Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

Bioluminescent orthotopen Modell von Bauchspeicheldrüsenkrebs Progression

Published: June 28, 2013 doi: 10.3791/50395

Summary

Verbessertes Verständnis von Bauchspeicheldrüsenkrebs Biologie ist dringend erforderlich, um die Entwicklung von besseren therapeutischen Optionen zur Behandlung von Bauchspeicheldrüsenkrebs zu ermöglichen. Um diesen Bedarf zu demonstrieren wir eine orthotopic Modell von Bauchspeicheldrüsenkrebs, die nicht-invasive Überwachung der Tumorprogression ermöglicht mit

Abstract

Introduction

Bauchspeicheldrüsenkrebs ist die vierthäufigste Ursache von Krebs-Todesfälle, mit einer 5-Jahres-Überlebensrate von 4-6%. 1,2 Nur 15% der Patienten sind früh genug in der Diagnose der Krankheit, um förderfähig zu sein für Chirurgie und Tumoren wiederkehren in> 80% der Patienten. 3,4 Gemcitabin zur Behandlung von Pankreas-Adenokarzinomen verwendet wird, ist jedoch chemoresistance häufig und oft das Medikament hat wenig Einfluss auf das Gesamtüberleben. 5 Neue pharmakologische Strategien zur Behandlung von Bauchspeicheldrüsenkrebs dringend erforderlich. Ihre Entwicklung hängt wesentlich verbesserte Verständnis der wichtigsten Schritte des Fortschreitens der Krankheit, die empfindlich auf eine therapeutische Intervention kann.

Orthotopen Modellen von Bauchspeicheldrüsenkrebs emulieren wichtigsten Aspekte der menschlichen Krankheit, so dass sie ein ideales Werkzeug für das Studium der Biologie von Bauchspeicheldrüsenkrebs. 6-9 Im Gegensatz zu in vitro-Zell-basierte Assays von Bauchspeicheldrüsenkrebs Zelle Verhalten einerd subkutan in-vivo-Modelle von Bauchspeicheldrüsenkrebs, erlauben orthotopen Modellen Untersuchung von Tumor-Zell-Interaktionen mit dem Pankreas Mikroumgebung. Die Kinetik des Fortschreitens der Krankheit sind in hohem Maße reproduzierbar in orthotopen Modellen auftreten und über einen kurzen Zeitraum (Wochen), die sie gut zu vorklinischen Erprobung neuartiger Therapeutika geeignet macht. Dies steht im Gegensatz zu transgenen Modellen, bei denen Ausbruch der Krankheit in ein längeres und variabler Zeitrahmen (Monate bis 1 Jahr). 10 Wenn mit aggressiveren Zelllinien verwendet werden, haben orthotopic Modelle von Bauchspeicheldrüsenkrebs Muster spontaner Metastase gleichen denen, die in Patienten. 8 Expression von Biolumineszenz Reportergene wie Glühwürmchen-Luciferase ermöglicht Längs Überwachung des Tumorwachstums, metastatischen Verbreitung, Wiederholung und Reaktion auf Therapeutika. 6,11

Hier beschreiben wir einen orthotopen Modell von Bauchspeicheldrüsenkrebs, die Matr nutztigel für lokalisierte Zelle Lieferung und in vivo Biolumineszenz-Bildgebung zur nicht-invasiven Überwachung der Tumorprogression. Diese orthotopen Modell des Pankreaskarzinoms ermöglicht nicht-invasive Analyse der Krankheitsverlauf und das Ansprechen auf therapeutische Interventionen in syngene oder Xenotransplantatmodellen.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Das Protokoll demonstriert wird unter der Leitung und Genehmigung des Autors Institution Tierpflege und Nutzung Ausschuss durchgeführt. Alle Versuche werden unter Einhaltung aller einschlägigen Richtlinien, Vorschriften und Aufsichtsbehörden ausgeführt.

1. Transduzierende Pankreaskarzinomzelllinien

  1. Wandlerprinzip Bauchspeicheldrüsenkrebszellen ausdrücken Luciferase wie zuvor beschrieben. 12,13 Panc-1 und Capan-1 Pankreaskarzinom Zelllinien transduziert mit Glühwürmchenluciferase kommen hier zum Einsatz.

Hinweis: Renilla-Luciferase oder bakterielle Luciferase, können ebenfalls verwendet werden.

2. Bauchspeicheldrüsenkrebs Zellpräparation

  1. Kultur transduziert Bauchspeicheldrüsenkrebszellen bis 70% konfluent.
  2. Heben Sie die Zellen der Bauchspeicheldrüse und die Rentabilität zu gewährleisten ist größer als 90%.
  3. Resuspendieren in 2 x 10 7 Zellen / ml in einer 3:2-Mischung von gekühlten Matrigel: Phosphat gepufferte saline (PBS).
  4. Halten Sie die Matrigel-Zellsuspension auf Eis vor der Injektion in der Bauchspeicheldrüse.

Anmerkungen: Eine rasche Verfestigung Matrigel sicherzustellen, Verringerung der Volumen PBS zur Berücksichtigung des Volumens des Zellpellets. Griff Matrigel mit eiskaltem Instrumente und Spritzen zu allen Zeiten zu Erstarrung vor der Injektion zu verhindern. Die vorgeschlagene Anzahl von Zellen ist eine Führung und sollten empirisch für jede Zelllinie zu bestimmen.

3. Maus Vorbereitung

  1. Anesthetize die Maus mit eingeatmet 2-3% Isofluran. Bestimmen Narkosetiefe durch mangelnde Pedal Reflex zu einer sanften Prise Zehe.
  2. Schmiermittel auf die Augen, um ein Austrocknen zu verhindern.
  3. Positionieren Sie den Mauszeiger auf dem Rücken auf einem 37 ° C Heizkissen und sanft drehen Sie die Maus, um die linke Seite des Bauches zu erhöhen.
  4. Bereiten Sie den Bauch mit einem 10% Povidoniod Lösung.

Anmerkungen: Injectable Anästhesie kann anstelle von inhalativen Anästhesie verwendet werden. Präoperative Fasten ist nicht erforderlich.

4. Laparotomie

  1. Mit einer sterilen chirurgischen Instrumente einen 1,5 cm Schnitt in der Haut etwa 1 cm seitlich links von der Mittellinie.
  2. Machen Sie eine 1,5 cm Einschnitt in der zugrunde liegenden Bauchmuskeln.
  3. Suchen Sie die Milz mit der Zange und entfernen Sie vorsichtig die Milz aus der Bauchhöhle. Sichern Sie die Milz entlang einer sterilen Wattestäbchen, um die zugrunde liegenden Bauchspeicheldrüse aussetzen.
  4. Finde den Schwanz der Bauchspeicheldrüse neben der Milz.
  5. Mit einer 29 G 0,3 ml Insulinspritze, injizieren 20 ul der Matrigel-Zellsuspension in der Bauchspeicheldrüse.
  6. Nach der Injektion, halten Sie die Spritze in der Bauchspeicheldrüse für 30-60 sec bis die Matrigel verfestigt hat. Dieser wichtige Schritt minimiert Zellleckstromcharakteristikfunktion.
  7. Überprüfen Sie die Injektionsstelle, um sicherzustellen, keine Leckage aufgetreten.
  8. Bringen Sie die Milz und Bauchspeicheldrüse in die Bauchhöhle.

Hinweis: Achten Sie darauf, um zu vermeiden Punktion der Rückenseite der Bauchspeicheldrüse, die dünn sein kann.

5. Bauchdeckenverschluss

  1. Schließen Sie die Bauchmuskulatur der Maus mit einem resorbierbaren Nahtmaterial geflochten 4-0 mit einer runden Nadel mit einem kontinuierlichen Stich.
  2. Schließen die äußere Haut mit einem nicht resorbierbaren monofilen Faden 6-0 mit einer Schneidnadel mit einem kontinuierlichen Abspielen.
  3. Entfernen Sie die Maus vom Inhalationsanästhetikum und injiziert 0,05-0,1 mg / kg subkutan Buprenorphin.
  4. Lassen Sie die Maus, um in seinem Käfig auf einem 37 ° C Heizkissen mit freiem Zugang zu Futter und Wasser gegeben zu erholen. Wenn Mäuse Anzeichen von Schmerzen wie gebeugt oder eingeschränkter Mobilität zu demonstrieren, kann Buprenorphin alle 12 h über einen 36 Stunden-Zeitraum angegeben werden.
  5. Nach Wundheilung (7-10 Tage), betäuben die Maus und entfernen Sie die externe Nähte.

6. Bioluminescent-Tracking von Bauchspeicheldrüsenkrebs Cancer Progression

  1. Anesthetize die Maus mit Isofluran eingeatmet.
  2. Injizieren 150 mg / kg D-Luciferin über die Schwanzvene.
  3. Platzieren Sie die Maus in die Biolumineszenz-Imaging-System und erfassen Weißlicht-und Biolumineszenz Bilder wie zuvor beschrieben. 14,15
  4. Entfernen Sie die Maus vom Inhalationsanästhetikum und lassen Sie ihn in seinem eigenen Käfig zu erholen.

Hinweis: Biolumineszenz-Bildgebung ist nicht-invasiv und kann periodisch durchgeführt werden, um Tumorwachstumskinetiken untersuchen. Um das Bild Tumor in der Bauchspeicheldrüse Schwanz ist es wichtig, mit der Maus auf die linke Seite legen, so dass die Tumor-Punkte in Richtung der Kamera. Wir abgebildet einmal pro Woche mit der Frequenz um bis zu dreimal pro Woche vor der experimentellen Endpunkt mit einem Lumina II Imaging-System (Perkin-Elmer, ehemals Caliper Life Sciences) läuft Wohnzimmer Imaging 4.3.1 Software mit Binning 4, FOV 12.5, F-Stop 1, Belichtung 1-60 sec (bestimmt durch die höchste exposure ohne Pixelsättigung).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Diese Methode beschreibt ein orthotopen Modell von Bauchspeicheldrüsenkrebs mit chirurgischen Eingriffen, einschließlich der Einleitung der Narkose, Laparotomie, Injektion von Krebszellen in Matrigel und Bauchdeckenverschluss (Abbildung 1A). Die injizierten Zellen bilden eine Blase in der Oberfläche der Bauchspeicheldrüse (1B). Bauchspeicheldrüsenkrebs Progression kann nicht-invasiv überwacht mit in vivo Biolumineszenz-Bildgebung zu Krebszellproliferation und Verbreitung (Abbildung 2) zu verfolgen. Lebermetastasen wurde durch Beobachtung der Biolumineszenz in der Leber während der chirurgischen Resektion angezeigt (Abbildung 2) bestätigt und ex vivo durch Histologie (4B). Primäre Tumoren wurden mit dem Pankreasschwanz und Milz bei 6 Wochen nach der Implantation reseziert. Tumor Wachstumsdynamik in diesem orthotopic Injektion Modell sind reproduzierbar und genau die Kinetik der orthotopen Transplantation Modelle ähneln pa ncreatic Krebs (Abbildung 3). Das Tumorwachstum im Pankreas lokal invasive und metastasiert Organe, einschließlich Leber (Abbildung 4).

Abbildung 1
Abbildung 1. Ein orthotopen Mausmodell des Pankreaskarzinoms Progression. A) i. Die narkotisierten Maus wird an Ort und Stelle mit Klebeband fixiert und der Bauch wird desinfiziert. ii. Nach Längs Laparotomie die Milz und Pankreas-Schwanz werden sanft exteriorisiert und an der Stelle auf einem sterilen Wattestäbchen. iii. Matrigel-embedded pankreatischen Tumorzellen in das Bauchspeicheldrüsenschwanz injiziert. iv. Der Bauch ist in zwei Schichten geschlossen. B) Vergrößerte Darstellung exteriorisiert Milz und Bauchspeicheldrüse. Die injizierten Zellen bilden eine Blase (Pfeilspitze). ftp_upload/50395/50395fig1large.jpg "target =" _blank "> Klicken Sie hier, um eine größere Abbildung anzuzeigen.

Abbildung 2
Abbildung 2. Bioluminescent Bildgebung orthotopen Pankreas-Tumor (a) 10 Tage nach der Injektion, (B) 31 Tage nach der Injektion, und (C) fünf Tagen nach Tumorentfernung.

Abbildung 3
3. In vivo Primärtumorwachstums von Panc-1 und Capan-1-Zelllinien wurde im Laufe der Zeit (Tage nach der Injektion) durch Biolumineszenz-Bildgebung (n = 4) überwacht. Die Kinetik des Tumorwachstums nach der Injektion von Matrigel eingebetteten Pankreastumorzellen sind ähnlich orthotopen Modelle mit Transplantation von Pankreas-Tumor-Stücke.

_upload/50395/50395fig4.jpg "alt =" 4 "/>
Abbildung 4. Hämatoxylin und Eosin-gefärbten Schnitten von (A) Panc-1 primären Tumor der Bauchspeicheldrüse, und (B) von Lebermetastasen Panc-1 primären Tumor der Bauchspeicheldrüse. * Local Invasion von Bauchspeicheldrüsenkrebs Zellen in das umgebende Orgel.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Hier beschreiben wir einen orthotopen Modell für Längs-Beurteilung von Pankreas-Tumor-Entstehung und Progression. Primäre Tumorwachstumskinetiken reproduzierbar sind (Abbildung 3) und kann nicht-invasiv überwacht mit Biolumineszenz-Bildgebung der Luciferase-markierten Zellen, für Analysen von Tumor-Reaktion auf neuartige Anti-Bauchspeicheldrüsenkrebs Therapeutika zB. Im Einklang mit der menschlichen Krankheit zeigt das Modell lokale Invasion Pankreas (4A), die Untersuchung von Tumor-Zell-Interaktionen mit dem Pankreas Mikroumgebung kann. Die Verwendung von Luciferase-markierten Zelllinien erlaubt Analysen der Häufigkeit, Ort und Kinetik der metastatischen Verbreitung. Verwendung von Luciferase-markierten Zelllinien erleichtert den Nachweis von Metastasen, bevor sie visuell erkennbar und werden Gewebe Lokalisation der Metastasen kann durch ex-vivo-Bildgebung und Histologie bestätigt werden. Wie in der klinischen Situation zeigt das Modell, Metastasen in organs einschließlich mesenterialen Lymphknoten, Leber, Magen, Darm und Bauchhöhle (Abbildung 4). 8 Biolumineszenzimaging kann auch verwendet werden, um erfolgreiche Resektion und das Auftreten und die Kinetik der Primärtumor Wiederholung (2C) zu bestimmen. 16

Sorgfältige Vorbereitung und Abwicklung von Bauchspeicheldrüsenkrebs Zellen ist entscheidend für die Reproduzierbarkeit des Modells. Das Verhältnis von Matrigel in PBS wurde für eine rasche Verfestigung des Zellpellet nach der Injektion optimiert. Das Volumen der pelletierten Zellen (etwa 35 ul 10 7 Tumorzellen) sollte aus dem Volumen PBS für eine endgültige Verhältnis 3:2 von Matrigel abgezogen werden: Zellen + PBS. Während der Injektion wird Zellleckstromcharakteristikfunktion indem die Nadel in situ für 30-60 Sekunden, bis das Matrigel verfestigt hat (Fig. 1) verhindert. Falls ein Leck auftritt wird leicht erkannt als Matrigel gefärbt ist und diese Mäuse können f ausgeschlossen werdenrom weitere Analysen. Verhindern Tumorzelle Leckage gewährleistet, dass Metastase Tumorzelldisseminierung nicht als Artefakt der Injektionstechnik auftritt.

Die Kinetik der Tumor-Entwicklung wird durch die Anzahl von Zellen injiziert und sollte empirisch für jede Zelllinie bestimmt beeinflusst werden. Wir fanden reproduzierbare Tumorwachstum Muster nach der Injektion von 4 x 10 5 Panc-1 oder Capan-1-Zellen (Abbildung 3). Die Schwelle für die Biolumineszenz Detektion von Metastasen durch Merkmale der Expression des Promotors einschließlich Stärke und die Verwendung von Codon-optimierten Luciferase-Konstrukt beeinflusst werden. Neben den Xenotransplantatmodellen hier beschrieben, kann die Technik auch mit syngenen Pankreas-Zelllinien verwendet werden, um Pankreas-Progression in einem immunkompetenten Einstellung überprüfen. Ähnliche Tumor Dynamik bei männlichen oder weiblichen Mäusen (Daten nicht gezeigt) beobachtet.

Das beschriebene Verfahren erre hat für einen orthotopen Transplantation Modell von Bauchspeicheldrüsenkrebs wurde geändert. In diesem Modell werden Tumore subkutan in Donormäusen gewachsen, dann eine 1 mm 3 Stück in einer kleinen Tasche in der Bauchspeicheldrüse Schwanz einer Maus Empfänger transplantiert. 6-8,17 Primärtumor Wachstum kann überwacht mit Biolumineszenz-Bildgebung mit Spendersamen Tumoren werden abgeleitet von Luciferase-markierten Tumorzellen. Im Gegensatz zur orthotopen Modell hier beschriebenen Modelle erfordern Transplantation zusätzliche Zeit (bis zu 1 Monat) und zusätzliche Mäuse für die Erzeugung von Donor Tumoren. Ergebnisse mit der Transplantation Modelle können durch heterogene Zusammensetzung von transplantierten Tumor Stücke beeinflusst werden. Wir zeigten hier, dass die Kinetik nach der Injektion von Matrigel-embedded-Zellen ähnlich der transplantierten Modells sind. Transplantation Modelle wurden verwendet, um zu studieren und zu erweitern klinischen Patientenproben. 18-21

Die orthotopic hier beschriebenen Modelle ergänzen transgenen modelle von pre-invasiven und invasiven Bauchspeicheldrüsenkrebs. 10,22,23 Transgene Modelle rekapitulieren wichtigsten Aspekte der menschlichen Bauchspeicheldrüsenkrebs einschließlich Onkogen-Mutationen zeigen aber erhebliche Variabilität in Krankheitsbeginn (7 Wochen bis> 1 Jahr). 10,23 meisten transgenen Modellen zu tun nicht exprimieren Luciferase und sind daher nicht geeignet für in vivo Biolumineszenz-Bildgebung des Fortschreitens der Krankheit. Im Gegensatz dazu zeigen orthotopen Modellen von Bauchspeicheldrüsenkrebs reproduzierbare Kinetik der Tumorprogression und erlauben nicht-invasive Überwachung, so dass sie gut auf präklinische therapeutische Studien geeignet.

Neue Therapieansätze dringend erforderlich, um die außergewöhnlich niedrigen Überlebensraten bei Bauchspeicheldrüsenkrebs bekämpfen. Durch die Möglichkeit der Visualisierung von metastasiertem und rezidivierender Erkrankung beschrieben, die orthotopen Modellen von Bauchspeicheldrüsenkrebs hier sind relevant für den klinischen Umfeld, wo die meisten aktuellen Behandlungen sind palliative. Darüber hinaus orthotopen Modellensind sehr wertvoll für die Untersuchung von Pankreas-Tumor-Biologie und Bewertung neuer therapeutischer Strategien in der in vivo-Umgebung.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Die Autoren erklären, dass sie keine finanziellen Interessen haben.

Acknowledgments

Diese Arbeit wurde von der National Health and Medical Research Council, Australien (1008865), das Australian Research Council (LE110100125), das National Cancer Institute (CA138687-01), Erica Sloan wird von einem Early Career-Stipendium der National Breast Cancer abgestützt Foundation, Australien. Corina Kim-Fuchs wird durch ein Stipendium von der Krebsliga Schweiz und einem HDR-Stipendium von der Monash Institute of Pharmaceutical Sciences unterstützt. Eliane Angst wird durch einen Zuschuss aus dem Bern Krebsliga unterstützt.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Clean Bench coat
Heating pad Set to 37 °C
Ivis Lumina ll Bioluminescent imager Caliper Alternative bioluminescent imaging systems include In vivo F PRO (Carestream) and Photon Imager (Biospace Lab)
Dissecting scissors
Iris forceps (serrated)
Needle holder
27 G 0.3 ml insulin syringe Terumo T35525M2913

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. American Cancer Society. Facts and Figures. , American Cancer Society. Atlanta. (2013).
  2. Hariharan, D., Saied, A., Kocher, H. M. Analysis of mortality rates for pancreatic cancer across the world. HPB (Oxford). 10, 58-62 (2008).
  3. Li, D., Xie, K., Wolff, R., Abbruzzese, J. L. Pancreatic cancer. Lancet. 363, 1049-1057 (2004).
  4. Oettle, H., et al. Adjuvant chemotherapy with gemcitabine vs observation in patients undergoing curative-intent resection of pancreatic cancer: a randomized controlled trial. JAMA. 297, 267-277 (2007).
  5. Andersson, R., et al. Gemcitabine chemoresistance in pancreatic cancer: molecular mechanisms and potential solutions. Scand. J. Gastroenterol. 44, 782-786 (2009).
  6. Angst, E., et al. Bioluminescence imaging of angiogenesis in a murine orthotopic pancreatic cancer model. Mol. Imaging Biol. 12, 570-575 (2010).
  7. Angst, E., et al. N-myc downstream regulated gene-1 expression correlates with reduced pancreatic cancer growth and increased apoptosis in vitro and in vivo. Surgery. 149, 614-624 (2011).
  8. Hotz, H. G., et al. An orthotopic nude mouse model for evaluating pathophysiology and therapy of pancreatic cancer. Pancreas. 26, 89-98 (2003).
  9. Partecke, L. I., et al. A syngeneic orthotopic murine model of pancreatic adenocarcinoma in the C57/BL6 mouse using the Panc02 and 6606PDA cell lines. Eur. Surg. Res. 47, 98-107 (2011).
  10. Hingorani, S. R., et al. Preinvasive and invasive ductal pancreatic cancer and its early detection in the mouse. Cancer Cell. 4, 437-450 (2003).
  11. Sloan, E. K., et al. The sympathetic nervous system induces a metastatic switch in primary breast cancer. Cancer Res. 70, 7042-7052 (2010).
  12. Wang, X., McManus, M. Lentivirus production. J. Vis. Exp. (32), e1499 (2009).
  13. Morizono, K., et al. Lentiviral vector retargeting to P-glycoprotein on metastatic melanoma through intravenous injection. Nat. Med. 11, 346-352 (2005).
  14. Saha, D., et al. In vivo bioluminescence imaging of tumor hypoxia dynamics of breast cancer brain metastasis in a mouse model. J. Vis. Exp. (56), e3175 (2011).
  15. Lim, E., et al. Monitoring tumor metastases and osteolytic lesions with bioluminescence and micro CT imaging. J. Vis. Exp. (52), e2775 (2011).
  16. Burton, J. B., et al. Adenovirus-mediated gene expression imaging to directly detect sentinel lymph node metastasis of prostate cancer. Nat Med. 14, 882-888 (2008).
  17. Vezeridis, M. P., Doremus, C. M., Tibbetts, L. M., Tzanakakis, G., Jackson, B. T. Invasion and metastasis following orthotopic transplantation of human pancreatic cancer in the nude mouse. J. Surg. Oncol. 40, 261-265 (1989).
  18. Fu, X., Guadagni, F., Hoffman, R. M. A metastatic nude-mouse model of human pancreatic cancer constructed orthotopically with histologically intact patient specimens. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 89, 5645-5649 (1992).
  19. Reyes, G., et al. Orthotopic xenografts of human pancreatic carcinomas acquire genetic aberrations during dissemination in nude mice. Cancer Res. 56, 5713-5719 (1996).
  20. Kim, M. P., et al. Generation of orthotopic and heterotopic human pancreatic cancer xenografts in immunodeficient mice. Nat Protoc. 4, 1670-1680 (2009).
  21. Furukawa, T., Kubota, T., Watanabe, M., Kitajima, M., Hoffman, R. M. A novel "patient-like" treatment model of human pancreatic cancer constructed using orthotopic transplantation of histologically intact human tumor tissue in nude mice. Cancer Res. 53, 3070-3072 (1993).
  22. Lewis, C. E., Pollard, J. W. Distinct role of macrophages in different tumor microenvironments. Cancer Res. 66, 605-612 (2006).
  23. Brembeck, F. H., et al. The mutant K-ras oncogene causes pancreatic periductal lymphocytic infiltration and gastric mucous neck cell hyperplasia in transgenic mice. Cancer Res. 63, 2005-2009 (2003).

Tags

Cancer Biology Ausgabe 76 Medizin Molekularbiologie Zellbiologie Genetik Biomedical Engineering Operation Tumoren Bauchspeicheldrüsenkrebs Krebs orthotopen Modell Biolumineszenz, Matrigel Metastase Pankreas- Tumor Krebs Zellkultur Laparotomie Tiermodell Bildgebung
Bioluminescent orthotopen Modell von Bauchspeicheldrüsenkrebs Progression
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Chai, M. G., Kim-Fuchs, C., Angst,More

Chai, M. G., Kim-Fuchs, C., Angst, E., Sloan, E. K. Bioluminescent Orthotopic Model of Pancreatic Cancer Progression. J. Vis. Exp. (76), e50395, doi:10.3791/50395 (2013).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter