Summary
Forbedring vores forståelse af og vores evne til at håndtere mange af de insekt-transmitterede plantevira kræver brug af vektoren. Insekt transmission af plantevirus er en tritrophic interaktion, og som sådan kræver manipulation af insekter, virus, og plante. Vektorer skal opdrættes i stort antal og manipuleret på en sådan måde, at forsikre høje transmission til forsøgsanlæg. Det grundlæggende i opdræt og manipulere whitefly,
Abstract
Whiteflies, Hemiptera: Aleyrodidae, Bemisia tabaci, et kompleks af morfologisk indistinquishable arter 5, er vektorer for mange plante virus. Adskillige slægter af disse whitefly-transmitterede plante virus (Begomovirus, Carlavirus, Crinivirus, Ipomovirus, Torradovirus) omfatte flere hundrede arter af nye og økonomisk betydning patogener af vigtige fødevarer og fiber afgrøder (gennemgået af 9,10,16). Disse vira replikeres ikke i deres vektor men alligevel flyttes let fra anlæg til anlæg af den voksne mellus ved forskellige midler (gennemgået af 2,6,7,9,10,11,17). For de fleste af disse vira whitefly fodring er nødvendig for erhvervelse og podning, mens det for andre kun sondering er påkrævet. Mange af disse vira er ude af stand til eller ikke kan let overføres på andre måder. Derfor vedligeholdelse af viruskulturer, biologiske og molekylær karakterisering (identifikation af værtsspektrum og symptomer) 3,13, Økologi 2,12 kræve, at de vira overføres til eksperimentelle værter ved hjælp af whitefly vektor. Desuden udvikling af nye metoder til ledelse, såsom evaluering af nye kemikalier 14 eller forbindelser 15, nye kulturelle tilgange 1,4,19, eller udvælgelse og udvikling af resistente sorter 7,8,18, kræver brug af whiteflies for virus transmission. Brugen af whitefly transmission af plantevirus for udvælgelse og udvikling af resistente sorter i avlsprogrammer er særligt udfordrende 7.. Effektiv udvælgelse og screening for resistens beskæftiger et stort antal af planter, og der er et behov for 100% af planterne, der skal podes, for at finde de få genotyper besidder resistensgener. Disse undersøgelser bruger et meget stort antal spiseligt virusinficeret whiteflies, ofte flere gange om året.
Whitefly vedligeholdelse er beskrevet her kan generere hundredvis eller tusindvisaf voksne whiteflies på planter hvert ugen, året rundt, uden forurening af andre vegetabilske virus. Planter fri for både whiteflies og virus skal fremlægges for indføre i whitefly koloni hver uge. Whitefly kulturer skal holdes fri for whitefly patogener, parasitter og parasitoider der kan reducere whitefly befolkninger og / eller mindske sendeeffektivitet virus. Kolonier fremstillet på den beskrevne måde kan hurtigt skaleres at øge eller mindske befolkningstal efter behov, og kan tilpasses de fodring præferencer mellus baseret på planten vært for virusset.
Der er to grundlæggende typer af whitefly kolonier, der kan vedligeholdes: a nonviruliferous og et spiseligt virusinficeret whitefly koloni. Den nonviruliferous koloni er sammensat af mellus opdrættet på virusfri planter og tillader den ugentlige tilgængelighed af mellus, som kan bruges til at overføre virus fra forskellige kulturer. Den spiseligt virusinficeret mellus koloni,sammensat af whiteflies opdrættet på virusinficerede planter, tillader ugentlig tilgængelighed af whiteflies der har erhvervet virus dermed udelade et skridt i virus transmission processen.
Protocol
1.. Whitefly Colony Vedligeholdelse
- Miljømæssige betingelser: whitefly kolonier bør opretholdes i et kontrolleret vækst værelse. Kontrol af relativ fugtighed, temperatur, lysperiode og lysintensitet er afgørende for optimal koloni vækst (figur 1). En temperatur på 28 ° C, 30-50% relativ fugtighed, og en 14 timers lysperiode vil give en koloni, der udvikler sig fra æg til voksen fremkomst i 18 dage (dette varierer med planten værten). Relativ luftfugtighed bør holdes under 70% for at modvirke væksten af insekt-og plante svampepatogener. Gødning priser og vanding skal reduceres for at modvirke svampepatogener og salt ophobning. Lysintensiteten for kolonien bør være temmelig høj. VHO lysstofrør anvendes i tilstrækkeligt antal til at generere ca 800-1.000 ft stearinlys på baldakinen højden er tilstrækkelig for de fleste planter (dvs.. Bomuld, almindelig bønne, limabønne, tomat). Renlighed er afgørendeen whitefly koloni til at opretholde optimale opdrætsforhold.
- Colony Bure: Whiteflies bør opretholdes på planter i bure, snarere end fri i væksten rummet. Burene kan være fremstillet af forskellige materialer, men skal gøre det muligt for: ventilation, let adgang, evne til at forebygge whitefly flugt eller infiltration og af tilstrækkelig størrelse til at opretholde nok planter til at generere den whitefly nødvendige befolkning. Gode resultater er blevet opnået med organza plus aluminium screening (for styrke) samt whitefly-bevis screening (se tabel for specifik udstyr og forsyninger).
- Colony Plant Forberedelse: plantearter udvalgte er en vigtig overvejelse, når du starter en whitefly koloni. Anlægget skal være i stand til at understøtte en høj insekt befolkning uden at bryde sammen. Anlægget er valgt til en nonviruliferous koloni bør være en nonhost for virus eller vira, der er beregnet til at blive transmitteret at undgå forurening i kolonien og hvis opretholde en viruliferous koloni, skal det være vært for virusset. Planterne skal vokse ret hurtigt for at støtte fremkomsten af nye voksne inden for 18 dage for at blive introduceret til kolonien, men ikke så hurtigt, som at vokse burene inden for fire uger. Dwarf, busk eller gårdhave-type plante sorter anbefales, da de ofte producere en lignende bladareal til højere sorter men uden stilk forlængelse.
- Det er meget vigtigt at opdrætte planter til kolonien i væksthuse i bure, som udelukker mellus og andre insekter. Brug af planter, der er befængt med mellus, thrips, eller mider, før de kommer ind i kolonien kan forårsage koloni til at kollapse. Angrebne planter har også potentialet til at blive smittet med insekt-bårne vira, som vil forstyrre virustransmission studier.
2.. Whitefly Colony Etablering
- Start en koloni for første gang ved hjælp af ren whiteflies - dem fri af plante vira, andre insekter og insektpatogener. Disse kan fåsfra samarbejdspartnere eller fra marken. Hvis felt indsamles, bør whiteflies opdrættes i mindst 8 uger på nonhost planter af planten virus og for manglende plante symptomer for at være sikker på at de er fri af plante virus.
- Uge 1: Indførelse rene hvide fluer til det første bur af planter. Mellus kan indføres ved aspiration af kendte numre eller ved forsigtigt at ryste mellus fra en anden kilde plante afhængigt af krav til kolonien. I uge 1, er whiteflies lægge æg på undersiden af plantebeskyttelsesmidler bladoverflader. En omtrentlig befolkning størrelse kan forudsiges for hvert fremkomsten baseret på antallet af voksne bruges til at lægge æg og det gennemsnitlige antal æg lagt af den kvindelige mellus på værtsplanten pågældende.
- Uge 2: Begynd anden bur ved at indføre whiteflies til nye værtsplanter at lægge æg. Planterne i buret begyndte i uge 1 vil have æg, og nogle umodne hvide fluer dækker undersiden af bladene (figur 2). Noglevoksne whiteflies indført i uge 1, vil stadig være i live.
- Uge 3: Begynd et tredje bur ved at indføre whiteflies til nye planter til at lægge æg. Planterne i buret startede i uge 1 vil have umodne såvel som mange nye voksne whiteflies fremspirende og der skal være en meget mærkbar stigning i den voksne mellus befolkning. Planterne i buret begyndte i uge 2 vil få mange æg og umodne whiteflies dækker undersiden af bladene.
- Uge 4: Begynd en fjerde bur ved at indføre whiteflies til nye planter til at lægge æg. Planterne i buret startede i uge 1 vil have mange voksne whiteflies der er cirka en uge efter fremspiring. Planterne i buret begyndte i uge 2 vil få mange nye voksne whiteflies fremspirende og der bør være en meget mærkbar stigning i whitefly befolkning. Planterne i buret begyndte i uge 3 vil få mange æg og umodne hvide fluer dækker undersiden af bladene.
- Ugentlig efter de første 4 weeks: Hver uge starte en ny bur ved at indføre de voksne whiteflies fra fjerde ældste bur (buret startede i uge 1) på nye anlæg i en ny, ren bur. Den gamle bur bør fjernes og dens anlæg kasseres. Disse mellus er cirka en uge efter fremspiring. I tilfælde af spiseligt virusinficeret koloni, vil disse mellus overføre virus til de nye fabrikker samt lægger æg til den næste generation af mellus.
- Plan transmission eksperimenter til at bruge de whiteflies, der vil opstå i den tredje uge bur. Hvis flere mellus er nødvendige, kan planteantallet øges, og flere mellus kan sættes til uge 1 bur at øge mellus befolkning.
3.. Metode til Podning af testplanter
- At forsikre høje transmissionshastigheder: 1) Whiteflies skal håndteres så skånsomt som muligt for at undgå skader på insekt, der vil reducere transmissionshastigheder, 2) Der skal være tilstrækkelig blad areal til rådighed for whiteflies til ETIhendes sonde eller foder. En stigning i opkøb tid eller en stigning i antallet af køb værtsplanter kan øge lave satser for infektivitet i testplanter grund fortrængning i enten erhvervelse eller podning adgang periode.
- Indsamling af Whiteflies. Følgende er en procedure for indsamling og udveksling af præcise antal whiteflies kræves til forsøg. At flytte store antal mellus er behov for resistens screening for eksempel, er det kun nødvendigt at ryst forsigtigt mellus-angrebne planter over testplanterne eller virusinficerede erhvervelse værter (og senere testplanterne). Vær sikker på at ryste planterne over mange steder for at minimere sammenlægning effekter.
- Nyopstået voksne mellus (1-3 dage efter fremkomsten) er meget aktive og foder ofte så tendens til at give den højeste transmissionshastigheder 4.. Ældre whiteflies stadig overføre, men ved en lavere frekvens. Flere whiteflies pr testanlæg (15-40 per plant) bør anvendes til høje transmission, da forholdet 1 whitefly per plante ofte resulterer i uacceptabelt lave transmissionshastigheder 3,4. Det nødvendige antal afhænger af virus og de arter af køb og forsøgsanlæg.
- Saml aspiration udstyr og indsamling hætteglas. (Figur 3)
- Med den ene hånd, holde et gult plastikkort inde i kolonien bur, der indeholder whiteflies skal indsamles. Blidt tryk planterne til at tilskynde de voksne whiteflies til at flyve. Mellus vil blive tiltrukket til det gule kort og vil flyve fra anlægget til kortet, hvor de kan indsamles ved hjælp af en aspirator og en meget blid ånde. Aldrig aspireres whiteflies, der lever af planter. Deres stiletter er indlejret i anlægget, mens fodring så trække dem væk fra planterne vil bryde deres stiletter og gøre dem ude af stand til enten at erhverve eller overføre virus (Figur 4).
- Saml ca 20 voksne whiteflies i en enkelt colleIndsatsen hætteglasset for at minimere de fysiske skader på insekter gentagne aspirationer (figur 5).
- Hvis du vil ændre indsamlingen hætteglasset forsigtigt trykke hætteglasset på en hård overflade og hætte med Parafilm mens whiteflies er desorienterede fra aflytning.
- Sæt en ny indsamling hætteglasset på aspiratoren og gentag, indtil antallet af nødvendige whiteflies indsamles. Whiteflies kan forblive i de indsamlingssystemer hætteglas ved stuetemperatur i flere timer.
- Erhvervelsen. Whiteflies er placeret på en virusinficeret plante og tilladt at fodre på de inficerede planter i 48-72 timer. Acquisition perioder længere end 72 timer generelt ikke øger overførselshastigheden. For disse vira transmitteres i en nonpersistent eller semipersistent måde 1 time og adskillige timer, henholdsvis er tilstrækkeligt erhvervelse adgang perioder (tabel 1). De bedste resultater opnås, når whiteflies får fri adgang til fabrikker i bure, begrænse insekter til en enkelt plante eller tilflere planter. Men nogle eksperimenter kræver erhvervelse af specifikke blade i hvilket tilfælde klip bure kan bruges. Ved anvendelse clip bure er det vigtigt at rumme mellus fodring præference for undersiden af bladene. Også kan fortrængning af whiteflies i klip bure reducerer transmissionshastigheder - acceptable satser for transmission er blevet opnået ved hjælp af 10 kvindelige whiteflies pr klip bur på 2,5 cm i diameter.
- Inokulering. Forbered et bur passende for størrelsen af podningen og placere testplanterne indeni. Hvis kun én plante skal podes overveje en enkelt plante bur. Hvis mere end én plante skal podes overveje en lille PVC ramme / organza pose bur eller en aluminium bur (figur 6). Størrelsen af buret anvendes til podning bør være en smule større størrelsen af planten (r), der skal podes. Højere transmissionshastigheder opnås, når whiteflies holdes tæt til anlægget baldakin og ikke givet en masse ledig plads.
- Indsamling af whiteflies fra erhvervelse værter afhænger af behovet for eksperimentet. Hvis mindre mængder er nødvendige, aspireres mellus som beskrevet ovenfor. Placer indsamling hætteglas mellus inde i buret nær planterne og fjerne låget (figur 7). Åbn hætteglasset og frigiver whiteflies eller vendes og bankes let på hætteglasset for at frigive whiteflies. Hvis store tal der er behov for blot flytte erhvervelse anlæg med whiteflies ind i bure, hvor test-anlæggene ligger og forsigtigt ryste whiteflies off købet værtsplante. For begge typer af introduktion, skal du sørge for at fordele whiteflies tværs af planterne for at minimere sammenlægning og forsikre en ensartet podning.
- Lad whiteflies at sonden eller foder til den passende mængde af tid, igen afhængig af virus og til en vis grad værtsplanten (tabel 1).
- Kontroller whiteflies mindst én gang under podning adgang periode at sikre, at whiteflies ersondering eller fodring ved at åbne buret og dreje over nogle blade på hver plante.
- For de længere podningen adgang perioder forstyrre planterne forsigtigt (med en bambuspind eller tilsvarende) at børste toppen af planter, og tilskynde whiteflies at omfordele på planterne. Omfordeling af whiteflies med til at sikre en højere transmissionshastighed ved at imødegå den naturlige tendens whiteflies til aggregat.
- Opsigelse. Inokuleringen adgang periode sluttede ved at dræbe whiteflies med godkendte kemikalier. Påfør to insekticider efter hinanden: en kontakt insekticid hurtigt at bringe voksne whiteflies og en systemisk insekticid til at opsige nogen whiteflies der udvikler sig i de følgende uger og dem savnet af kontakten insekticid (Figur 8). En kontakt insekticid som insektbekæmpelsesmidler sæbe og systemiske insektmidler såsom imidacloprid eller pymetrozin har været anvendt med god succes.
Representative Results
Disse metoder til mellusbekæmpelse koloni etablering og vedligeholdelse, samt manipulation at transmittere plantevirus er blevet anvendt med succes i en række undersøgelser 4,11,12,14 samt mange andre ikke er nævnt. Ved hjælp af disse metoder med vedvarende overførte virus, vi har rutinemæssigt fået de ønskede satser for overførsel af 100% for selektion for resistens, screening insekticider for deres evne til at interferere med transmission (og evaluering af resistens inducerende forbindelser) 13,14,17,18 ( Figur 9). De procedurer, der er beskrevet her, kan og er blevet tilpasses til mange steder i både offentlige og private forskningsfaciliteter.
| Type Transmission | Acquisition Adgang Period (time) | Inoculation Adgang Period (time) | Ref. |
| Nonpersistent | 1 2-24 | 10 | |
| Semipersistent | 6-24 | 8-24 | 10, 16 |
| Vedvarende | 48-72 | 48-72 | 3, 6, 8, 9 |
Tabel 1.. Anslåede tider, der kan bruges til at fremstille høje transmission af virus med forskellige typer af relationer med deres vektor Bemisia tabaci arter kompleks. Anslåede tider er baseret på offentliggjorte minimumtider kræves for 80-100% transmission og modificeret i nogle tilfælde at redegøre for latente perioder og forskelle mellem whitefly befolkninger, virus, og værtsplanter.
Figur 1. Et eksempel på en spiseligt virusinficeret whitefly koloni. Denne vækst værelse indeholder bure af planter inficeret med en begomovirus og infeplace med spiseligt virusinficeret whiteflies.
Figur 2. Venstre: umodne stadier af mellus, Bemisia tabaci MEAM clade forstand De Barro 6 ca 1 uge efter fremspiring og højre: voksen whitefly en effektiv vektor af mange plante virus.
Figur 3. Typer af strømaftagere, der kan bruges til at indsamle whiteflies for plante virus transmission.
Figur 4.. Venstre: Gul plastikkort bruges til at indsamle whitefly voksne viser whiteflies klar til afhentning . Til højre: Indsamling whiteflies fra et gult plastikkort. Mellus kan ses på kortet som små hvide / grå pletter.
Figur 5. Mellus opsamlet ved aspiration (20 i et hætteglas) fra kolonien klar til enten erhvervelse eller podning.
Figur 6.. Øverst til venstre:. Enkelt plante bure, der benyttes til enten erhvervelse eller podning Upper Right: Større bure lavet af PVC rør og organza. Lavere: Aluminium / skærm og organdy bure i et drivhus med planter til en whitefly koloni.
32fig7.jpg "/>
Figur 7. Whiteflies overføres til en enkelt plante til podning (eller overtagelse).
Figur 8. Tilsætning af en systemisk insektmiddel gennembløde at opsige whitefly podning adgang periode.
Figur 9. Field anlæg under evaluering for resistens over for Tomato yellow leaf curl virus. Alle planter blev podet som 5 uger gamle kimplanter og derefter transplanteres til feltet for evalueringen. Planter i forgrunden er en resistent germplasm linje, planter i baggrunden er modtagelige germplasma linje.
Discussion
De her beskrevne metoder er udviklet over en periode på to årtier og er baseret på den grundlæggende oplysninger fra mange undersøgelser af whitefly transmission, adfærd og biologi. Da der er mange publikationer, dette manuskript menes primært vurderinger og få udvalgte specifikke publikationer til at illustrere den type data, der anvendes til at udvikle denne teknik. Det er meget vigtigt i denne procedure, at whiteflies håndteres forsigtigt, da bryde ben og antenner kan føre til unormal adfærd og lavere transmission. Samling med støvsuger og andre mekaniske sugeindretningerne har aldrig givet gode resultater. En anden overvejelse for succes er, at antallet af mellus anvendes til at opnå 100% transmission til testplanterne skal bestemmes for hver kombination af plante vært og virus. Denne optimale ratio skal kun etableres en gang. De bedste resultater er blevet opnået ved hjælp af unge voksne mellus (1-3 dage tidligere fremkomst), da de give de højeste satser for transmission. Ældre voksne kan bruges, men et større antal whiteflies vil være behov for at kompensere for deres nedsatte satser for transmission. Hunnerne er kendt for at overføre til højere satser end mænd, fordi de fodrer oftere end mænd. Men det er normalt ikke værd tid til at adskille de to køn til transmission. Denne procedure kan ændres på mange måder, der passer til de ressourcer og behov forskeren.
Når man arbejder med flere vira er det bedst at holde en enkelt koloni af mellus opdrættet på nonhost planter af viruset. Disse whiteflies kan indsamles placeres på virusinficerede planter til erhvervelse og derefter efter erhvervelsen de whiteflies kan flyttes igen til test anlæg. Planter til kolonien skal dyrkes i drivhuse i bure for at forhindre indførelse af whiteflies der kan inficere dem med en anden virus. Angreb af disse planter med mider, thrips og andre vegetabilske skadedyr kan kompromittere health af kolonien og få det til at kollapse. Endelig vanding af kolonien planter der skal gøres med omhu. Disse planter er udsat for ekstreme stress ved fodring af så mange whiteflies og de lavere end normale lysforhold. Root rådnende svampe, som bliver introduceret på tørv i soilless mix kan blive et problem hvis planterne overwatered endnu en gang. Forbehandling af planter med et fungicid gennembløde kan eliminere nogle af de problemer.
Mens whitefly transmission af plante vira kan være tidskrævende og kræver værdifulde ressourcer (såsom vækst værelser) det er afgørende for transmission af nogle vira, som vi ikke har andre midler til transmission. Det er også et værdifuldt middel til screening planter til resistens over for virus, som det anvender samme type transmission, at planter i marken forventes at modstå. Brugen af mere kunstige midler for transmission ikke altid give de bedste resultater i evalueringer af germplasma til Virus-modstand.
Disclosures
Ingen interessekonflikter erklæret.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Name of the Item | Company | Catalogue No. | Comments (optional) |
| Whitefly proof screening | Klayman Meteor Ltd. Petah Tikva 49130, Israel | --- | BioNet 50 mesh screen Antivirus Insect Screen |
| Whitefly proof screening | Hummert International (www.hummert.com) | 27-4050-1 - 27-4062-1 | BioNet 50 mesh screen Antivirus Insect Screen |
| Whitefly Collection Devices | BioQuip | 1135A | Can also be made using eye droppers, flexible plastic tubing, plastic vacuum adaptors, and cheesecloth |
| Collection vials | BioQuip | 8909 | Vials used depend on which aspirator is used. |
| Yellow plastic cards | any company | --- | Any bright yellow plastic card will work, can be purchased in many places. |
| Whitefly Cages | --- | --- | These are not commercially available and must be constructed. 60 cm x 60 cm x 60 cm cages work well for us. Our preference is for those constructed of aluminum window screening, nylon organdy, vinyl plastic, with a structure created using aluminum window frames. Doors are attached using piano hinges and sealed with weather stripping; tops of the cages are vinyl plastic. Cages can also be made of 1) plexiglass glued together on the edges with ventilation provided by screened openings cut on the side pieces; 2) large bags of nylon organdy, organza, or 50 mesh whitefly screening with internal supports provided by PVC pipes and fittings cut to desired lengths and assembled inside the bags, 3) wood frames and nylon organdy, organza, or 50 mesh whitefly screening. |
References
- Antignus, Y., Mor, N., Ben Joseph, R., Lapidot, M., Cohen, S. UV absorbing plastic sheets protect crops from insect pests and from virus diseases vectored by insects. Environ. Entomol. 25, 919-924 (1996).
- Cohen, S. Epidemiology of whitefly-transmitted viruses. Whiteflies: Their Bionomics, Pest Status and Management. Gerling, D. , Intercept. 211-225 (1990).
- Cohen, S., Antignus, Y. Tomato yellow leaf curl virus, a whitefly-borne geminivirus of tomatoes. Adv. Dis. Vector Res. 10, 259-288 (1994).
- Csizinszky, A., Schuster, D. J., Polston, J. E. Effect of UV-reflective mulches on tomato yields and on the silverleaf whitefly. HortSci. 34, 911-914 (1999).
- De Barro, P. J., Liu, S. -S., Boykin, L. M., Dinsdale, A. B. Bemisia tabaci: A statement of species status. Annu. Rev. Entomol. 56, 1-19 (2011).
- Duffus, J. E. Whitefly-borne viruses. Bemisia: 1995 Taxonomy, Biology, Damage, Control and Management. Gerling, D., Mayer, R. , Intercept Limited. United Kingdom. 255-288 (1996).
- Lapidot, M. Screening for TYLCV-resistant plants using whitefly-mediated inoculation. Tomato Yellow Leaf Curl Virus Disease. Czosnek, H. , 329-342 (2007).
- Lapidot, M., Friedmann, M. Breeding for resistance to whitefly-transmitted geminviruses. Ann. Appl. Biol. 140, 109-117 (2002).
- Lapidot, M., Polston, J. E. Biology and epidemiology of Bemisia-vectored viruses. Bemisia: Bionomics and Management of a Global Pest. Stansly, P. A., Naranjo, S. E. , Springer. 227-231 (2010).
- Navas-Castillo, J., Fiallo-Olive, E., Sanchez-Campos, S. Emerging virus diseases transmitted by whiteflies. Annu. Rev. Phytopathol. 49, 219-248 (2011).
- Ng, J. C. K., Falk, B. W. Virus-vector interactions mediating nonpersistent and semipersistent transmission of plant viruses. Ann. Rev. Phytopathol. 44, 212-21 (2006).
- Polston, J. E., Cohen, L., Sherwood, T. A., Ben-Joseph, R., Lapidot, M. Capsicum species: Symptomless hosts and reservoirs of Tomato yellow leaf curl virus (TYLCV). Phytopathology. 96, 447-452 (2006).
- Polston, J. E., Hiebert, E., McGovern, R. J., Stansly, P. A., Schuster, D. J. Host range of Tomato mottle virus, a new geminivirus infecting tomato in Florida. Plant Dis. 77, 1181-1184 (1993).
- Polston, J. E., Sherwood, T. A. Pymetrozine interferes with transmission of Tomato yellow leaf curl virus by the whitefly Bemisia tabaci (Hemiptera: Aleyrodidae. Phytoparasitica. 31, 490-498 (2003).
- Schuster, D. J., Thompson, S., Ortega, L. D., Polston, J. E. Laboratory evaluation of products to reduce settling of sweetpotato whitefly adults. J. Econ. Ento. 102, 1482-1489 (2009).
- Virus Taxonomy, Ninth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses. King, A. M. Q., Adams, M. J., Carstons, E. B., Lefkowitz, E. J. , Elvesvier, Academic Press. (2012).
- Wintermantel, W. M. Transmission efficiency and epidemiology of Criniviruses. Bemisia: Bionomics and Management of a Global Pest. Stansly, P. A., Naranjo, S. E. , Springer. 319-332 (2010).
- Yang, Y., Sherwood, T. A., Patte, C. P., Hiebert, E., Polston, J. E. Use of Tomato yellow leaf curl virus (TYLCV) Rep gene sequences to engineer TYLCV resistance in tomato. Phytopathology. 94, 490-496 (2004).
- Zehnder, G. W., Yao, C., Murphy, J. F., Sikora, E. R., Kloepper, J. W., Schuster, D. J., Polston, J. E. Microbe-Induced Resistance Against Pathogens and Herbivores: Evidence of Effectiveness in Agriculture. Induced Plant Defenses Against Pathogens. , APS Press. St. Paul, MN. 335-355 (1999).
