabell 1). Dessa data slås samman till R dataramar (som kan exporteras som QFA Raw Data textfiler FT6 (tabell 1)) för vidare analys.
3. Den QFA R Paketet innehåller funktioner för att samla timecourses celldensitet för varje kultur, för att passa allmän logistic befolkningen modeller till synpunkter och plot båda (se figurerna 2 och 3 för exempel). Monterade parametervärden skrivs till QFA Logistisk parameterfiler (FT7 tabell 1). Se QFA R-paketet dokumentationen för mer information.
4. Den QFA R Paketet innehåller också funktioner för kvalitetskontroll: kanten kolonier förkastas på grund av den större tillgången på näringsämnen på plattan kanterna och svårigheter med bildanalys i närheten tallrik väggar, kulturer som misslyckades SGA och genotyper visa koppling till screen-specifika markörgener tas bort från analysen.
5. Flera kvantitativa fitness åtgärder härrör från logistiska parametrar befolkningen modell för varje kultur. Dessa inkluderar maximisatser populationsfördubblingstid (MDR) och antalet divisioner från ympning till mättnad (MDP). För varje uppsättning likadana kulturer (unika genotyp till exempel) och för varje fitness definition flera sammanfattande statistik över fitness uppskattningar computdelade: medelvärde och median fitness, fitness standardavvikelse och antal replikat observerats. Sammanfattande statistik ut till QFA Fitness Sammanfattning filer (FT8, tabell 1) för vidare analys, till exempel beräkning av genetiska interaktion poäng (FT9 tabell 1).

7. Representativa resultat

Figur 2 visar en typisk tillväxtkurva av 384 QFA kulturer växer vid 20 ° C på fast agar som kvantifierades genom Colonyzer, med ökning i celldensitet först har blivit detekterbar efter ungefär 2 dagar. Denna försening är sannolikt en kombinerad effekt av en kultur fördröjning fas efter inokulering på fast medium och en undre detektionsgräns för cell densitet. Figur 3 visar 308 liknande tillväxtkurvor tagna från en enda platta. Figur 4 visar en jämförelse av två Genomvid QFA skärmar att sluta genetiskainteraktion styrkor (anpassad från ^1). Den QFA R Paketet ⁷ innehåller även funktioner för att producera figur 3 och mata rangordnade listor av undersökta genotyper och uppskattningar av genetiska samspel styrka (GIS), tillsammans med ett Q-värde (falskt Discovery Rate (FDR) korrigerat p-värde) för betydelsen av observerade GIS.

Figur 1. Schema för robot ympning av jäststammar i 384-plats format. Detta förfarande börjar med 1536 oberoende kulturer per platta (vänster). I denna typiska exempel kolonier i positioner 1,1, 1,2, 2,1 och 2,2 (rött) är fyra replikat av samma genotyp his3 :: KANMX kulturer i gult, växer på kanten av plattan. har en tillväxt fördel på grund av bristande konkurrens och därför inte granskas av QFA. En av dessa upprepningar (t.ex. 1,1) ympas i flytande tillväxtmedium i 96-brunnars platta s med användning av en 96-stifts verktyg som inoculates 96 av 1536 kolonier per gång. För att ympa ett replikat för varje 384 gendeletioner, fyra olika "kvadranter" (anges som röd, blå, grön och lila) inokuleras i fyra olika 96-brunnar innehållande tillväxt media. Efter tillväxt till mättnad (t.ex. 3 dagar vid 20 ° C), kulturerna späddes i vatten, sedan de fyra kvadranterna från en upprepning är fläckig i 384-format på en fast agarplatta (höger) i samma mönster som det ursprungliga SGA plattan (såsom indikeras av färg). Processen kan upprepas för att testa andra replikerar: 1,2; 2,1 och 2,2. Exempel tidsförlopp bilderna till höger fångades 0,5, 2 och 3,5 dagar efter inokulering. Anpassad från Kompletterande figur 1 ^2. Klicka här för att visa en större bild .

018/4018fig2.jpg "/>
Figur 2. En enda robot-infångade QFA tillväxtkurva. A) QFA tillväxtkurvan för en jäststam som växer på agar innehållande galaktos vid 20 ° C. Bilder fångades robot ungefär var 2 timmar. Exponentiella fasen vid denna temperatur kunde observeras under ca 1,5 dagar, med kulturen densitetsökning först har blivit detekterbar ca 2 dagar efter inokulering. En generaliserad logistisk modell passar till observerade data (grå kurva). Modellparametrar automatiskt monterad av QFA R-paketet presenteras: K (bärförmåga (AU)), R (tillväxthastighet (d ^-1)), g (inokulat densitet (AU)), v (tillväxt symmetri). B) När det gäller panel A, plottade med cell densitet på en log-skala. Klicka här för att visa en större bild .

Figur 3. Automatiskt genen rankade tillväxtkurvor fångas parallellt från en enda 384-formatet plattan. Varje panel visar beräkningar celldensitet (röda kors) och modellen passar (svarta kurvor) för oberoende kulturer märkta av gen namn eller ORF y-nummer odlas i ett QFA förfarande. Detta exempel Plattan avbildas av roboten och odlades i en automatiserad inkubator vid 20 ° C. Experimentell metadata automatiskt ingår i figuren titeln: plåt namn, tallrik behandling agarmedium och bibliotek registreringsnummer. Anpassade modell parametervärden också automatiskt skrivs ut på varje panel (se figur 2). Edge kulturer bort från QFA analys lämnar 308 kulturer i denna kurva (se QFA Protocol 5,4). Eftersom kanten kulturer inte analyseras i QFA är dessa kultur platser vanligtvis fylld med neutrala kontroll stammar (pGAL-HIS3 i detta fall). Den ursprungliga versionen av denna figur är produktionen av QFA R-paketet i. Pdf-format och är därför oändligt zoombar och sökbar via text frågor.:/ / Www.jove.com/files/ftp_upload/4018/4018fig3.pdf "target =" _blank "> Klicka här för att visa en större bild.

Figur 4. Jämföra fitnesses från två QFA skärmar att härleda genetiska samspel. Detta diagram visar jämförelse av lämplighet spirande jäst deletioner (yfgΔ) i kombination med den neutrala ura3A mutationen eller temperaturkänsliga CDC13-1 mutationen och vuxit i semi-toleranta temperatur för CDC13- 1 (27 ° C). Fitness beräknades som produkten av maximala dubblering ränta och maximal fördubbling potential ^1. De flesta deletionsstammar växa bra i kombination med den neutrala ura3A mutation, som förväntat och har hög fitness, men strykningar kombinerat med CDC13-1 har ett brett utbud av fitnesses. De ljusblå linjerna passerar the plats för neutrala his3Δ mutationen är den heldragna linjen en linjär regressionsmodell av genetisk självständighet (förväntad lämplighet CDC13-1 yfgΔ mutanter som ges lämplighet ura3A yfgΔ mutanter) och den streckade linjen är den linje lika kondition. Strykningar grön avsevärt förbättra konditionen defekt hos CDC13-1-stammar. Strykningar röd dämpa avsevärt samma defekt. Vertikalt avstånd av någon mutation CDC13-1 yfgΔ från den fasta linjen anger styrkan av genetiska samspel mellan CDC13-1 och yfgΔ under plattan förhållanden. Observera att en del av de starkaste suppressorer av CDC13-1 tidigare har identifierats checkpoint gener, RAD17, DDC1 och RAD24 och nukleas EXO1 nära toppen till höger. Gener vars borttagning minskar fitness inkluderar YKU80 (som kodar för DNA-reparation och telomer tak protein YKU80) nära nere till höger. Observera också att vissa grupper av gener som fungerar tillsammans tenderar att samlokaliseras på denna tomt. Tre exempel kluster markeras i blått SPE1, SPE2 och SPE3: spermidin syntes gener, RAD17 och DDC1 och RAD24: komponenter som kodar för checkpoint glidande klämman och Checkpoint klämma lastare, MRE11, RAD50 och XRS2: den MRX komplexet, som deltar i DDR och EST1 & EST3: gener involverade i telomerlängd reglering. Anpassad från Kompletterande figur 1B ¹ kan rådata från vilken denna tomten genererades laddas ner härifrån: http://research.ncl.ac.uk/colonyzer/AddinallQFA/ . Klicka här för att visa en större bild .

"> Fil-ID Filtyp Manuellt Konstruerad Uppdateringsfrekvens Förutsättning FT1 Plattan fotografi Ingen Per platta och tidpunkt Ja FT2 Experimentell beskrivning Ja Per experiment Ja FT3 Biblioteket Beskrivning Ja Per bibliotek Ja FT4 Standardmetoder Gene Namn Ja Per bibliotek Ingen FT5 Colonyzer-utgång Ingen Per tidpunkt per platta Ja FT6 QFA Rådata Ingen Per experiment - FT7 Ingen Per experiment - FT8 QFA Fitness Sammanfattning Ingen Per experiment - FT9 QFA Genetisk Interaktion Träfflistan Ingen Per GIS studie (2 expts.) -

Tabell 1. Elektroniska QFA filer. Alla angivna filer (utom FT1) är tabbavgränsade textfiler och kan konstrueras eller läsa med någon textredigerare eller kalkylprogram. För ytterligare information om att bygga QFA metadata filer och exakt tolkning av QFA utgång se QFA R paketdokumentation ⁷ och Colonyzer dokumentationen till programvaran ^3.

Tabell 2. Metoder för bedömning av kultur fitness. En sammanfattning av funktionerna och kräverningar av ett antal metoder för att bedöma mikrobiell odling fitness. En översyn av Blomberg ⁸ innehåller mer detaljerad jämförelse av några av dessa. Klicka här för att visa en större bild .

Discussion

QFA är i många avseenden en direkt ättling till tre etablerade bänk skala mikrobiologiska tekniker: kultur spädningsserie stickprov ^9, tillväxtkurva beslutsamhet i luftade flytande kulturer ⁹ och replica plating ^13. Dessa tre metoder sammanfattas och jämföres med QFA och andra storskaliga metoder i tabell 2. I spädningsserier stickprov definierar en stam lämplighet som dess förmåga att bilda kolonier i en serie av kulturer som odlats från en rad av inokulat spädningar att QFA åtgärder stam kondition genom att upprepade observationer av en enda kultur konstruera en tillväxtkurva. Kvantifiera fitness från enstaka kulturer ger många fler stammar som skall undersökas samtidigt under identiska förhållanden. Replikera matriser av kulturer gör upprepade tester av stam samlingar, mest användbart när man testar för skillnader kultur fitness i olika miljöer eller genetiska bakgrund. Den QFA protokoll presenteradesHär använder dyra robotar utrustning för att kopiera, inokulera, inkubera och bild agarplattor, lämplig för observation tillväxt av tusentals oberoende kulturer (robot QFA, tabell 2). Eftersom QFA bygger på etablerade, traditionella lab tekniker, kan det också göras betydligt billigare genom att ersätta robot hjälp med manuella steg (manuell QFA, tabell 2). Manuell QFA innebär replikation och ympning av kulturer på agarplattor med en manuell PIN-kod verktyg och manuell överföring av plattor till och från en inkubator för fotografering. Samma Beräkningsanalys arbetsflöde kan användas för att generera tillväxtkurvor från antingen experimentell design.

QFA fitness uppskattningar verkar vara förhållandevis exakt. I figur 4, är de genomsnittliga fitnesses av fyra exempel kluster av funktionellt besläktade gendeletioner markeras. Närheten medlemmar i varje funktionellt relaterad gen klass i två oberoendeent genetisk bakgrund (ura3A och CDC13-1) indikerar reproducerbarhet QFA fitness uppskattningar. Till exempel, bara 3 gendeletioner (av möjliga 4300) isolerade de tre medlemmarna i det bevarade MRX komplex.

High-throughput alternativ till QFA för testning tillväxtegenskaperna hos mikrobiella stammar innefattar SGA ^5,6, konkurrens skärmar i Streckkodsformulär bibliotek ^11,12 och skärmar som fångar optisk densitet kinetik i spektrofotometriska läsare plattan ¹⁰ som är sammanfattade i tabell 2 och beskrivs mera fullständigt på annan plats ⁸ . QFA och SGA plattor, där kulturer växer på fasta Agarytorna (agar metoder, tabell 2) kan hanteras snabbt och enkelt genom robot. Fasta agarytan kulturerna är väl luftas hela tillväxten och celler kan växa i fasta kulturer, så sällskapliga mikrober att växa i ett samhälle ^14. Behåll, mikrobiella samhällen enffect egna mikromiljöer, toxiner utsöndrande såsom etanol, och eventuellt signalering mellan celler. Men kontinuerlig blandning av flytande kulturer, som krävs för att uppnå adekvat luftning, konstgjort stör mikrobiella samhällen och deras mikromiljöer som kan påverka deras sätt att tillväxt. Korskontaminering är mindre ett problem i fast agar metoder eftersom det är mindre möjlighet för vätskestänk bär celler mellan kulturer. Om kontaminering sker genom främmande luftburna mikrober i fast agar analyser, kan det ofta detekteras genom visuell inspektion av fasta agarplattor och redovisas eller avlägsnas.

QFA genomströmningen är betydligt högre än för parallella flytande metoder på två sätt. Först av allt om QFA (och SGA) plattor, är ympade kulturerna packas tillsammans tätare, vilket ger flera oberoende kulturer per platta. I QFA finns normalt 308 kulturer, inte räknar icke-experimentella senaste kulturer (figur 1) comfört med parallella flytande kulturer med 96 eller 100 kulturer per platta. För det andra kan QFA experiment skalas till en mycket större antal plattor. Medan antalet plattor analyseras i en enda QFA försöket begränsas endast av det tillgängliga utrymmet i en inkubator eller varmt rum, den minsta tillåtna bildfångst frekvens och högsta uppnåeliga fånga frekvens är antalet plattor i en vätska tillväxt experiment starkt begränsat genom förmågan att plattläsare (typiskt en eller två plattor) eller av den travande fäst vid plattläsare (typiskt 25-50 plattor). Vi har nyligen genomfört en helautomatiserad QFA experiment på 123 plattor, var och en med 308 experimentella kulturer, vilket ger 37,884 samtidiga kulturer. Vi bedömer att maximalt uppnåeliga antal oberoende kulturer som växer i vätskan är 96 (kulturer / platta) x 50 (plattor / Staplare) = 4800, vilket är cirka tio gånger mindre än vår QFA genomströmning. Ett alternativ för flytande kultur skärmar är att använda många automatiserade GROwth enheter parallellt (tabell 1 från granskning av Blomberg ^8), vardera med en kapacitet av en eller två plattor. Temperaturreglering i varje enhet är oberoende och därför förhållandena inte är identiska, men förutsatt att de är, skulle detta arbetsflöde kräver minst 190 sådana enheter för att matcha QFA genomströmning (förutsatt 200 flytande kulturer per enhet).

Sammanfattningsvis är QFA en hög kvalitet arbetsflöde som kan med fördel tillämpas för att samla in kvantitativa tillväxt fenotyper i både små inriktade skala experiment och hög kapacitet skärmar. Det är flexibelt nog att kunna tillämpas effektivt med varierande krav på robot utrustning. Den beräkningsmässiga delen av QFA Arbetsflödet är baserat på fritt tillgängliga, öppen källkod.

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Replica Plater	Sigma	R-2508	96 pin manual pintool with 1/8 " diameter pins
Mix Mate	Eppendorf	5353 000.014
Biomek FX	Beckman	A31842
Teleshake	Thermo Scientific	50095890	Installed on Biomek FX
BM3-SC	S&P Robotics Inc	BM3-SC	192 shelf rotating carousel
spImager	S&P Robotics Inc	spImager	High resolution manual imaging
spImager with Cytomat	S&P Robotics Inc	Custom	Temperature controlled automated high resolution imaging
Cytomat 6001 with heat exchanger	Thermo Scientific	51022222	Attached to spImager
Ecoline RE207	Lauda	RE207	Attached to Cytomat
spImager with carousel	S&P Robotics Inc	Custom	Automated high resolution imaging
Robot pin tool fixture for FP12pins	V&P Scientific	AFIX96FP12	N/A
96 x FP12 pins	V&P Scientific	FP12	50.4 mm long, 17 mm exposed pin length
Docking Station for Pin Tool	V&P Scientific	VP425	Docking station base removed to allow fan drying of pins
Pin Cleaning Brush	V&P Scientific	VP425	N/A
Replica Plater	Sigma	R-2508	Manual pin tool
Nunc OmniTray with Lid	Nunc	734-0490	N/A
96 well sterile polystyrene plates	Greiner BioOne	655161	N/A
96 well sterile polystyrene lids	Greiner BioOne	656171	N/A
Table 3. Specific reagents and equipment.