Summary
它的小的透明体，证据充分的解剖学和主机适合遗传技术和试剂，
Abstract
线虫C.线虫是一种理想的模式生物比较简单，成本低， 在体内的神经成像。透明的小身体和简单的特点，以及神经系统允许任何神经元在完整的动物识别和荧光成像。简单的固定化技术对动物的生理影响最小允许延长时间的推移成像。基因编码的钙敏感的荧光基团（如卡默莱昂1和GCaMP 2）的发展，使细胞的生理和神经元的活动有关的神经元钙在体内成像。表达这些荧光团在特定神经元的大量的转基因株系很容易得到，或者可以使用既定的技术构造。这里，钙动态测量在一个单一的神经元在体内，同时使用GCaMP和卡默莱昂的程序，我们将详细介绍。我们讨论的优点和disadvant年龄以及样品制备（动物固定）和图像分析的各种方法。最后，我们提出两个实验的结果：1）使用GCaMP测量一个特定的神经元的感官响应到外部的电场和2）使用卡默莱昂测量的生理创伤性激光损伤的神经元的钙应答。如这些钙成像技术被广泛使用在 C 线虫和已经扩展到测量遗传背景之间自由活动的动物，同时多个神经元和比较。C.线虫在体内的神经成像技术的简单性和成本的优势比其他模型系统提供了一个强大而灵活的系统。
Introduction
在这里，我们提出了切实可行的方法， 在体内钙成像C.线虫的神经元。基因编码的钙敏感的荧光团的发展与高signal-to-noise比使得C。线虫的神经生理学和活动测量一个相对简单和成本效益的系统。我们的成像是一个标准的复合式显微镜，采用宽视场常用的荧光基团的荧光成像。我们提出了几个不同的荧光基团和不同的样品制备技术，每个讨论的优点和缺点。从两个例子实验数据，然后提交。对这里所描述的技术的一个极好的额外资源可以发现WormBook，“成像”由R.克尔神经元和肌肉的活动，（ http://www.wormbook.org ）3。
两大类的genetiCALLY编码中常用的荧光钙记者，C.线虫 ：的单一通道GCaMP和基于FRET的卡默莱昂。我们将描述的方法和所产生的每一个数据的例子。
GCaMP是根据修改后的绿色荧光蛋白（GFP）的周围的钙离子浓度是敏感的。这是通过融合GFP和钙的高亲和蛋白钙调素，钙的钙调素的结合，使得成一个高效荧光确认2带来的GFP分子。在这些荧光的最新进展，产生特殊的信号大小的荧光强度增加高达500％，超过生理范围内的钙水平和合理的快速反应动力学〜95毫秒上升时间和〜650毫秒衰减时间4。在相对较短的时间周期（分钟），这些信号可以允许较低的分辨率成像（低倍率），一个乖巧的初始化IAL计量基准，为连续测量基线或比较否定的必要性。
卡默莱昂具有的优点是一个基于FRET的荧光基团，生成比较两个独立的通道或波长1的比率量度测量。它是由两个单独的荧光团（青色和黄色发光的荧光蛋白，CFP和YFP）链接由钙调素蛋白。复杂的是亮蓝色光（440 nm）的激发CFP。结合的钙带来荧光团更接近在一起，增加从CFP（供体）的荧光共振能量转移（FRET）送到YFP（受体），并造成在CFP发射（480 nm）的降低和YFP的发射（535 nm）的增加。相对钙水平的YFP / CFP强度的比率作为计量。卡默莱昂动力学比GCaMP，测定在体内有〜3秒5〜1秒的上升时间和衰减时间慢。但是，反向移动的信号的比率增加了的信号的大小和用于补偿由于在荧光基团的浓度，运动或重点不突出，漂移和漂白的变化的一些可能的工件。
需要用外源性给药探针和 C的样品制备多基因编码的荧光记者否定线虫透明的小身体允许在完整动物使用简单的宽视场荧光成像。因此，在样品制备的主要的技术挑战是安全地固定动物。有许多不同的常用的技术每个的优点和缺点。使用瘫痪的动物的药理活性剂是容易实现的，并允许安装一种制剂（左旋咪唑，胆碱能激动剂，导致肌肉组织抓紧通常用于6）上的多个动物。C.线虫也可以在物理上固定安装在僵硬的10％琼脂糖7，8。这最大限度地减少对动物生理的影响，使长期成像（小时）和多只动物的恢复，但技术上更困难。这两种技术限制物理访问的动物（这是下封面条），因此只能用于某些实验刺激（如光照，温度，电场，激光损伤）。对于刺激的物理访问是必需的，如触摸或化学品的管理，许多研究已经成功地粘C.线虫的地方（用兽医年级胶）9。这是技术上更具挑战性，是一个单一的动物准备，不使动物恢复。最后，许多微流控设备已在物理上抑制C.线虫 ，维护动物生理学，允许暴露于大多数类型的刺激（这取决于设备的设计），并且可以启用快速交换和恢复的动物 这里介绍的方法可用于测量神经活动和细胞生理学C.线虫 。我们给出一个例子的每个：使用GCaMP的的ASJ神经元的测量的感官响应外部电场，和使用卡默莱昂测量响应于激光损伤的神经元的生理钙。这些例子显示了两种类型的荧光基团的优点和缺点，并说明什么是可能的系统。
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Protocol
1。光学装置
- 使用标准的复合式显微镜，荧光显微镜的成像能力。我们使用了尼康的Eclipse的Ti-U倒置显微镜与一个Intensilight的HG照明。
- 为了获得最佳的图像和信号质量，使用的高倍率，高数值孔径的目标。我们通常使用的尼康X60 1.4 NA浸油的目标。在某些情况下，它是可能的荧光团的表达水平和信号强度取决于使用低放大倍率（X40，X20）。
- 使用高灵敏度的冷却CCD相机，如安道尔克拉拉相机，以最大限度地提高图像的灵敏度和降低背景噪音。
- 对于单一颜色的荧光基团使用标准的显微镜，荧光过滤器设置特定波长的荧光。对于GCaMP使用标准的GFP过滤器设置优化，激发波长为488 nm，发射波长为525 nm。没有进一步的光学修改是必需的。
- 显微镜过滤器设置440±20 nm激发过滤器和455 nm的长传分色镜。
- 图像遮罩初始图像放置在平面外，在显微镜成像端口（在摄像机的CCD传感器通常会坐）。这限制了字段使得它将填补只有一半的相机传感器的视图。把这个面膜的第一个图像平面形成了鲜明的图像边界，没有重叠的两个影像投射端。
- 第一中继透镜焦距设定一个远离吨他最初的图像平面，它的光准直。
- 的二色性反射镜的光分割成两个单独的成像波长或反射一种颜色（> 515 nm处，黄色）的信道同时发送的其他的（<515 nm处，青色）。
- 发射滤光器（带通滤波器）的透射光的特定成像波长（青色，在485±40nm的和黄色的，在535±30nm的）进一步限制，
- 放置在使得它重新聚焦的光在CCD摄像机的第二图像平面上的光束路径的第二中继透镜（每个通道一个）。
- 甲对反射镜和一个第二分色镜的光束导向路径，使得两个图像重组，并投射到相机的CCD传感器侧由侧， 图4A示出所得到的图像的一个例子。
- 初始光：启动设置和校准的光学系统具有高对比度的成像E使用低放大倍率透镜和发送的宽视场照明（在显微镜载玻片上绘制一个黑色夏普效果很好）。带来的图像集中通过显微镜目镜，然后切换为要使用的端口的显微镜。随着高亮度照明查看在最初的焦平面（一个数厘米外显微镜端口），索引卡上的图像。第一中继透镜（C）放置在光束路径，例如，它是一个从最初的焦平面的焦点距离，并对其进行准直的光，而没有偏转的光束路径（ 即直接集中在光束路径）。掩模放置在第一焦平面，调整，以限制的视场的一半，并在图像中产生一个尖锐的边境。位置的反射镜和过滤器（D，E，G）的 光束路径的表表面保持平行，在两个平行的路径侧由侧运行，如在图1B中所示。中心的第二中继透镜（F）在其各自的电子束路径和来回移动它们沿着路径带来的重点放在相机的CCD传感器将在索引卡上的图像。如果做得正确的应该是齐焦显微镜的目镜和其他相机端口的两个图像。最后将相机放置在位置和微调的对齐方式。
- 微调光学校正：使用双图像由CCD相机观察微调光学对准。使用高对比度的图像，并从低倍率，切换到更高的放大倍率进行最终对齐。透射图像（青色通道在图1B）的位置以覆盖通过移动相机，在X和Y位置的反射图像（黄色在图1B中的信道），以覆盖的领域中的另一半的一个相机的视场的一半查看由调整最后两个反射镜（G），在它的光束路径中。优化集中为每个通道通过移动第二中继透镜沿着光束路径来回。如果左不变的光学装置应该是稳定的，并且只需要罕见的微调调整。
2。样品制备和数据采集。
- 收购在神经元中的利益表达钙敏感的荧光从秀丽隐杆线虫的遗传学中心（CGC）或其他来源的动物。可以使用标准 C或者转基因动物线虫技术。单细胞的表达是不是必要的（有时是不希望的，如果多个神经元以进行调查，参见图12），只要从多个细胞的图像和测量可以容易地分离。如果没有整合到基因组的荧光转基因的表达显着变化，可以从动物到动物发生。在这种情况下，预选的动物，使用荧光显微镜具有更高的表达水平增加的信号 - 噪声比，并提高了测量。荧光基团表达水平的东东d，来足以很容易地与相机成像根据需要通过实验的采集参数。
- 进行所需的所需的固定化技术（见下面2.3）按两片玻璃之间的滑动由两块实验室磁带隔开一小滴的熔融琼脂糖琼脂糖焊盘。如果有必要，琼脂糖焊盘可以被转移到一个玻璃盖玻片，在安装前的动物。请参阅图2。
- 固定C.线虫成像使用以下技术之一：
- 药理瘫痪：0.05％至2％琼脂糖凝胶垫（搅拌到熔化的琼脂糖凝胶垫在2.2前）左旋咪唑。选择5-10垫到动物，并盖上盖玻片。应用少量的热蜡的混合物（50％的石蜡和50％凡士林油）的盖玻片的角部，以保持恰当的位置。允许5-10分钟的左旋咪唑生效和动物到Become完全静止。
- 僵硬的琼脂糖固定：C.线虫可以在物理上固定用生硬的10％琼脂糖凝胶垫和直径为0.05微米的聚苯乙烯纳米颗粒。 10％的琼脂糖垫（10％琼脂糖NGM缓冲，以重量计）为2.2。添增〜3μl的珠溶液（1:10到NGM聚苯乙烯微球以体积计）的垫的顶部。很快，挑选5-10 C.线虫入池垫珠溶液，轻轻地盖上盖玻片。使用熔化的蜡施加到盖玻片的角部，以保持恰当的位置。 （有关这项技术的更多详细信息，请参阅7以及以前的朱庇特“第8条）
- 胶：C.线虫可以胶合到位使用施加到一侧的动物的兽医级粘合剂的少量。
- ：许多微流控芯片的微流体装置被设计成物理按住 C 线虫在成像。
- 在显微镜下将准备好的幻灯片，并集中在所需的神经元。它往往是最容易找到的C.用明视场照明，低倍率的线虫 。然后切换到高放大倍率和荧光成像技术找到并专注于特定的神经元。
- 刺激：如果一个特定的刺激神经元的响应是理想的（光，电场，味觉和嗅觉，温度等），刺激装置必须设计到显微镜的设置，这样，它可以施用于动物在而成像的样品制备。
- 使用显微镜CCD摄像头采集图像。曝光时间和激发光的水平将取决于在基线上的荧光信号和表达水平，与较弱的信号，需要较长的曝光时间一致地更少的时间分辨率。我们通常使用〜300毫秒的曝光时间。
- 单独或作为TI获取图像我的失效电影。由于C。线虫的神经元一般显示缓慢激活动力学（ 即他们缺乏钠的动作电位），速度相对较慢〜1秒的帧速率往往足以测量神经元动态。采集速率高达〜虽然这些弱荧光所需的积分时间可能是有限的，已被使用的每秒90帧。个人的电影的一个单一的神经元，可以很容易地扩展为几分钟的时间（约5-10分钟）或更长的时间，如果固定化制剂是稳定的，和帧速率相对缓慢。
3。数据分析
- 有许多ImageJ的NIS-Elements的分析功能，包括动态和比例不同的荧光成像软件套件。我们用一个简单的自定义MATLAB程序，测量平均荧光信号在选定的地区的利益。
- 对于个别图像（或时间推移电影仍然存在完全静止）选择一个感兴趣的区域（ROI）内成像的神经元和一个单独的邻近地区为背景的测量。对于比例的图像，选择类似的ROI和背景区域的双重图像。
- 成像的神经元内的时间推移电影的轻微移动而需要额外的分析自动选择在每个帧中的投资回报率，这可以通过使用大量的对象跟踪计划。我们的程序会显示一个压缩后的图像从一个粗略的边界（涵盖所有帧中的对象的利益），手动选择和一个独立的背景区域选择在影片中的所有图像。的第一帧，手动选择的ROI内的边界区域。对于每个随后的帧，程序选择的最亮的像素的边界区域内，以产生正确的尺寸（ 即相同数量的像素作为手动的第一帧的ROI）的ROI。对于图像的物镜t的利益有足够的亮，然后在协议选择一个合理的投资回报率每帧的边界地区周围的背景。
- 的荧光信号，F，对于每个帧被计算为在ROI减去的背景区域中的平均强度的平均像素强度。的成比例的值的计算方法的两个信号的比值（YFP-YFP 背景 ）/（CFP-CFP 背景 ）-0.65。 0.65的因子补偿通过YFP的通道，这将取决于上的荧光基团，以及使用的特定的过滤器集（该值是通常〜0.6为卡默莱昂设置中）的CFP通道进入泄放。
- 对于每个帧被计算为相对钙水平的百分比变化的强度归一化到一个初始基线测量值从第一帧（或一系列的帧）：ΔF/ F =（F（t）的F o的）/ Fò，其中，F（t）是在时间t 和 F o的荧光的初始基线值。
- 甲的投资回报率，选择细胞体产生最强的最强大的信号，但它也可能选择和测量信号从ROI沿神经进程。
4。问题解决
- 漂白可能会导致暴露于激发光漂白的荧光标记信号是依赖于暴露水平稳步下降。比例测量补偿。但是一个波长的选择性漂白仍时有发生（通常CFP漂白剂更快YFP）。如果白化现象减少曝光水平，通过减少曝光时间和/或激发光强度（在照明光路中的与中性密度过滤器）。如果有必要，可以通过运行模拟试验（与相同的激励曝光，但没有神经元的刺激）和量化的信号衰减的时间常数补偿用于漂白。
- 背景选择：成功的形象分析，精心挑选的背景区域是必要的。背景区域应该是合理均匀，然后成像的神经元更暗。它必须被充分除去，以避免散射光（从而拾取器的信号），从成像的神经元。我们找到一个统一的地区20-50微米的投资回报率在大多数情况下。
- 成比例的光学系统：光学的成像光学元件的正确对准是用于产生一个明确的双图像的关键。商业比例成像显微镜附件。另一种方法是采用快速连续成像，使用快速过滤器轮之间快速切换，发射波长为每个单独的图像，同时记录。
- 成比例分析：这里所描述的分析是一个相对简单的技术，凭借平均超过ROI生成鲁棒信号。它需要一个公认的明亮的物体选择的投资回报率。更复杂的的比例的分析是可能的精确对准和映射使得荧光的比例是可以计算的像素由像素的双重图像。
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Representative Results
在这里，我们从两个不同的实验结果。首先采用GCaMP测量到一个定义的外部刺激响应一个特定的感觉神经元，给一个很好的例子是如何可以使用荧光钙记者进行光学监测神经元的电活动的完整C.线虫 。第二个采用，变色龙来衡量细胞内钙瞬变响应特定的激光损伤的神经元内触发，从而说明在一个单一的细胞在体内钙的生理可测。把重点放在每个测量技术方面的单项试验结果，并详细讨论。随着时间的推移（计算在每个时间点相对于刺激的平均响应）或一个特定的度量（如响应的平均振幅）的平均响应通常是在众多的试验计算。通常情况下10-20产生一个可接受的平均测量试验是必要的，但T他的数量将取决于中的固有变异的响应。这类数据分析可以发现在12和13为在这里所讨论的实验。
感官反应：当进行了强有力的外部电场（≥3 V / cm的），C. GCaMP测量 线虫积极抓取朝向具有精确的定向运动领域的负极的。我们以前发现主要是介导的左侧和右侧ASJ神经元，在动物的头12中的化学传感器的感觉神经元位于，这electrotactic行为。为直观反应，我们使用了转基因的菌株，特别是在表达GCaMP3下的GPA-9子的左，右ASJ神经元。我们固定动物的成像用琼脂糖垫含有0.05％左旋咪唑夹着两个盖玻片（中所描述的程序）。电刺激，使用一个定制的成像室，适合管理倒置Nikon钛显微镜的阶段（参见图12）。简言之，盖玻片制剂放置（与蜗杆朝下）超过一个小的塑料腔室的孔中允许访问的目标，从下面的标准成像通过盖玻片。腔室填充与0.25 mM氯化钠和50mM的甘油缓冲液中，施加的电场刺激使用衬里的腔室的端部的两个铂电极。如上所述，一个单一的ASJ神经元表达使用一个X100 1.4 NA油浸目标和标准GFP筛选器集CGaMP成像。随时间推移的电影获得了80秒（1帧/秒，曝光时间为300毫秒），而外部的3 V /厘米电场的动物为三个独立的试验每次持续10秒（ 图3）。我们测得的荧光强度，在电池主体，使用上述图像分析。该视频显示轻微故障的漂移在实验过程中，两个移动和聚焦。在STrength的GCaMP信号仍然强劲，但是大〜250％的增长荧光反应1 和第3 次刺激。从所述第二刺激的结果基本上是减小表明变性中的神经元的反应。漂白是最小的，明显的恢复到一个一致的基准水平。
卡默莱昂测量细胞内钙的生理：外伤性细胞损伤触发一个大的支配细胞命运的生理反应（ 即细胞死亡与修复过程的开始）中扮演着重要的角色，在一个神经元内钙瞬变。我们可以测量这个损伤引起的反应在体内使用飞秒激光断绝个别C.线虫神经元14的同时，测定细胞内钙信号使用卡默莱昂YC3.60 13，15。动物在的6 mechanosensory的神经元（下表达卡默莱昂YC3.60的MEC-4基因启动子），被固定，用10％的琼脂糖和聚苯乙烯纳米粒子中所描述的程序。我们采用双重成像光学记录信号从两个CFP和YFP荧光通道中所描述的程序。我们成像一个单一的ALM神经元和激光瞄准轴突〜20μm的从细胞体（ 图4A）。一个简短的（<1秒）暴露在光线从飞秒脉冲红外激光聚焦在目标点的成像物镜（见13激光手术的详细信息）沿轴突轴突被切断。时间推移图像被记录在一个帧，每3秒400毫秒的曝光时间为320秒，同时进行激光手术和钙的水平比率分析计算。
信号分别独立测量在电池主体（ 图4B）和轴突段内的切点（ 图4C）为5μm。这些数字显示了CFP和YFP的强度，以及由此产生的FRET比率。性能良好，在电池主体的测量与CFP迅速下降和YFP的增加，响应于在t = 0秒（红色箭头）的激光损伤。这将导致立即〜200％的增长比例信号（F / F），持续90秒前回落至基线水平附近。漂白是显而易见的，从最小的为一致的基准。
接近切点在轴突段“，本地量不同的荧光团在实验过程中，复杂的信号。激光手术切断了的轴突和简要破裂膜，荧光逃脱，并且暂时减少其当地的细胞质浓度。这是显而易见的，从在YFP的跟踪图4C中的初始下降和轴突段比较YFP的图像在时间t = 0秒和t = 6秒， 如图4A中的损害点附近。在LA。后的时间点，尾端膨胀的一部分，其持续复苏，导致更多的本地化荧光基团和强度增加。这是最明显的，在图4C中的跟踪和比较，在时间t = 0秒和t = 270秒， 如图4A中的CFP图像轴突段缓慢增加的CFP。然而，这些变化同样影响两个通道，有效地补偿了FRET的比例。得到的测量结果示出了类似的细胞体立即〜150％的增加的信号（ΔF/ F），一个戏剧性的恢复到接近基线值在约90秒，然后一个额外的在约150秒的更小的二次响应的响应。比率分析这种测量是至关重要的，因为这将是非常难以分开的钙信号的影响，这可以从神经元到神经元和手术，手术有很大的不同。轴突信号相比，有更多的噪音，主要是由于调光荧光的细胞体信号和在较窄的轴突较小的投资回报率。
图1。基本设置和比例光学。 A）的照片显示在实验装置包括一个倒置的化合物显微镜和比例的光学成像B）的示意性示出的摄像光学系统所需要的比率量度基于FRET的测量。图像被分成两个波长或信道，因为预计在CCD阵列上侧由侧。
图2。样品制备。C. 线虫被安装在薄琼脂糖焊盘用于成像。 甲 ）琼脂糖焊盘是由夹着一小滴熔融琼脂糖两显微镜载玻片实验室胶带B）动物被转移到琼脂糖垫和覆盖盖玻片，少量的蜡的四个角中的每一个保持在位置上的由两块隔开。
图3。 GCaMP示例数据。GCaMP的信号，ΔF/ F，记录在体内从ASJ神经元的细胞体的响应的交变电场（绿色轨迹）的开/关。厚厚的灰色线表示当外部电场（3 V / cm的）施加到动物的期间。比例尺表示荧光强度增加100％。
图4。卡默莱昂示例数据。 A）三个独立的双图像显示的帧从胞体的轴突20微米激光手术前后的ALM神经元的查看。中间面板中的红色箭头表示的切点。底部面板显示的胞体和轴突段生产中的信号B和C。B）卡默莱昂的YC3.60信号测量前的ALM神经元的细胞体和激光手术后（红色箭头）。C）的卡默莱昂的YC3 .60测得的信号在轴突段内的切点5微米激光手术前后。黄色痕迹表明的YFP信号，蓝色的痕迹显示的CFP信号和橙色的痕迹，所产生的共振比例。现在的时间是相对于激光手术的时间。比例尺的荧光强度增加了100％。 点击此处查看大图 。
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Discussion
基因编码的钙指标已被广泛使用在 C 线虫神经生物学。许多组织已经采用这些技术来研究的初级感觉神经元对外界刺激的反应，这里展示的ASJ电场。著名的例子包括机械接触的感觉，具体的化学品，温度和电场12，16-19。活动的interneuron和肌肉细胞中也被监控，对刺激的反应，并在动物行为的控制。许多这些研究已推动这些技术的步骤进一步使用图像识别和跟踪技术，使从在部分约束甚至自由移动的动物，以及作为记录同时从多个神经元的神经元的记录。其他的研究调查的其他方面，如钙生理这里介绍以及神经元损伤13日，20神经元变性较长的时间尺度上21。
在一个特定的实验设计，每一个常用的钙记者和动物固定的替代技术应慎重考虑。固定化技术，将取决于技术方面，如需要物理访问的动物，恢复动物成像或需要高吞吐量的能力。不同的的荧光钙记者有特定的优点和缺点，以及。 GCaMP采用简单的单信道的图像分析，使得它适用于许多情况下，和大的信号 - 噪声比。卡默莱昂另一方面，需要更复杂的成像和分析，但在可能具有大的工件的情况下，将所得的比率量度测量可能是至关重要的。例如，荧光基团的量（如在激光损伤的例子）中的波动，也可以在很长的时间段中发生（小时），由于表达水平的变化。额外的双的成像策略也可能如GCaMP共同表达（或物理连接）RFP荧光。虽然不是基于荧光共振能量转移，这将充分利用大动态范围现代GCaMP变种，而使用红色通道的实时基线测量。
重要的是要注意，许多双通道成像显微镜系统和分析软件是市售的，而往往更昂贵的，可能是有吸引力不愿意构建构建家庭这里描述的系统的研究人员。商业双重成像的系统（DualView2-DV2，光度）通常使用光学类似于我们家的系统，但都包含在一个单一的显微镜附件标准化的校准程序。另外，快速过滤器交换系统（λDG-4/DG-5此外，萨特仪器）进行快速实时连续成像的两个颜色通道无线无需额外的光学成像，但也昂贵，并且需要精确的同步过滤器之间的交流和摄像头采集。
总之，C.线虫提出了许多优点，作为在体内成像系统中。基因编码的荧光团通常是细胞特异性，可以消除需要用于注射或施用外源性荧光团。C.线虫的的光学辅助功能成像内完整的动物，很容易和成本有效的维护，也不需要复杂的解剖或神经元培养和维持细胞生理。此外， 下线虫有大量的遗传分析提供的的基因试剂和完善的技术有很大的能力。有，当然系统的缺点，主要关注或者，它是一种无脊椎动物。此外，荧光报告中钙离子浓度的相对变化过早地R比的绝对值和时间分辨率的测量可以由动态的荧光团，但也必要的微弱的荧光信号的积分时间的限制。最后，虽然钙是神经元活动的一个不可分割的一部分和信令的荧光基团不直接报告的膜测得的电压电势与电生理技术。然而所示的程序，这里提出，C.线虫是一个有吸引力的，比较简单，具成本效益的系统为广泛的神经成像研究。
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Disclosures
作者宣称，他们没有竞争的金融利益。
Acknowledgments
几个人本文中所描述的工作做出了贡献。 ，CVG建立了实验装置，并，LS，SHC，和CVG进行了实验。 CVG和，SHC写的稿件。随后所有的作者参加了在修订过程中，批准了最后一份手稿的复印件。我们感谢保罗·斯腾伯格的GCaMP应变。在这项工作中所用的一些线虫菌株的秀丽隐杆线虫的遗传学中心（CGC），这是由美国国立卫生研究院国家研究资源中心（NCRR）。在18改编而成，使用MATLAB图像分析程序。支持作者，美国波士顿大学和麻省理工生命科学中心。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Eclipse Ti-U inverted microscope |
Nikon | ||
| Intensilight HG Illuminator | Nikon | C-HGFI | Fluorescent light source |
| CFI Plan Apo VC 60X Oil | Nikon | ||
| Optical table or 3'X3' optical grade breadboard |
Thor Labs | If an optical table is not used an optical grade breadboard on a solid laboratory bench should suffice. |
|
| Clara Interline Camera | Andor Technology |
High-sensitivity CCD camera | |
| wtGFP Longpass Emission | Chroma Technology Corp. |
41015 | GFP filter set for imaging GCaMP |
| Filter 440 +/- 10 nm | Chroma | D440/20x EX | excitation filter for cameleon |
| Dichroic mirror > 455 nm longpass |
Chroma | 455DCLP BS | microscope dichroic for cameleon imaging |
| Dichroic mirror > 515 nm longpass |
Chroma | 515DCLP BS | dichroic mirror for cameleon imaging |
| Filter 535 +/- 15 nm | Chroma | D535/30m EM | YFP emission filter |
| Filter 480 +/- 20 nm | Chroma | D485/40m EM | CFP emission filter |
| Lens, 200 mm, Achromat | Thor Labs | AC508-200-A1 | Relay lens for FRET optics (3) |
| Silver broadband mirror | Thor Labs | ME2S-P01 | FRET optics (2) |
| NGM buffer | |||
| Levamisole | Sigma | ||
| Polybead Microspheres | Polysciences, Inc. | 08691-10, 2.5% by volume, 50 nm diameter |
polystyrene nanoparticles for C. elegans immobilization |
| Transgenic strain, Strain gpa-9::GCaMP3(in pha-1; him-5 bkg) |
Sternberg Lab | Strain PS6388 | |
| Transgenic strain, mec- 4::YC3.60 |
Gabel Lab | Strain CG1B |
References
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